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The studies on establishment of artificial insemination protocol in the Japanese macaque

髙江洲, 昇 北海道大学

2022.03.24

概要

ニホンザル(Macacafuscata)は日本の固有種であり、動物園で広く飼育・展示され、野生での生息状況を模すため雌雄混合の群れで飼育されることが多い。しかし、ニホンザルの繁殖力は強く、飼育環境下においても容易に繁殖するため、多くの動物園で飼育個体数過剰が問題となる。繁殖制限のため、オスについては精管切除術、メスについてはプロジェステロン製剤のインプラントが処置されるが、意図しない精管再疎通やサル自身によるインプラント剤の抜去により失敗することが多い。また、ニホンザルの群れは排他的で群れ内の結びつきが強く、外部から個体を導入すると攻撃されて死に至ることがある。結果として、外部からの遺伝子導入がないまま閉鎖的な群れで繁殖を繰り返すことで、遺伝的多様性の低下も問題となる。保存精液を使用した人工授精（AI）が家畜および一部の動物園動物で繁殖管理に利用されており、ニホンザルにおいても精液を提供するオスおよびAIの対象となるメスの選別と厳密な避妊処置により、血統管理と繁殖数管理を同時に実施可能であると考えられる。しかし、ニホンザルのAIについての報告は少なく、凍結保存精液を使用した産子獲得については報告がない。

AIを成功させるには、オスおよびメス両方へのアプローチが必要となる。また動物福祉の改善および実用性の向上のため、侵襲性が低く簡便な方法が求められる。オスについては、精液の採取と保存が課題として挙げられる。ニホンザルの精液採取には直腸プローブによる電気刺激法（EE法）が一般的に用いられるが、同属であるマカク属を含む他の動物種よりも高い電圧が使用されている。また、精液が副生殖腺液の作用により射精後すぐに凝固し、採取精子数や精子運動性を減少させることが知られている。食肉目動物では、α2アドレナリン受容体作動薬の精管収縮作用によって尿管内に分泌された精液を尿管カテーテルの挿入により回収する方法（UC法）が報告されている。霊長目動物におけるUC法の有効性は不明であるが、電気刺激による侵襲なしで精液を回収すること、ならびに通常の射精を伴わないため精液凝固による精子数および運動性に対する負の影響を軽減することが期待できる。

一方、ニホンザルの精液凍結処理において、精液の濃縮と検査のため30分から60分間精液を一時的に保管する時間が必要であるが、精液の短時間保存に適切な温度は動物種によって異なり、ニホンザルの適正保存温度は不明である。また同属のアカゲザルにおいて、精液の冷却速度を速めることで凍結融解後の精子の活性が上昇したという事例が報告されており、ニホンザルの精液凍結処理においても、冷却速度を検討する価値があると考えられる。

第1章では、精液採取技術の改善および侵襲性の低減のため。ニホンザルの精液採取におけるUC法および電気刺激後にUC法を実施する方法（EE-UC法）の有用性について検討した。併せて低電圧刺激での精子採取の有用性を検討するため、低電圧群（3–4–5、4–5–6V）と高電圧群（5–10–15V）の、精液採取率を比較した。また、凍結保存処理中の精液性状改善のため、採取した精液を4˚C、15˚C、25˚Cおよび37˚Cで60分保存した後の精子運動性を比較し、適切な保存温度について検討した。さらに、2次希釈のタイミングと冷却スピードを変えた2種類の冷却方法で精液を凍結保存し、各凍結処理段階および凍結融解後の精子性状を比較した。

その結果、ニホンザルにおいて鎮静量のα2アドレナリン受容体作動薬投与（メデトミジン、25–50µg/kg）ではUC法によって精液は採取できないことが明らかとなった。しかし、EE-UC法によってEE法のみでは採取不可能な尿道内に貯留する液状精液を回収し、総採取精子数を増加させられることが明らかとなった。高電圧群では低電圧群より精子採取率が有意に上昇した。精液採取率を最大にするためには5Vから15Vまでの電圧上昇が必要であるが、個体への侵襲を抑えたい場合は10Vまでの上昇が有効であることが示唆された。精液の保存については、60分間保存した後の前進運動精子率が25˚Cの保存温度下で高い傾向にあり、一時保存温度として25˚Cが適正であることが示唆された。また、二次希釈を冷却前に行い20分で素早く4˚C付近まで冷却することで、60分から90分かけて冷却した後に二次希釈を行う方法に比べ、凍結前の精子運動性が改善した。

