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Spatiotemporal ATP Dynamics during AKI Predict Renal Prognosis

Yamamoto, Shinya 京都大学 DOI:10.14989/doctor.r13401

2021.03.23

概要

【背景・目的】
高齢化や慢性腎臓病の増加を背景に、急性腎障害の発症頻度は上昇している。従来、急性腎障害は回復可能な病態と考えられてきたが、疫学研究により慢性腎臓病に陥る場合があることが明らかになってきた。近位尿細管は、組織学的に急性腎障害で最も障害を受けやすい部位である。以前の研究で、近位尿細管の障害が短期的には急性腎障害を、長期的には慢性腎臓病や末期腎不全を惹起することが報告されているが、何が腎予後を規定するのかは不明であった。アデノシン三リン酸(ATP)は、細胞運動、物質輸送、生体高分子合成、代謝反応などに重要な役割を果たし、細胞機能を決定する。前述の近位尿細管は、ATP依存性に糖やアミノ酸、電解質などの溶質を再吸収する重要な役割を担っており、極めてATP要求性が高い部位である。そのことから、「急性腎障害における近位尿細管のATP動態が、腎予後を決定する」という仮説を立てた。本研究において、従来不可能であった、生体腎におけるATPの1細胞レベルの時間的・空間的動態の可視化を実現し、その仮説を検証した。

【方法・結果】
まず、細胞質ATP濃度を可視化するFRETバイオセンサーを全身発現させたATP可視化マウスを二光子顕微鏡で観察することで、生体腎における時間的・空間的ATP変動をリアルタイムに捉えることに成功した。次に、急性腎障害の代表的なモデルである虚血再灌流モデル(虚血時間:15分、30分、60分)を用いて、ネフロンセグメントごとにATP変動を平温、または低温条件下で解析した。最後に、慢性期の線維化領域面積と急性期のATP回復との相関を検証した。
腎虚血とともに近位尿細管のATPは数分で速やかに低下する一方、遠位尿細管のATP低下は非常に緩徐で、虚血開始30分後でも保たれており、ネフロンセグメントによりATP挙動が全く異なることが明らかになった。また、再灌流後には近位尿細管のATPは回復したが、その回復速度と回復率は虚血時間によって大きく異なり、長時間虚血後の回復速度は遅く、不完全であった。近位尿細管では、長時間虚血で顕著なミトコンドリア障害を認めることに加え、傍尿細管毛細血管の血流低下や血栓による酸素供給の低下があり、ATPの回復不良の原因であると考えられた。一方、遠位尿細管では長時間虚血でもミトコンドリア形態は保たれておりATP回復も良好であった。低温条件下の虚血では、平温条件下と比べて、近位尿細管のATP回復が著明に改善した。低温条件下60分の虚血時間では平温条件下30分よりATP回復が良好であり、虚血時間を2倍にしても、なおATP回復が良好であることがわかった。また慢性期の線維化領域面積は、急性期の近位尿細管ATP回復と強い負の相関を認めた。

【結論・考察】
ATP可視化技術を用いて、生体腎における急性腎障害時のATP動態を世界で初めて明らかにした。また、遠位尿細管が虚血性急性腎障害に抵抗性であることが形態的評価だけでなく、エネルギー代謝の側面からも示された。さらに、急性腎障害における近位尿細管のATP回復は、障害度を反映するだけではなく、腎予後とも相関することを示し、エネルギー代謝の恒常性破綻が急性腎障害の予後と密接に関連することを明らかにした。また低温条件下の虚血では、平温条件下に比して、ATPの回復が著明に改善することを証明し、低温療法の有効性を見出した。このATP可視化技術は、将来的に急性腎障害治療薬開発や移植臓器保護の技術向上に繋がることが期待される。

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参考文献

1. Lewington AJ, Cerda J, and Mehta RL: Raising awareness of acute kidney injury: a global perspective of a silent killer. Kidney Int 84: 457-467, 2013.

2. Chertow GM, Burdick E, Honour M, Bonventre JV, and Bates DW: Acute kidney injury, mortality, length of stay, and costs in hospitalized patients. J Am Soc Nephrol 16: 3365-3370, 2005.

3. Coca SG, Singanamala S, and Parikh CR: Chronic kidney disease after acute kidney injury: a systematic review and meta-analysis. Kidney Int 81:442-448, 2012.

