リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

大学・研究所にある論文を検索できる 「Prognostic stratification for IDH-wild-type lower-grade astrocytoma by Sanger sequencing and copy-number alteration analysis with MLPA」の論文概要。リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

コピーが完了しました

URLをコピーしました

論文の公開元へ論文の公開元へ
書き出し

Prognostic stratification for IDH-wild-type lower-grade astrocytoma by Sanger sequencing and copy-number alteration analysis with MLPA

Makino, Yasuhide 京都大学 DOI:10.14989/doctor.k23780

2022.03.23

概要

【背景】
IDH 変異、1p/19q 共欠失、ヒストン H3 変異など神経膠腫の特徴となる遺伝子変異と予後の関連が明らかになってきた。しかし、これらを有しない神経膠腫、特に低悪性度星細胞腫の特徴は依然として明らかではない。cIMPACT-NOW update 3 では、IDH 野生型低悪性度星細胞腫のうち、chromosome 7 gain とchromosome 10 loss の両者、EGFR amplification、TERT プロモーター変異の3 項目に1 つ以上合致するものは予後不良として悪性度因子に採用することを推奨した。これらのEGFR、chromosome 7と 10 の両腕のコピー数解析をする方法として、SNP アレイ、DNA メチル化アレイ、染色体マイクロアレイ、次世代シークエンサーなどによる全ゲノム解析などがあるが、手法、コストの面から日常的に使用できるものではない。Multiplex ligation-dependentprobe amplification(MLPA)は、標的のコピー数変異を比較的低コストで検出できる手法である。本研究では、サンガーシークエンスと MLPA を組み合わせて悪性度因子を検出することで、予後不良の星細胞腫を同定できるかを検証し、さらにその他の予後因子を検索した。

【方法】
42 症例を対象に、摘出手術標本からDNA を抽出し、サンガーシークエンスとMLPA、メチル化特異的qPCR を行った。サンガーシークエンスはIDH1/2、TERT プロモーターとH3F3A、HIST1H3Bを対象として行った。MLPAはSALSAMLPA KIT probemixP105 を使用し、EGFR、PTEN、PDGFRA などを標的としたコピー数解析を行った。メチル化特異的qPCR ではMGMT プロモーターのメチル化を検索した。初回手術以降の臨床経過が追跡可能である 40 症例を対象に生存解析を実施した。P105 で検出したchromosome 7 とchromosome 10 のコピー数変異を検証するために、全症例に対してSALSA MLPA KIT probemix P309 とP370 を用いてMLPA 解析を行い、さらに9 症例に対して染色体マイクロアレイ解析を行った。

【結果】
21 症例が cIMPACT-NOW update3 における悪性度因子を有し、予後不良群に分類された。これらは全例がTERT プロモーター変異、もしくはEGFR amplification を有しており、サンガーシークエンスとMLPA によって特定することが可能であった。P105で検出した chromosome 7とchromosome 10のコピー数変異検証では、P105でEGFRgain とPTEN loss の両者を示す症例のすべてが、chromosome 7 gain と chromosome10 loss を示しており、この対象群においてMLPA でのEGFR gain とPTEN loss の検出が、chromosome 7 とchromosome 10 のコピー数異常の検出に高い信頼性を持つことを明らかにした。予後解析では、悪性度因子を有する予後不良群がその他の群に比較して予後不良であることを同定した。COX 比例ハザード解析では、PTEN loss とPDGFRAamplification が独立した予後不良因子であることを明らかにした。

【結語】
サンガーシークエンスとMLPA を用いたコピー数変異解析は、IDH 野生型低悪性度星細胞腫の生存予後の層別化が可能であった。さらに、PTEN loss と PDGFRAamplification が新たな独立した予後因子であることを示唆した。

この論文で使われている画像

参考文献

1. Ostrom, Q. T. et al. CBTRUS statistical report: Primary brain and central nervous system tumors diagnosed in the United States in 2007–2011. Neuro Oncol. 16, iv1–iv63. https://doi.org/10.1093/neuonc/nou223 (2014).

2. Louis, D. N. et al. Te 2007 WHO Classifcation of Tumours Of Te Central Nervous System. Acta Neuropathol. 114, 97–109. https://doi.org/10.1007/s00401-007-0243-4 (2007).

3. Yan, H. et al. IDH1 and IDH2 mutations in gliomas. N. Engl. J. Med. 360, 765–773. https://doi.org/10.1056/NEJMoa0808710 (2009).

4. Cairncross, J. G. et al. Specifc genetic predictors of chemotherapeutic response and survival in patients with anaplastic oligodendrogliomas. JNCI J. Natl. Cancer Inst. 90, 1473–1479. https://doi.org/10.1093/jnci/90.19.1473 (1998).