一方、AI実施のメス側の課題として、精液注入適期の検査および調整が挙げられる。ニホンザルのAIでは、排卵確認のため排卵前後に複数回の腹腔鏡検査が実施され、精液注入も数日に渡って実施されていた。しかし、検査に伴う頻回の麻酔および外科的処置は侵襲性が高く、動物福祉の観点から改善が必要である。さらに動物園での実施を考慮すると、AIのためにサルを群れから隔離することは、群れ内の順位が混乱し闘争の原因となるため、隔離期間の短縮が求められる。超音波画像診断装置による卵巣動態観察は家畜およびマカク属のサルを含む野生動物において広く実施されているが、ニホンザルにおける報告はない。またAI適期のコントロールに誘起排卵が利用されるが、ニホンザルにおいては性腺刺激ホルモン放出ホルモン（GnRH）の使用例はない。

第2章では超音波画像診断装置によるニホンザルの卵巣動態観察、GnRHによる誘起排卵およびそれらの知見を応用した単回精液注入によるAIの有効性を評価した。超音波画像診断装置によって6回の自然排卵を観察した結果、ニホンザルの自然排卵は生理周期の12–14日目に主席卵胞が7.4±1.5(5.1–9.6)mmの時に起こることが明らかとなった。また主席卵胞が5.8±1.2(4.7–7.4)mmの時、GnRH投与により投与翌日までに排卵を誘起することが明らかとなった。GnRHによる排卵誘起と単回の精液注入を併用した人工授精を生理周期の8–14日目に計7回実施した結果、生理周期の12日目でAIした1頭が妊娠したが、胎齢50日付近における胎子の発達停止が確認された。

本研究から、ニホンザルの精液採取において、EE-UC法によって採取精子数を増加させられることが判明した。また、精液採取には高い電圧が必要であるが、最大10Vの刺激で15Vと同等な精液採取率が得られることが明らかとなった。精液凍結処理については、一時保存には25˚Cが適正であること、二次希釈後に素早く冷却することで精子運動性を改善できることが併せて示された。また、ニホンザルの卵巣動態把握および排卵誘起に関して、超音波画像診断装置とGnRH投与がそれぞれ有効であることが明らかとなった。ニホンザルのAIについて、GnRHを使用した排卵誘起後の単回精子注入により妊娠が達成でき、侵襲性の低減および隔離期間の短縮が可能であることが示された。これらの知見は動物園等のニホンザル飼育施設における人工授精プロトコルの低侵襲化および効率化につながるものであり、将来的なニホンザル飼育群の繁殖管理および動物福祉の改善に貢献するものである。また、絶滅が危惧される近縁種の飼育下繁殖に応用できる可能性もあり、生息域外保全への貢献も期待される。

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参考文献

1) Amato, F., Warnes, G. M., Kirby, C. A. and Norman, R. J. 2002. Infertility caused by hCG autoantibody. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, 87: 993-997.

2) Andrabi, S. M. H. and Maxwell, W. M. C. 2007. A review on reproductive biotechnologies for conservation of endangered mammalian species. Animal Reproduction Science, 99: 223-243.

3) Aoki, K. 2017. Actual state and subjects in zoo, In: Monkey of Japan: mammalogical study of Japanese macaques. (Tsuji, Y. and Nakagawa, N. eds.) pp. 245-264, University of Tokyo Press, Tokyo. (In Japanese)

4) Arakaki, P. R., de Carvalho, F. M., de Castro, P. H. G., Muniz, J. and do Valle, R. D. 2017. Collection, evaluation, and coagulum dissolution of semen from Goeldi's monkey, Callimico goeldii. Folia Primatologica, 88: 334-343.

5) Araujo, G. R., Paula, T. A. R., Deco-Souza, T., Morato, R. G., Bergo, L. C. F., Silva, L. C., Costa, D. S. and Braud, C. 2018. Comparison of semen samples collected from wild and captive jaguars (Panthera onca) by urethral catheterization after pharmacological induction. Animal Reproduction Science, 195: 1-7.

