リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

大学・研究所にある論文を検索できる 「Preventive effects of boiogito on cholestatic liver injury and hepatic lipid accumulation in mice through the modulation of intestinal bile acid metabolism」の論文概要。リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

コピーが完了しました

URLをコピーしました

論文の公開元へ論文の公開元へ
書き出し

Preventive effects of boiogito on cholestatic liver injury and hepatic lipid accumulation in mice through the modulation of intestinal bile acid metabolism

陳 卓爾 富山大学

2020.09.28

概要

胆汁酸は肝臓において複数のシトクローム P450 系酵素の触媒活性によって合成され、さらにタウリンやグリシンとの抱合体として胆汁とともに腸管腔内に分泌される。腸管内の胆汁酸は、その両親媒性(界面活性作用)によって、トリアシルグリセロール(TAG)やコレステロールなどの食餌脂質の消化と吸収を促進する。また胆汁酸は回腸を通過するまでにそのほとんどが吸収されて、門脈を経由して肝臓に戻り、再び胆汁へと移行する。この過程は腸肝循環とよばれている。肝細胞において胆汁の細胞外への分泌能の低下や、胆管の閉そくなどによって胆汁うっ滞が生じると、肝臓内の胆汁酸濃度が上昇し、それによって肝細胞傷害が生じる。これは胆汁うっ滞性肝傷害とよばれている。したがって、肝臓内の胆汁酸の蓄積やそれによる細胞傷害を軽減することで、胆汁うっ滞性肝傷害を軽減することができる。一方胆汁酸は、ファルネソイド X 受容体(farnesoid X receptor; FXR)などの核内受容体に結合して、様々な遺伝子の転写活性を制御することが知られている。特に胆汁酸自身の生合成や、その腸管循環を担う多くの酵素やトランスポーターの発現が、FXR によって制御されていることはよく知られている。さらに胆汁酸は、肝臓や腸管の FXR に作用することで、コレステロールの合成や異化、さらには脂肪酸やトリアシルグリセロール(TAG)の合成活性、すなわち脂肪合成系活性を制御することも知られている。以上のことから、胆汁酸はその物理化学的ならびに生化学的性質によって、胆汁酸自身や脂質の代謝を制御する重要な生理活性物質であるといえる。
当研究室において、マウスにコール酸を添加した飼料を与えることによって誘導される胆汁うっ滞性肝傷害が、防己黄耆湯(BOT)を同時に与えることによって軽減されることをすでに明らかにしている(Watanabe et al., Trad. Kampo Med., 2016)。このことから、BOT は肝臓における胆汁酸の代謝を制御するか、もしくは胆汁酸の肝細胞への傷害性を軽減しているのではないかと考えた。そこで私は、コール酸よりも強い胆汁うっ滞性肝傷害を誘導するリトコール酸(LCA)を与えたマウスに対して、BOT が軽減作用を示すか否かを検討した。この検討の中で、BOT の作用点が腸管内の胆汁酸代謝である可能性が示されたので、引き続いてこの漢方薬の肝臓ならびに腸管内の胆汁酸構成に及ぼす影響をより詳細に検討した。以下にこれらの研究の要約を記す。

I. BOT の LCA によって誘導される胆汁うっ滞性肝傷害に対する軽減作用とその機構の解析(参考論文1の研究内容)
LCA を添加した飼料を 7 日間に渡ってマウスに与えると、肝臓中の胆汁酸濃度の上昇を伴う胆汁うっ滞性肝傷害が生じた。LCA を添加した飼料に BOT を添加すると、肝傷害ならびに肝臓中の LCA の濃度上昇が軽減されることを見いだした。しかしながら LCA を腹腔内投与することによって誘導される肝傷害ならびに肝臓中の LCA 濃度の上昇は、BOT を飼料に添加しても軽減されなかった。さらに BOT は、経口投与された LCA の盲腸内濃度ならびにその糞便中への排泄を増加させることを見いだした。以上の結果から、BOT は経口投与された LCA が腸管から吸収されるのを抑える、もしくはその腸管での代謝が促進されることで、その肝臓への移行と肝臓内濃度の上昇を抑制し、肝傷害を軽減するのではないかと推測できた。ただし BOT の投与は、小腸で主に胆汁酸の吸収を担うトランスポーターの apical sodium-dependent bile acid transporter (ASBT)、胆汁酸を代謝する cytochrome P450 3a11(Cyp3a11)、ならび胆汁酸を硫酸抱合化するsulfotransferase 2a1(sult2a1)の発現には影響を及ぼさなかった。これらのことから、BOT が腸管における能動的な LCA の吸収や、少なくとも cyp3a11 や sult2a1 による代謝には影響していないものと推測した。