5. Cavenee, W. K., Louis, D. N., Ohgaki, H., Wiestler, O. D. & International Agency for Research on Cancer. WHO Classifcation of Tumours of the Central Nervous System 4th edn. (International Agency for Research on Cancer, 2016).

6. Ceccarelli, M. et al. Molecular profling reveals biologically discrete subsets and pathways of progression in difuse glioma. Cell 164, 550–563. https://doi.org/10.1016/j.cell.2015.12.028 (2016)

7. Eckel-Passow, J. E. et al. Glioma groups based on 1p/19q, IDH, and TERTPromoter mutations in tumors. N. Engl. J. Med. 372, 2499–2508. https://doi.org/10.1056/nejmoa1407279 (2015).

8. Cancer Genome Atlas Research, N et al. Comprehensive, integrative genomic analysis of difuse lower-grade gliomas. N. Engl. J. Med. 372, 2481–2498. https://doi.org/10.1056/NEJMoa1402121 (2015).

9. Reuss, D. E. et al. Adult IDH wild type astrocytomas biologically and clinically resolve into other tumor entities. Acta Neuropathol. 130, 407–417. https://doi.org/10.1007/s00401-015-1454-8 (2015).

10. Aibaidula, A. et al. Adult IDH wild-type lower-grade gliomas should be further stratifed. Neuro Oncol. 19, 1327–1337. https:// doi.org/10.1093/neuonc/nox078 (2017).

11. Aoki, K. et al. Prognostic relevance of genetic alterations in difuse lower-grade gliomas. Neuro Oncol. 20, 66–77. https://doi.org/10.1093/neuonc/nox132 (2018).

12. Wijnenga, M. M. J. et al. Molecular and clinical heterogeneity of adult difuse low-grade IDH wild-type gliomas: Assessment of TERT promoter mutation and chromosome 7 and 10 copy number status allows superior prognostic stratifcation. Acta Neuropathol. 134, 957–959. https://doi.org/10.1007/s00401-017-1781-z (2017).

13. Stichel, D. et al. Distribution of EGFR amplifcation, combined chromosome 7 gain and chromosome 10 loss, and TERT promoter mutation in brain tumors and their potential for the reclassifcation of IDHwt astrocytoma to glioblastoma. Acta Neuropathol. 136, 793–803. https://doi.org/10.1007/s00401-018-1905-0 (2018).

14. Tabouret, E. et al. Prognostic impact of the 2016 WHO classifcation of difuse gliomas in the French POLA cohort. Acta Neuropathol. 132, 625–634. https://doi.org/10.1007/s00401-016-1611-8 (2016).

15. Brat, D. J. et al. cIMPACT-NOW update 3: Recommended diagnostic criteria for “Difuse astrocytic glioma, IDH-wildtype, with molecular features of glioblastoma, WHO grade IV”. Acta Neuropathol. 136, 805–810. https://doi.org/10.1007/s00401-018-1913-0(2018).

16. Arita, H. et al. Upregulating mutations in the TERT promoter commonly occur in adult malignant gliomas and are strongly associated with total 1p19q loss. Acta Neuropathol. 126, 267–276. https://doi.org/10.1007/s00401-013-1141-6 (2013).

17. Arita, H. et al. A combination of TERT promoter mutation and MGMT methylation status predicts clinically relevant subgroups of newly diagnosed glioblastomas. Acta Neuropathol. Commun. 4, 79. https://doi.org/10.1186/s40478-016-0351-2 (2016).

18. Bleeker, F. E. et al. IDH1 mutations at residue p.R132 (IDH1(R132)) occur frequently in high-grade gliomas but not in other solid tumors. Hum. Mutat. 30, 7–11. https://doi.org/10.1002/humu.20937 (2009).

19. Jeuken, J., Cornelissen, S., Boots-Sprenger, S., Gijsen, S. & Wesseling, P. Multiplex ligation-dependent probe amplifcation. J. Mol. Diagn. 8, 433–443. https://doi.org/10.2353/jmoldx.2006.060012 (2006).

20. Umehara, T. et al. Distribution diferences in prognostic copy number alteration profles in IDH-wild-type glioblastoma cause survival discrepancies across cohorts. Acta Neuropathol. Commun. 7, 99. https://doi.org/10.1186/s40478-019-0749-8 (2019).

21. Weller, M. et al. Molecular classifcation of difuse cerebral WHO grade II/III gliomas using genome- and transcriptome-wide profling improves stratifcation of prognostically distinct patient groups. Acta Neuropathol. 129, 679–693. https://doi.org/10.1007/s00401-015-1409-0 (2015).

22. Schouten, J. P. Relative quantifcation of 40 nucleic acid sequences by multiplex ligation-dependent probe amplifcation. Nucleic Acids Res. 30, 57e–557. https://doi.org/10.1093/nar/gnf056 (2002).