6) Beekman, N. J. C. M., Schaaper, W. M. M., Turkstra, J. A. and Meloen, R. H. 1999. Highly immunogenic and fully synthetic peptide-carrier constructs targetting GnRH. Vaccine, 17: 2043-2050.

7) Bishop, C. V., Sparman, M. L., Stanley, J. E., Bahar, A., Zelinski, M. B. and Stouffer, R. L. 2009. Evaluation of antral follicle growth in the macaque ovary during the menstrual cycle and controlled ovarian stimulation by highresolution ultrasonography. American Journal of Primatology, 71: 384-392.

8) Braunstein, G. D., Bloch, S. K., Rasor, J. L. and Winikoff, J. 1983. Characterization of antihuman chorionic-gonadotropin serum antibody appearing after ovulation induction. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, 57: 1164-1172.

9) Carvalho, F. M., Arakaki, P. R., Nichi, M., Muniz, J., Duarte, J. M. B. and Valle, R. R. 2014. Evaluation of sperm quality in successive regular collections from 53 captive black-and-gold howler monkeys (Alouatta caraya). Animal Reproduction, 11: 11-18.

10) Cavalero, T. M. S., Segabinazzi, L., Scheeren, V. F. C., Canuto, L. E. F., Gobato, M. L. M. and Papa, F. F. 2020. Alternative protocol using imipramine, detomidine, and oxytocin for semen collection in stallion with ejaculatory dysfunction. Journal of Equine Veterinary Science, 93: 103205.

11) Chenault, J. R., Kratzer D. D., Rzepkowski, R. A. and Goodwin, M. C. 1990. LH and FSH response of Holstein heifers to fertirelin acetate, gonadorelin and buserelin. Theriogenology, 34: 81-98.

12) Colazo, M. G. and Mapletoft, R. J. 2014. A review of current timed-AI (TAI) programs for beef and dairy cattle. Canadian Veterinary Journal, 55: 772-780.

13) Cunto, M., Küster, D., Bini, C., Cartolano, C., Pietra, M. and Zambelli, D. 2015. Influence of different protocols of urethral catheterization after pharmacological induction (Ur.Ca.P.I.) on semen quality in the domestic cat. Reproduction in Domestic Animals, 50: 999-1002.

14) Enari, H. and Suzuki, T. 2010. Risk of agricultural and property damage associated with the recovery of Japanese monkey populations. Landscape and Urban Planning, 97: 83-91.

15) Fickel, J., Wagener, A. and Ludwig, A. 2007. Semen cryopreservation and the conservation of endangered species. European Journal of Wildlife Research, 53: 81-89.

16) Fujita, S., Mitsunaga, F., Sugiura, H. and Shimizu, K. 2001. Measurement of urinary and fecal steroid metabolites during the ovarian cycle in captive and wild Japanese macaques, Macaca fuscata. American Journal of Primatology, 53: 167-176.

17) Fukui, D., Nagano, M., Nakamura, R., Bando, G., Nakata, S., Kosuge, M., Sakamoto, H., Matsui, M., Yanagawa, Y. and Takahashi, Y. 2013. The effects of frequent electroejaculation on the semen characteristics of a captive siberian tiger (Panthera tigris altaica). Journal of Reproduction and Development, 59: 491-495.

18) Fumagalli, F., Villagrán, M., Damián, J. and Ungerfeld, R. 2012. Physiological and biochemical parameters in response to electroejaculation in adult and yearling anesthetized pampas deer (Ozotoceros bezoarticus) males. Reproduction in Domestic Animals, 47: 308-312.

19) Gibb, Z. and Aitken, R. J. 2016. Recent developments in stallion semen preservation. Journal of Equine Veterinary Science, 43: S29-S36.

20) Granados, M. D. G., Lopez, L. E. H., Aguilar, A. C., Molina, A. L. C., PerezRamirez, O. and Mondragon-Ceballos, R. 2014. Effect of photoperiod on characteristics of semen obtained by electroejaculation in stump-tailed macaques (Macaca arctoides). Primates, 55: 393-401.

21) Hafez, E. S. E. and Jaszczak, S. 1972. Comparative anatomy and histology of the cervix uteri in non-human primates. Primates, 13: 297-314.

22) Imanishi, K. 1957. Social behavior in Japanese monkey, Macaca fuscata. Psychologia, 1: 47-54.