II. BOT による糞便中胆汁酸構成の変動とその糞便中脂質排泄ならびに肝臓脂質への影響との関係(参考論文2の研究内容)
上述の検討において、BOT は経口投与された LCA の腸管における吸収や代謝を制御する可能性が示された。このことから私は、腸管内での胆汁酸代謝が BOT の作用点の一つであると考えた。ただし上述の研究においては、外来性の胆汁酸(LCA)の投与に対する比較的短期間(7日間)の BOT の投与の影響を調べたものであった。一方 BOT の投与は、ラットに高脂肪食を長期間に渡って負荷することによって生じる脂肪肝を軽減することが報告されている(Qian et al., Yonago Acta Med., 2014)。胆汁酸が食餌脂肪の消化・吸収に寄与し、また肝臓や腸管の FXRに作用することで、肝臓の脂質代謝を制御することも知られている。このような背景から私は、より長期的な BOT の投与が内在性の胆汁酸構成ならびに肝臓および糞便中の脂質含量に及ぼす影響を明らかにするための検討を行った。BOT を添加した飼料をマウスに 4 週間に渡って与えて、最終日の 24 時間中に排泄される糞便と肝臓を採取した。これらに含まれる胆汁酸の構成を液体クロマトグラフィー―質量分析計にて測定した。肝臓の胆汁酸構成に対しては、 BOT の投与は有意な影響を及ぼさなかった。しかしながら糞便中に最も多く含まれる 2 次胆汁酸のデオキシコール酸(DCA)の濃度が、BOT の投与によって低くなることがわかった。また BOT の投与は糞便中のコレステロール濃度を増加させることもわかった。DCA は疎水性が高い胆汁酸であり、腸管内でコレステロールのミセル溶解を強く促進することが知られている。すなわち BOT による腸管内の DCA 濃度の低下が、腸管内でコレステロールのミセル溶解を抑制し、腸管でのコレステロールの吸収を抑制した可能性が示された。また BOT の投与は、肝臓中の TAG やコレステロールエステルの濃度を低下させた。DCA は FXR の強いアゴニストである。また腸管の FXR の活性化は、腸管でのセラミド産生を介して肝臓の脂肪合成系を活性化することが知られている。すなわち BOT による腸管内 DCA の濃度低下は、腸管での FXR活性の低下を引き起こすことで、肝臓の脂肪合成系活性を低下させた可能性が示された。以上の結果から、BOT によって生じる腸管内の胆汁酸の変化が、その疎水性の低下ならびに胆汁酸受容体活性化の抑制を介して肝臓の脂質濃度を低下させる可能性を示した。

III. 総括
BOT が胆汁うっ滞性肝傷害モデルに対する軽減効果の機構解析を見いだしたことをきっかけに、この漢方薬の作用点として腸管内の胆汁酸に着目して研究を進めた。その結果、BOT による腸管内胆汁酸濃度の変動を介した新しい脂質代謝制御機構の存在を示唆することができた。DCA は腸内細菌による1次胆汁酸(コール酸)の代謝に依存して産生されることから、 BOT の作用が腸内細菌叢の制御を介するものであることも推測できる。今後 BOT の作用発現における腸内細菌の関与について検討する必要があると考える。近年の多くの研究で、腸内細菌による胆汁酸代謝制御と様々な病態との関連が明らかになっている。漢方薬の中には、腸管の機能を調節することで作用を発揮するものが多くあると認識されているものの、その作用機構の多くは不明なままである。したがって腸管内の胆汁酸代謝の観点から、様々な漢方薬の作用機序が解明されることが期待できる。

この論文で使われている画像

参考文献

1. Li T, Chiang JY. Nuclear receptors in bile acid metabolism. Drug Metab Rev. 2013; 45: 145-155.

2. Alnouti Y. Bile Acid sulfation: a pathway of bile acid elimination and detoxification.Toxicol Sci. 2009; 108: 225-246.

3. Trottier J, Milkiewicz P, Kaeding J, Verreault M, Barbier O. Coordinate regulation of hepatic bile acid oxidation and conjugation by nuclear receptors. Mol Pharm. 2006; 3: 212-222.

4. Botham KM, Boyd GS. The metabolism of chenodeoxycholic acid to beta- muricholic acid in rat liver. Eur J Biochem. 1983; 134: 191-196.