23. Stupp, R. et al. Radiotherapy plus concomitant and adjuvant temozolomide for glioblastoma. N. Engl. J. Med. 352, 987–996. https:// doi.org/10.1056/NEJMoa043330 (2005).

24. Olar, A. et al. IDH mutation status and role of WHO grade and mitotic index in overall survival in grade II–III difuse gliomas. Acta Neuropathol. 129, 585–596. https://doi.org/10.1007/s00401-015-1398-z (2015).

25. Petersen, J. K. et al. Targeted next-generation sequencing of adult gliomas for retrospective prognostic evaluation and up-front diagnostics. Neuropathol. Appl. Neurobiol. https://doi.org/10.1111/nan.12645 (2020).

26. Akyerli, C. B. et al. Use of telomerase promoter mutations to mark specifc molecular subsets with reciprocal clinical behavior in IDH mutant and IDH wild-type difuse gliomas. J. Neurosurg. 128, 1102–1114. https://doi.org/10.3171/2016.11.jns16973 (2018).

27. Brito, C. et al. Clinical insights gained by refning the 2016 WHO classifcation of difuse gliomas with: EGFR amplifcation, TERT mutations, PTEN deletion and MGMT methylation. BMC Cancer https://doi.org/10.1186/s12885-019-6177-0 (2019).

28. Cancer Genome Atlas Research, N. Comprehensive genomic characterization defnes human glioblastoma genes and core pathways. Nature 455, 1061–1068. https://doi.org/10.1038/nature07385 (2008).

29. Verhaak, R. G. W. et al. Integrated genomic analysis identifes clinically relevant subtypes of glioblastoma characterized by abnormalities in PDGFRA, IDH1, EGFR, and NF1. Cancer Cell 17, 98–110. https://doi.org/10.1016/j.ccr.2009.12.020 (2010).

30. Srividya, M. R. et al. Homozygous 10q23/PTEN deletion and its impact on outcome in glioblastoma: A prospective translational study on a uniformly treated cohort of adult patients. Neuropathology 31, 376–383. https://doi.org/10.1111/j.1440-1789.2010.01178.x (2011).

31. Carico, C. et al. Loss of PTEN is not associated with poor survival in newly diagnosed glioblastoma patients of the temozolomide era. PLoS ONE 7, e33684. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0033684 (2012).

32. Sabha, N. et al. Analysis of IDH mutation, 1p/19q deletion, and PTEN loss delineates prognosis in clinical low-grade difuse gliomas. Neuro Oncol. 16, 914–923. https://doi.org/10.1093/neuonc/not299 (2014).

33. Cristofano, A. D., Pesce, B., Cordon-Cardo, C. & Pandolf, P. P. Pten is essential for embryonic development and tumour suppression. Nat. Genet. 19, 348–355. https://doi.org/10.1038/1235 (1998).

34. Knobbe, C. B., Merlo, A. & Reifenberger, G. Pten signaling in gliomas. Neuro Oncol. 4, 196–211 (2002).

35. Sturm, D. et al. Hotspot mutations in H3F3A and IDH1 defne distinct epigenetic and biological subgroups of glioblastoma. Cancer Cell 22, 425–437. https://doi.org/10.1016/j.ccr.2012.08.024 (2012).

36. Martinho, O. et al. Expression, mutation and copy number analysis of platelet-derived growth factor receptor A (PDGFRA) and its ligand PDGFA in gliomas. Br. J. Cancer 101, 973–982. https://doi.org/10.1038/sj.bjc.6605225 (2009).

37. Puputti, M. et al. Amplifcation of KIT, PDGFRA, VEGFR2, and EGFR in Gliomas. Mol. Cancer Res. 4, 927–934. https://doi.org/10.1158/1541-7786.mcr-06-0085 (2006).

38. Okita, Y. et al. (11)C-methinine uptake correlates with MGMT promoter methylation in nonenhancing gliomas. Clin. Neurol. Neurosurg. 125, 212–216. https://doi.org/10.1016/j.clineuro.2014.08.004 (2014).

39. Esteller, M., Hamilton, S. R., Burger, P. C., Baylin, S. B. & Herman, J. G. Inactivation of the DNA repair gene O6-methylguanineDNA methyltransferase by promoter hypermethylation is a common event in primary human neoplasia. Can. Res. 59, 793–797 (1999).

40. Jeuken, J. et al. Robust detection of EGFR copy number changes and EGFR variant III: Technical aspects and relevance for glioma diagnostics. Brain Pathol. 19, 661–671. https://doi.org/10.1111/j.1750-3639.2009.00320.x (2009).

参考文献をもっと見る

全国の大学の
卒論・修論・学位論文

一発検索!

この論文の関連論文を見る