23) The International Union for Conservation of Nature (IUCN). Red list of threatened species. (https://www.iucnredlist.org/search?taxonomies=130129&searchType=species)

24) Ishikawa, A., Matsui, M., Tsuruga, H., Sakamoto, H., Takahashi, Y. and Kanagawa, H. 1998. Electroejaculation and semen characteristics of the captive Hokkaido brown bear (Ursus arctos yesoensis). Journal of Veterinary Medical Science, 60: 965-968.

25) Itani, J. 1963. Vocal communication of the wild Japanese monkey. Primates, 4: 11-66.

26) Jacobowitz, D. and Koelle, G. B. 1965. Histochemical correlations of acetylcholinesterase and catecholamines in postganglionic autonomic nerves of cat, rabbit and guinea pig. Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics, 148: 225-237.

27) Japanese Association of Zoos and Aquariums. Breeding animal search. (https://www.jaza.jp/animal/search?_keyword=macaca&_method=true#paragra ph-2, In Japanese)

28) Kamischke, A. and Nieschlag, E. 2002. Update on medical treatment of ejaculatory disorders. International Journal of Andrology, 25: 333-344.

29) Kaneko, R. and Miyazaki, K. 1993. Study on semen collection from patients with anejaculation by ellectorostimulation. The Japanese Journal of Urology, 84: 1479-1488.

30) Kanno, C., Sakamoto, K. Q., Yanagawa, Y., Takahashi, Y., Katagiri, S. and Nagano, M. 2017. Comparison of sperm subpopulation structures in first and second ejaculated semen from Japanese black bulls by a cluster analysis of sperm motility evaluated by a CASA system. Journal of Veterinary Medical Science, 79: 1359-1365.

31) Kanno, C., Yanagawa, Y., Takahashi, Y., Katagiri, S. and Nagano, M. 2017. Effects of semen preservation procedure in egg yolk-tris based extender on bull spermatozoa characteristics. Japanese Journal of Veterinary Research, 65: 151- 157.

32) Kappelhof, J. and Windig, J. J. 2021. Controlling inbreeding rate in the European zoo population of hamadryas baboons Papio hamadryas with a breeding circle. Journal of Zoo and Aquarium Research, 9: 26-34.

33) Kinoshita, K., Inada, S., Seki, K., Sasaki, A., Hama, N. and Kusunoki, H. 2011. Long-term monitoring of fecal steroid hormones in female snow leopards (Panthera uncia) during pregnancy or pseudopregnancy. PloS One, 6: e19314

34) Koyama, S., Fukuda, K., Watanabe, S., Kohara, S., Tsuchiya, H., Fukuzaki, K., Nagano, M., Uno, Y. and Hosoi, Y. 2016. Development of a new device for artificial insemination in cynomolgus macaques. Journal of Reproduction and Development, 62: 527-529.

35) Kuczmarski, A. H., Alves De Barros, M., Souza De Lima, L. F., Motheo, T. F., Bento, H. J., Iglesias, G. A., Sônego, D. A. and Rodrigues Da Paz, R. C. 2020. Urethral catheterization after pharmacological induction for semen collection in dog. Theriogenology, 153: 34-38.

36) Leong, S. K. and Singh, G. 1990. Innervation of the monkey vas-deferens. Journal of Anatomy, 171: 93-104.

37) Li, Y. H., Cai, K. J., Kovacs, A. and Ji, W. Z. 2005. Effects of various extenders and permeating cryoprotectants on cryopreservation of cynomolgus monkey (Macaca fascicularis) spermatozoa. Journal of Andrology, 26: 387-395.

38) Lone, F. A., Islam, R., Khan, M. Z. and Sofi, K. A. 2011. Effect of transportation temperature on the quality of cauda epididymal spermatozoa of ram. Animal Reproduction Science, 123: 54-59.

39) Lueders, I. and Allen, W. R. T. 2020. Managed wildlife breeding-an undervalued conservation tool? Theriogenology, 150: 48-54.

40) Lueders, I., Luther, I., Scheepers, G. and van der Horst, G. 2012. Improved semen collection method for wild felids: Urethral catheterization yields high sperm quality in African lions (Panthera leo). Theriogenology, 78: 696-701.

41) Martorana, K., Klooster, K. and Meyers, S. 2014. Suprazero cooling rate, rather than freezing rate, determines post thaw quality of rhesus macaque sperm. Theriogenology, 81: 381-388.