4. Ishani A, Xue, JL, Himmelfarb, J, Eggers, PW, Kimmel, PL, Molitoris, BA, et al.: Acute kidney injury increases risk of ESRD among elderly. J Am Soc Nephrol 20: 223-228, 2009.

5. Sato, Y, Takahashi, M, Yanagita, M: Pathophysiology of AKI to CKD progression. Semin Nephrol 40: 206-215, 2020.

6. Lan R, Geng H, Singha PK, Saikumar P, Bottinger EP, Weinberg JM, et al.: Mitochondrial Pathology and Glycolytic Shift during Proximal Tubule Atrophy after Ischemic AKI. J Am Soc Nephrol 27: 3356-3367, 2016.

7. Kang, HM, Ahn, SH, Choi, P, Ko, YA, Han, SH, Chinga, F, et al.: Defective fatty acid oxidation in renal tubular epithelial cells has a key role in kidney fibrosis development. Nat Med 21·. 3Ί-46, 2015.

8. Tran, MT, Zsengeller, ZK, Berg, AH, Khankin, EV, Bhasin, MK, Kim, W, et al.: PGC1 alpha drives NAD biosynthesis linking oxidative metabolism to renal protection. Wwre 531: 528-532, 2016.

9. Szeto HH: Pharmacologic Approaches to Improve Mitochondrial Function in AKI and CKD. J Am Soc Nephrol 28: 2856-2865, 2017.

10. Poyan Mehr A, Tran, MT, Ralto, KM, Leaf, DE, Washco, V, Messmer, J, et al.: De novo NAD(+) biosynthetic impairment in acute kidney injury in humans. Nature Med 24:1351-1359, 2018.

11. Knowles JR: Enzyme-catalyzed phosphoryl transfer reactions. Annu Rev Biochem 49: 877-919,1980.

12. Siegel NJ, Devaraj an P, and Van Why S: Renal cell injury: metabolic and structural alterations. Pediatr Res 36:129-136, 1994.

13. Avison MJ, van Waarde A, Stromski ME, Gaudio K, and Siegel NJ: Metabolic alterations in the kidney during ischemic acute renal failure. Semin Nephrol 9: 98-101, 1989.

14. Stromski ME, Cooper K, Thulin G, Gaudio KM, Siegel NJ, and Shulman RG: Chemical and functional correlates of postischemic renal ATP levels. Proc Natl Acad Sei USA 83: 6142-6145, 1986.

15. Vogt MT, and Farber E: On the molecular pathology of ischemic renal cell death. Reversible and irreversible cellular and mitochondrial metabolic alterations. Am J Pathol 53:1-26, 1968.

16. Uchida S, and Endou H: Substrate specificity to maintain cellular ATP along the mouse nephron. Am J Physiol 255: F977-983, 1988.

17. Wirthensohn G, and Guder WG: Renal substrate metabolism. Physiol Rev 66: 469-497, 1986.

18. Bagnasco S, Good D, Balaban R, and Burg M: Lactate production in isolated segments of the rat nephron. Am J Physiol 248: F522-526, 1985.

19. Vandewalle A, Wirthensohn G, Heidrich HG, and Guder WG: Distribution of hexokinase and phosphoenolpyruvate carboxykinase along the rabbit nephron. Am J Physiol 240: F492-500, 1981.

20. Sharfuddin AA, and Molitoris BA: Pathophysiology of ischemic acute kidney injury. Nat Rev NephrolT. 189-200, 2011.

21. Lieberthal W, and Nigam SK: Acute renal failure. I. Relative importance of proximal vs. distal tubular injury. Am J Physiol 275: F623-31, 1998.

22. Imamura H, Nhat, KP, Togawa, H, Saito, K, lino, R, Kato-Yamada, et al.: Visualization of ATP levels inside single living cells with fluorescence resonance energy transfer-based genetically encoded indicators. Proc Natl Acad Sci U S A 106: 15651-15656, 2009.

23. Yamamoto M, Kim M, Imai H, Itakura Y, and Ohtsuki G: Microglia-Triggered Plasticity of Intrinsic Excitability Modulates Psychomotor Behaviors in Acute Cerebellar Inflammation. Cell Rep 28: 2923-2938.e8, 2019.

24. Ashworth SL, Sandoval RM, Tanner GA, and Molitoris BA: Two-photon microscopy: visualization of kidney dynamics. Kidney Int 72: 416-421, 2007.