5. Li T, Chiang JY. Bile acid signaling in metabolic disease and drug therapy.Pharmacol Rev. 2014; 66: 948-983.

6. Wang TY, Liu M, Portincasa P, Wang DQ. New insights into the molecular mechanism of intestinal fatty acid absorption. Eur J Clin Invest. 2013; 43: 1203- 1223.

7. Fine KD, Fordtran JS. The effect of diarrhea on fecal fat excretion.Gastroenterology. 1992; 102: 1936-1939.

8. Makishima M, Okamoto AY, Repa JJ, et al. Identification of a Nuclear Receptor for Bile Acids. Science. 1999; 284: 1362.

9. Parks DJ, Blanchard SG, Bledsoe RK, et al. Bile acids: natural ligands for an orphan nuclear receptor. Science. 1999; 284: 1365-1368.

10. Modica S, Gadaleta RM, Moschetta A. Deciphering the nuclear bile acid receptor FXR paradigm. Nucl Recept Signal. 2010; 8: e005.

11. Piglionica M, Cariello M, Moschetta A. The gut-liver axis in hepatocarcinoma: a focus on the nuclear receptor FXR and the enterokine FGF19. Curr Opin Pharmacol. 2018; 43: 93-98.

12. Jiang C, Xie C, Li F, et al. Intestinal farnesoid X receptor signaling promotes nonalcoholic fatty liver disease. J Clin Invest. 2015; 125: 386-402.

13. Goodwin B, Jones SA, Price RR, et al. A regulatory cascade of the nuclear receptors FXR, SHP-1, and LRH-1 represses bile acid biosynthesis. Mol Cell. 2000; 6: 517- 526.

14. Lu TT, Makishima M, Repa JJ, et al. Molecular basis for feedback regulation of bile acid synthesis by nuclear receptors. Mol Cell. 2000; 6: 507-515.

15. Sinal CJ, Tohkin M, Miyata M, Ward JM, Lambert G, Gonzalez FJ. Targeted disruption of the nuclear receptor FXR/BAR impairs bile acid and lipid homeostasis. Cell. 2000; 102: 731-744.

16. Ananthanarayanan M, Balasubramanian N, Makishima M, Mangelsdorf DJ, Suchy FJ. Human bile salt export pump promoter is transactivated by the farnesoid X receptor/bile acid receptor. J Biol Chem. 2001; 276: 28857-28865.

17. Lambert G, Amar MJ, Guo G, Brewer HB, Jr., Gonzalez FJ, Sinal CJ. The farnesoid X-receptor is an essential regulator of cholesterol homeostasis. J Biol Chem. 2003; 278: 2563-2570.

18. Miyake JH, Doung XD, Strauss W, et al. Increased production of apolipoprotein B- containing lipoproteins in the absence of hyperlipidemia in transgenic mice expressing cholesterol 7alpha-hydroxylase. J Biol Chem. 2001; 276: 23304-23311.

19. Liu Y, Song A, Yang X, et al. Farnesoid X receptor agonist decreases lipid accumulation by promoting hepatic fatty acid oxidation in db/db mice. Int J Mol Med. 2018; 42: 1723-1731.

20. Pineda Torra I, Claudel T, Duval C, Kosykh V, Fruchart JC, Staels B. Bile acids induce the expression of the human peroxisome proliferator-activated receptor alpha gene via activation of the farnesoid X receptor. Mol Endocrinol. 2003; 17: 259-272.

21. Zhou H, Hylemon PB. Bile acids are nutrient signaling hormones. Steroids. 2014;86: 62-68.

22. Kliewer SA, Mangelsdorf DJ. Bile Acids as Hormones: The FXR-FGF15/19 Pathway. Dig Dis. 2015; 33: 327-331.

23. Watanabe S, Fujita K, Tsuneyama K, Nose M. Changes in liver lipidomics associated with sodium cholate-induced liver injury and its prevention by boiogito, a Japanese herbal medicine, in mice. Traditional & Kampo Medicine. 2016; 3: 9- 19.

24. Qian W, Hasegawa J, Cai X, et al. Components of Boiogito Suppress the Progression of Hypercholesterolemia and Fatty Liver Induced by High-Cholesterol Diet in Rats. Yonago Acta Med. 2016; 59: 67-80.

25. Qian W, Hasegawa J, Tsuno S, Endo Y, Matsuda A, Miura N. Effects of kampo formulas on the progression of hypercholesterolemia and Fatty liver induced by high-cholesterol diet in rats. Yonago Acta Med. 2014; 57: 147-158.