42) Matsubayashi, K. 1982. Comparison of the two methods of electroejaculation in the Japanese monkey (Macaca fuscata). Experimental Animals, 31: 1-6.

43) Matsubayashi, K. and Mochizuki, K. 1982. Growth of male reproductive organs with observation of their seasonal morphologic changes in the Japanese monkey (Macaca fuscata). The Japanese Journal of Veterinary Science, 44: 891-902.

44) Millar, R. P. 2005. GnRHs and GnRH receptors. Animal Reproduction Science, 88: 5-28.

45) Moore, S. G. and Hasler, J. F. 2017. A 100-Year Review: Reproductive technologies in dairy science. Journal of Dairy Science, 100: 10314-10331.

46) Morgan, P. M., Hutz, R. J., Kraus, E. M., Cormie, J. A., Dierschke, D. J. and Bavister, B. D. 1987. Evaluation of ultrasonography for monitoring folliculargrowth in rhesus-monkeys. Theriogenology, 27: 769-780.

47) Morishita, S. 1986. Prompt effect of progesterone on the adrenergic response of smooth muscles. Japanese Journal of Pharmacology, 42: 289-296.

48) Muiño, R., Tamargo, C., Hidalgo, C. O. and Peña, A. I. 2008. Identification of sperm subpopulations with defined motility characteristics in ejaculates from Holstein bulls: Effects of cryopreservation and between-bull variation. Animal Reproduction Science, 109: 27-39.

49) Munro, C. J., Laughlin, L. S., Illera, J. C., Dieter, J., Hendrickx, A. G. and Lasley, B. L. 1997. ELISA for the measurement of serum and urinary chorionic gonadotropin concentrations in the laboratory macaque. American Journal of Primatology, 41: 307-322.

50) Murphy, E. M., O' Meara, C., Eivers, B., Lonergan, P. and Fair, S. 2018. Optimizing storage temperature of liquid bovine semen diluted in INRA96. Journal of Dairy Science, 101: 5549-5558.

51) Nagai, Y., Miyakawa, N., Takuwa, H., Hori, Y., Oyama, K., Ji, B., Takahashi, M., Huang, X.-P., Slocum, S. T., Diberto, J. F., Xiong, Y., Urushihata, T., Hirabayashi, T., Fujimoto, A., Mimura, K., English, J. G., Liu, J., Inoue, K.-I., Kumata, K., Seki, C., Ono, M., Shimojo, M., Zhang, M.-R., Tomita, Y., Nakahara, J., Suhara, T., Takada, M., Higuchi, M., Jin, J., Roth, B. L. and Minamimoto, T. 2020. Deschloroclozapine, a potent and selective chemogenetic actuator enables rapid neuronal and behavioral modulations in mice and monkeys. Nature Neuroscience, 23: 1157-1167.

52) Nakayama, T., Hori, T., Nagasaka, T., Tokura, H. and Tadaki, E. 1971. Thermal and metabolic responses in Japanese monkey at temperatures of 5-38 degrees C. Journal of Applied Physiology, 31: 332-337.

53) Nicholson, H. D., Parkinson, T. J. and Lapwood, K. R. 1999. Effects of oxytocin and vasopressin on sperm transport from the cauda epididymis in sheep. Reproduction, 117: 299-305.

54) Nigi, H. 1977. Laparoscopic observations of ovaries before and after ovulation in the Japanese monkey (Macaca fuscata). Primates, 18: 243-259

55) Nigi, H. 1983. Periovulatory time courses of plasma estradiol and progesterone in the Japanese monkey (Macaca fuscata). Primates, 24: 410-418

56) Nigi H. 1983. Japanese macaque, physiology of reproduction. pp. 146-219, Doubutsu-sha, Tokyo. (In Japanese)

57) Nigi, H., Hayama, S., Sawada, T. and Sakamoto, M. 1991. Estimation of delivery date using biparietal diameter of fetus in Japanese macaque. The 1991 annual meeting of the mammal society of Japan. (In Japanese)

58) Nigi, H. and Torii, R. 1991. Periovulatory time courses of serum LH in the Japanese monkey (Macaca fuscata). Experimental Animals, 40: 401-405.