25. Peti-Peterdi J, Kidokoro K, and Riquier-Brison A: Novel in vivo techniques to visualize kidney anatomy and function. Kidney Int 88: 44-51, 2015.

26. Nakano, M, Imamura, H, Sasaoka, N, Yamamoto, M, Uemura, N, Shudo, T, et al.: ATP Maintenance via Two Types of ATP Regulators Mitigates Pathological Phenotypes in Mouse Models of Parkinson’s Disease. EBioMedicine 22: 225-241, 2017.

27. Endo, T, Nakamura, J, Sato, Y, Asada, M, Yamada, R, Takase, et al.: Exploring the origin and limitations of kidney regeneration. J Pathol 236: 251-263, 2015.

28. Hall AM, Rhodes GJ, Sandoval RM, Corridon PR, and Molitoris BA: In vivo multiphoton imaging of mitochondrial structure and function during acute kidney injury. Kidney Int 83: 72-83, 2013.

29. Kalakeche, R, Hato, T, Rhodes, G, Dunn, KW, El-Achkar, TM, Plotkin, Z, et al.: Endotoxin uptake by SI proximal tubular segment causes oxidative stress in the downstream S2 segment. J Am Soc Nephrol 22:1505-1516, 2011.

30. Sano, T, Kobayashi, T, Negoro, H, Sengiku, A, Hiratsuka, T, Kamioka, Y, et al.: Intravital imaging of mouse urothelium reveals activation of extracellular signal-regulated kinase by stretch-induced intravesical release of ATP. Physiol Rep 4, 2016.

31. Takaori, K, Nakamura, J, Yamamoto, S, Nakata, H, Sato, Y, Takase, M, et al.: Severity and Frequency of Proximal Tubule Injury Determines Renal Prognosis. J Am Soc Nephrol. 27: 2393-2406, 2016.

32. Nakano M, Imamura H, Nagai T, and Noji H: Ca(2)(+) regulation of mitochondrial ATP synthesis visualized at the single cell level. ACS Chem Biol 6: 709-715, 2011.

33. Molitoris BA, and Sandoval RM: Intravital multiphoton microscopy of dynamic renal processes. Am J Physiol Renal Physiol 288: Fl 084-9, 2005.

34. Nakano, D, Doi, K, Kitamura, H, Kuwahara, T, Mori, K, Mukoyama, M, et al.: Reduction of Tubular Flow Rate as a Mechanism of Oliguria in the Early Phase of Endotoxemia Revealed by Intravital Imaging. J Am Soc Nephrol 26: 3035-3044, 2015.

35. Hato, T, Winfree, S, Day, R, Sandoval, RM, Molitoris, BA, Yoder, MC, et al.: Two-Photon Intravital Fluorescence Lifetime Imaging of the Kidney Reveals Cell-Type Specific Metabolic Signatures. J Am Soc Nephrol 28: 2420-2430, 2017.

36. Cuzick J: A Wilcoxon-type test for trend. Stat Med 4: 87-90, 1985.

37. Kang JJ, Toma I, Sipos A, McCulloch F, and Peti-Peterdi J: Quantitative imaging of basic functions in renal (patho)physiology. Am J Physiol Renal Physiol 291: F495-502, 2006.

38. He, L, Wei, Q, Liu, J, Yi, M, Liu, Y, Liu, H, et al.:AKI on CKD: heightened injury, suppressed repair, and the underlying mechanisms. Kidney Int 92:1071-1083, 2017.

39. Ward JP: Determination of the Optimum temperature for regional renal hypothermia during temporary renal ischaemia. Br J Urol 47:17-24, 1975.

40. Zager RA, and Altschuld R: Body temperature: an important determinant of severity of ischemic renal injury. Am J Physiol 251: F87-93, 1986.

41. Niemann, CU, Feiner, J, Swain, S, Bunting, S, Friedman, M, Crutchfield, M, et al.: Therapeutic Hypothermia in Deceased Organ Donors and Kidney-Graft Function. N Engl J Med 313: 405-414, 2015.

42. Breau, RH, Cagiannos, I, Knoll,G, Morash, C, Cnossen, S, Lavallee, LT, et al.: Renal hypothermia during partial nephrectomy for patients with renal tumours: a randomised controlled clinical trial protocol.BMJopen 9: e025662, 2019.