26. Zollner G, Trauner M. Mechanisms of cholestasis. Clin Liver Dis. 2008; 12: 1-26, vii.

27. Allen K, Jaeschke H, Copple BL. Bile acids induce inflammatory genes in hepatocytes: a novel mechanism of inflammation during obstructive cholestasis. Am J Pathol. 2011; 178: 175-186.

28. Trauner M, Meier PJ, Boyer JL. Molecular pathogenesis of cholestasis. N Engl J Med. 1998; 339: 1217-1227.

29. Hofmann AF. Detoxification of lithocholic acid, a toxic bile acid: relevance to drug hepatotoxicity. Drug Metab Rev. 2004; 36: 703-722.

30. Beilke LD, Besselsen DG, Cheng Q, Kulkarni S, Slitt AL, Cherrington NJ. Minimal role of hepatic transporters in the hepatoprotection against LCA-induced intrahepatic cholestasis. Toxicol Sci. 2008; 102: 196-204.

31. Wang YG, Zhou JM, Ma ZC, et al. Pregnane X receptor mediated-transcription regulation of CYP3A by glycyrrhizin: a possible mechanism for its hepatoprotective property against lithocholic acid-induced injury. Chem Biol Interact. 2012; 200: 11- 20.

32. Zeng H, Li D, Qin X, et al. Hepatoprotective Effects of Schisandra sphenanthera Extract against Lithocholic Acid-Induced Cholestasis in Male Mice Are Associated with Activation of the Pregnane X Receptor Pathway and Promotion of Liver Regeneration. Drug Metab Dispos. 2016; 44: 337-342.

33. Miyata M, Nomoto M, Sotodate F, et al. Possible protective role of pregnenolone- 16 alpha-carbonitrile in lithocholic acid-induced hepatotoxicity through enhanced hepatic lipogenesis. Eur J Pharmacol. 2010; 636: 145-154.

34. Nomoto M, Miyata M, Shimada M, et al. ME3738 protects against lithocholic acid- induced hepatotoxicity, which is associated with enhancement of biliary bile acid and cholesterol output. Eur J Pharmacol. 2007; 574: 192-200.

35. Fujita K, Iguchi Y, Une M, Watanabe S. Ursodeoxycholic Acid Suppresses Lipogenesis in Mouse Liver: Possible Role of the Decrease in β-Muricholic Acid, a Farnesoid X Receptor Antagonist. Lipids. 2017; 52: 335-344.

36. Fickert P, Fuchsbichler A, Marschall HU, et al. Lithocholic acid feeding induces segmental bile duct obstruction and destructive cholangitis in mice. Am J Pathol. 2006; 168: 410-422.

37. Owen BM, Milona A, van Mil S, et al. Intestinal detoxification limits the activation of hepatic pregnane X receptor by lithocholic acid. Drug Metab Dispos. 2010; 38: 143-149.

38. Cheng J, Fang ZZ, Kim JH, et al. Intestinal CYP3A4 protects against lithocholic acid-induced hepatotoxicity in intestine-specific VDR-deficient mice. J Lipid Res. 2014; 55: 455-465.

39. Al-Dury S, Marschall HU. Ileal Bile Acid Transporter Inhibition for the Treatment of Chronic Constipation, Cholestatic Pruritus, and NASH. Front Pharmacol. 2018; 9: 931.

40. Aldini R, Roda A, Lenzi PL, et al. Bile acid active and passive ileal transport in the rabbit: effect of luminal stirring. Eur J Clin Invest. 1992; 22: 744-750.

41. Chiang JY, Pathak P, Liu H, Donepudi A, Ferrell J, Boehme S. Intestinal Farnesoid X Receptor and Takeda G Protein Couple Receptor 5 Signaling in Metabolic Regulation. Dig Dis. 2017; 35: 241-245.

42. Burrin D, Stoll B, Moore D. Digestive physiology of the pig symposium: intestinal bile acid sensing is linked to key endocrine and metabolic signaling pathways. J Anim Sci. 2013; 91: 1991-2000.

43. Fang S, Suh JM, Reilly SM, et al. Intestinal FXR agonism promotes adipose tissue browning and reduces obesity and insulin resistance. Nat Med. 2015; 21: 159-165.

44. Moris D, Giaginis C, Tsourouflis G, Theocharis S. Farnesoid-X Receptor (FXR) as a Promising Pharmaceutical Target in Atherosclerosis. Curr Med Chem. 2017; 24: 1147-1157.