59) Nomura, T., Nigi, H., Ohsawa, N., Ando, A., Tanaka, T., Tajima, Y. and Kotera, S. 1972. Reproduction of Japanese monkeys. Acta Endocrinologica, 71: 473-482.

60) Oishi, T., Imai, H., Go, Y., Imamura, M., Hirai, H. and Takada, M. 2014. Sporadic premature aging in a Japanese monkey: A primate model for progeria. PloS One, 9: e111867.

61) Paulenz, H., Soderquist, L., Perez-Pe, R. and Berg, K. A. 2002. Effect of different extenders and storage temperatures on sperm viability of liquid ram semen. Theriogenology, 57: 823-836.

62) Perry, G. A., Smith, M. F., Lucy, M. C., Green, J. A., Parks, T. E., MacNeil, M. D., Roberts, A. J. and Geary, T. W. 2005. Relationship between follicle size at insemination and pregnancy success. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 102: 5268-5273.

63) Pezo, F., Romero, F., Zambrano, F. and Sanchez, R. S. 2019. Preservation of boar semen: An update. Reproduction in Domestic Animals, 54: 423-434.

64) Pierson, R. A. and Ginther, O. J. 1988. Ultrasonic-imaging of the ovaries and uterus in cattle. Theriogenology, 29: 21-37.

65) Prochowska, S., Dzimira, S., Tomaszek, A. and Niżański, W. 2021. Immunolocalization of adrenoceptors in the reproductive tract of male domestic cats in comparison to rats. Animals, 11: 1049.

66) Ravindra, J. P., Rawlings, N. C., Evans, A. C. O. and Adams, G. P. 1994. Ultrasonographic study of ovarian follicular dynamics in ewes during the oestrous cycle. Reproduction, 101: 501-509.

67) Roughley, M. and Lyall, M. 2019. Retrograde ejaculation associated with quetiapine and treatment with low-dose imipramine. Bmj Case Reports, 12: e228539.

68) Sanchez-Partida, L. G., Maginnis, G., Dominko, T., Martinovich, C., McVay, B., Fanton, J. and Schatten, G. 2000. Live rhesus offspring by artificial insemination using fresh sperm and cryopreserved sperm. Biology of Reproduction, 63: 1092-1097.

69) Sankai, T., Terao, K., Yanagimachi, R., Cho, F. and Yoshikawa, Y. 1994. Cryopreservation of spermatozoa from cynomolgus monkeys (Macaca fascicularis). Journal of Reproduction and Fertility, 101: 273-278.

70) Schaffer, N., Jeyendran, R. S. and Beehler, B. 1991. Improved sperm collection from the lowland gorilla - recovery of sperm from bladder and urethra following electroejaculation. American Journal of Primatology, 24: 265-271.

71) Schramm, R. D. and Bavister, B. D. 1994. Follicle-stimulating hormone priming of rhesus monkeys enhances meiotic and developmental competence of oocytes matured in vitro. Biology of Reproduction, 51: 904-912.

72) Schramm, R. D. and Bavister, B. D. 1999. A macaque model for studying mechanisms controlling oocyte development and maturation in human and nonhuman primates. Human Reproduction, 14: 2544-2555.

73) Sherwood, N. 1987. The GnRH family of peptides. Trends in Neurosciences, 10: 129-132.

74) Shimozawa, N., Ageyama, N., Nakayama, S., Koie, H. and Yasutomi, Y. 2021. Ultrasound-guided, transabdominal, intrauterine artificial insemination for cynomolgus macaques (Macaca fascicularis) based on estimated timing of ovulation. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science, 60: 125-132.

75) Si, W., Zheng, P., Tang, X. H., He, X. C., Wang, H., Bavister, B. D. and Ji, W. Z. 2000. Cryopreservation of rhesus macaque (Macaca mulatta) spermatozoa and their functional assessment by in vitro fertilization. Cryobiology, 41: 232-240.

76) Sokol, R. Z., McClure, R. D., Peterson, M. and Swerdloff, R. S. 1981. Gonadotropin therapy failure secondary to human chorionic gonadotropininduced antibodies. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, 52: 929- 933.

77) Sukesh, B., Puttabyatappa, M., Peter, A. T., Medhamurthy, R. and Seshagiri, P. 60 B. 2017. Assessment of ovarian follicular dynamics and folliculogenesis associated endocrine profiles following gonadotropin stimulation in the bonnet monkey. General and Comparative Endocrinology, 253: 25-32.