43. Burch, HB, Choi, S, Dence, CN, Alvey, TR, Cole, BR, Lowry, OH, et al.: Metabolic effects of large fructose loads in different parts of the rat nephron. J Biol Chem 255: 8239-8244,1980.

44. Soltoff SP: ATP and the regulation of renal cell fiinction. Annu Rev Physiol 48: 9-31, 1986.

45. Hall AM, Unwin RJ, Parker N, and Duchen MR: Multiphoton imaging reveals differences in mitochondrial function between nephron segments. J Am Soc Nephrol 20: 1293-1302, 2009.

46. Gobe, GC, Johnson, DW: Distal tubular epithelial cells of the kidney: Potential support for proximal tubular cell survival after renal injury. Int J Biochem cell Biol 39: 1551-1561,2007.

47. Zager RA, Gmur DJ, Bredl CR, and Eng MJ: Degree and time sequence of hypothermic protection against experimental ischemic acute renal failure. Circ Res. 65:1263-1269, 1989.

48. Thompson, RH, Lane, BR, Lohse, CM, Leibovich, BC, Fergany, A, Frank, I, et al.: Every minute counts when the renal hilum is clamped during partial nephrectomy. Eur t/ro/58: 340-345, 2010.

49. Funahashi Y, Yoshino Y, Sassa N, Matsukawa Y, Takai S, and Gotoh M: Comparison of warm and cold ischemia on renal function after partial nephrectomy. Urology 84:

50. Volpe, A, Blute, ML, Ficarra, V, Gill, IS, Kutikov, A, Porpiglia, F, et al.: Renal Ischemia and Function After Partial Nephrectomy: A Collaborative Review of the Literature. Eur Urol 68: 61-74, 2015.

51. Simmons MN, Lieser GC, Fergany AF, Kaouk J, and Campbell SC: Association between warm ischemia time and renal parenchymal atrophy after partial nephrectomy. J Urol 189·. 1638-1642, 2013.

52. Wijermars, LG, Schaapherder, AF, de Vries, DK, Verschuren, L, Wust, RC, Kostidis, S, et al.: Defective postreperfusion metabolic recovery directly associates with incident delayed graft function. Kidney Int 90:181-191, 2016.

53. Kurata, H, Takaoka, M, Kubo, Y, Katayama, T, Tsutsui, H, Takayama, J, et al.: Protective effect of nitric oxide on ischemia/reperfusion-induced renal injury and endothelin-1 overproduction. Eur J Pharmacol'. 517: 232-239, 2005.

54. Lempiainen, J, Finckenberg, P, Levijoki, J, Mervaala, E: AMPK activator AICAR ameliorates ischaemia reperfusion injury in the rat kidney. Br J Pharmacol·. 166: 1905-1915,2012.

55. Dare AJ, Bolton EA, Pettigrew GJ, Bradley JA, Saeb-Parsy K, and Murphy MP: Protection against renal ischemia-reperfusion injury in vivo by the mitochondria targeted antioxidant MitoQ. Redox Biol. 5:163-168, 2015.

56. Plotnikov, EY, Chupyrkina, AA, Jankauskas, SS, Pevzner, IB, Silachev, DN, Skulachev, VP, et al.: Mechanisms of nephroprotective effect of mitochondria-targeted antioxidants under rhabdomyolysis and ischemia/reperfusion. Biochim Biophysi Acta 1812: 77-86, 2011.

57. Suzuki, T, Yamaguchi, H, Kikusato, M, Hashizume, 0, Nagatoishi, S, Matsuo, A, et al.: Mitochonic Acid 5 Binds Mitochondria and Ameliorates Renal Tubular and Cardiac Myocyte Damage. J Am Soc Nephrol 27:1925-1932, 2016.

58. Yang HC, Deleuze S, Zuo Y, Potthoff SA, Ma LJ, and Fogo AB: The PPARgamma agonist pioglitazone ameliorates aging-related progressive renal injury. J Am Soc Nephrol 20: 2380-2388, 2009.

59. Wills, LP, Trager, RE, Beeson, GC, Lindsey, CC, Peterson, YK, Beeson, CC, et al.: The beta2-adrenoceptor agonist fbrmoterol stimulates mitochondrial biogenesis. J Pharmacol Exp Ther. 342: 106-118, 2012.

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