45. Watanabe M, Houten SM, Wang L, et al. Bile acids lower triglyceride levels via a pathway involving FXR, SHP, and SREBP-1c. J Clin Invest. 2004; 113: 1408-1418.

46. Jiang C, Xie C, Lv Y, et al. Intestine-selective farnesoid X receptor inhibition improves obesity-related metabolic dysfunction. Nat Commun. 2015; 6: 10166.

47. Heuman DM. Quantitative estimation of the hydrophilic-hydrophobic balance of mixed bile salt solutions. J Lipid Res. 1989; 30: 719-730.

48. Bligh EG, Dyer WJ. A rapid method of total lipid extraction and purification. Can J Biochem Physiol. 1959; 37: 911-917.

49. Watanabe S, Tsuneyama K. Cattle bile but not bear bile or pig bile induces lipid profile changes and fatty liver injury in mice: mediation by cholic acid. J Toxicol Sci. 2012; 37: 105-121.

50. Eyssen H, De Pauw G, Stragier J, Verhulst A. Cooperative formation of omega- muricholic acid by intestinal microorganisms. Appl Environ Microbiol. 1983; 45: 141-147.

51. Wang DQ, Tazuma S. Effect of beta-muricholic acid on the prevention and dissolution of cholesterol gallstones in C57L/J mice. J Lipid Res. 2002; 43: 1960- 1968.

52. Miyazaki M, Kim YC, Ntambi JM. A lipogenic diet in mice with a disruption of the stearoyl-CoA desaturase 1 gene reveals a stringent requirement of endogenous monounsaturated fatty acids for triglyceride synthesis. J Lipid Res. 2001; 42: 1018- 1024.

53. Attie AD, Krauss RM, Gray-Keller MP, et al. Relationship between stearoyl-CoA desaturase activity and plasma triglycerides in human and mouse hypertriglyceridemia. J Lipid Res. 2002; 43: 1899-1907.

54. Armstrong MJ, Carey MC. The hydrophobic-hydrophilic balance of bile salts. Inverse correlation between reverse-phase high performance liquid chromatographic mobilities and micellar cholesterol-solubilizing capacities. J Lipid Res. 1982; 23: 70-80.

55. Altmann SW, Davis HR, Jr., Zhu LJ, et al. Niemann-Pick C1 Like 1 protein is critical for intestinal cholesterol absorption. Science. 2004; 303: 1201-1204.

56. Berr F, Kullak-Ublick GA, Paumgartner G, Münzing W, Hylemon PB. 7 alpha- dehydroxylating bacteria enhance deoxycholic acid input and cholesterol saturation of bile in patients with gallstones. Gastroenterology. 1996; 111: 1611-1620.

57. Vital M, Rud T, Rath S, Pieper DH, Schlüter D. Diversity of Bacteria Exhibiting Bile Acid-inducible 7α-dehydroxylation Genes in the Human Gut. Comput Struct Biotechnol J. 2019; 17: 1016-1019.

58. Eyssen HJ, De Pauw G, Van Eldere J. Formation of hyodeoxycholic acid from muricholic acid and hyocholic acid by an unidentified gram-positive rod termed HDCA-1 isolated from rat intestinal microflora. Appl Environ Microbiol. 1999; 65: 3158-3163.

59. Xi Y, Li H. Role of farnesoid X receptor in hepatic steatosis in nonalcoholic fatty liver disease. Biomed Pharmacother. 2020; 121: 109609.

60. Sayin SI, Wahlström A, Felin J, et al. Gut microbiota regulates bile acid metabolism by reducing the levels of tauro-beta-muricholic acid, a naturally occurring FXR antagonist. Cell Metab. 2013; 17: 225-235.

61. Guerciolini R. Mode of action of orlistat. Int J Obes Relat Metab Disord. 1997; 21 Suppl 3: S12-23.

62. Jang HR, Park HJ, Kang D, et al. A protective mechanism of probiotic Lactobacillus against hepatic steatosis via reducing host intestinal fatty acid absorption. Exp Mol Med. 2019; 51: 1-14.

63. Shimada T, Akase T, Kosugi M, Aburada M. Preventive Effect of Boiogito on Metabolic Disorders in the TSOD Mouse, a Model of Spontaneous Obese Type II Diabetes Mellitus. Evid Based Complement Alternat Med. 2011; 2011: 931073.

参考文献をもっと見る

全国の大学の
卒論・修論・学位論文

一発検索!

この論文の関連論文を見る