78) Swanson, W., Bateman, H. and Vansandt, L. 2017. Urethral catheterization and sperm vitrification for simplified semen banking in felids. Reproduction in Domestic Animals, 52: 255-260.

79) Thau, R. B., Goldstein, M., Yamamoto, Y., Burrow, G. N., Phillips, D. and Bardin, C. W. 1988. Failure of gonadotropin therapy secondary to chorionic gonadotropin-induced antibodies. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism, 66: 862-867.

80) Thijssen, A., Klerkx, E., Huyser, C., Bosmans, E., Campo, R. and Ombelet, W. 2014. Influence of temperature and sperm preparation on the quality of spermatozoa. Reproductive Biomedicine Online, 28: 436-442.

81) Thomsen, R. 2014. Non-invasive collection and analysis of semen in wild macaques. Primates, 55: 231-237.

82) Tokuda, K. 1961. A study on the sexual behavior in the Japanese monkey troop. Primates, 3: 1-40.

83) Tollner, T. L., Vandevoort, C. A., Overstreet, J. W. and Drobnis, E. Z. 1990. Cryopreservation of spermatozoa from cynomolgus monkeys (Macaca fascicularis). Journal of Reproduction and Fertility, 90: 347-352.

84) Torii, R., Hosoi, Y., Iritani, A., Masuda, Y. and Nigi, H. 1998. Establishment of routine cryopreservation of spermatozoa in the Japanese monkey (Macaca fuscata). Japanese Journal of Fertility and Sterility, 43: 125-131.

85) Torii, R. and Nigi, H. 1992. The artificial fecundation in Japanese monkeys (Macaca fuscata) by induced ovulation and artificial-insemination in nonmating season. Experimental Animals, 41: 243-246.

86) Torii, R. and Nigi, H. 1998. Successful artificial insemination for indoor breeding in the Japanese monkey (Macaca fuscata) and the cynomolgus monkey (Macaca fascicularis). Primates, 39: 399-406.

87) Tsuji, Y. and Nakagawa, N. 2017. Monkeys of Japan: A mammalogical studies of Japanese macaques, University of Tokyo Press. (In Japanese)

88) Turner, R. M. O., McDonnell, S. M. and Hawkins, J. F. 1995. Use of pharmacologically induced ejaculation to obtain semen from a stallion with a fractured radius. Journal of the American Veterinary Medical Association, 206: 1906-1908.

89) Valle, R. R., Guimaraes, M., Muniz, J., Barnabe, R. C. and Vale, W. G. 2004. Collection and evaluation of semen from captive howler monkeys (Alouatta caraya). Theriogenology, 62: 131-138.

90) van Diepen, H. A., Pansier, J., Wesselink, P. O., van Drie, A., van Duin, M. and Mulders, S. 2012. Non-invasive translational cynomolgus model for studying folliculogenesis and ovulation using color doppler ultrasonography. Journal of Medical Primatology, 41: 18-23.

91) Warner, H., Martin, D. E. and Keeling, M. E. 1974. Electroejaculation of the great apes. Annals of Biomedical Engineering, 2: 419-432.

92) Yanagawa, Y., Matsuura, Y., Suzuki, M., Saga, S. I., Okuyama, H., Fukui, D., Bando, G., Nagano, M., Katagiri, S., Takahashi, Y. and Tsubota, T. 2015. Accessory corpora lutea formation in pregnant Hokkaido sika deer (Cervus nippon yesoensis) investigated by examination of ovarian dynamics and steroid hormone concentrations. Journal of Reproduction and Development, 61: 61-66.

93) Yang, S., He, X., Niu, Y., Wang, X., Lu, B., Hildebrandt, T. B., Goeritz, F., Jewgenow, K., Zhou, Q. and Ji, W. 2009. Dynamic changes in ovarian follicles measured by ultrasonography during gonadotropin stimulation in rhesus monkeys. Theriogenology, 72: 560-565.

94) Zambelli, D., Cunto, M., Prati, F. and Merlo, B. 2007. Effects of ketamine or medetomidine administration on quality of electroejaculated sperm and on sperm flow in the domestic cat. Theriogenology, 68: 796-803.

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