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Studies on the ovarian dynamics of brown bears to establish artificial insemination protocol

鳥居, 佳子 北海道大学

2021.03.25

概要

Studies on the ovarian dynamics of brown bears to establish artificial insemination protocol(人工授精技術確立に向けたヒグマの卵巣動態に関する研究)

IUCN(国際自然保護連合)で評価されている哺乳類約5800種のうち800種は、絶滅のおそれがあるとされており、人工繁殖技術は絶滅危惧種の個体群保護・増殖の一助となり得る。人工授精(AI)は、飼育下で繁殖が難しい野生動物における自然交配に代わる有用な技術であると考えられ、実用化できれば交尾行動に問題のある個体や遠隔地で飼育されている個体同士の繁殖が可能となり、遺伝的多様性の維持や個体数増加にも貢献できる。絶滅危惧動物であるホッキョクグマは、遺伝的多様性の低下、飼育個体群の高齢化により自然交配だけでは飼育下個体群を維持することが難しい状況となっている。しかし、同種においては、これまでに8度AIが試みられているものの産子を得るに至っていない。その原因として、AIを実施するのに不可欠な、繁殖生理すなわち発情や卵胞発育の様式および排卵卵胞直径などの情報が得られていないことが挙げられる。超音波検査は、非侵襲的に繰り返し生殖器の観察が可能であることから、繁殖学領域の臨床および研究に広く用いられている。しかし、野生動物および多くの動物園動物では検査実施のために全身麻酔が必要となることから、その利用が制限されている。卵巣動態を解明するためには頻回の超音波検査、つまり麻酔の実施が必要となるため、そのリスクに対する懸念から個体数の少ない動物種ではAI技術確立に必要な基礎情報を収集する調査研究が難しい。そこで本研究は、近縁種であり絶滅危惧種となっていないヒグマをモデル動物として、同種を多数飼育し、かつ麻酔経験が豊富なのぼりべつクマ牧場(登別市)において超音波検査を用いて卵巣動態を調査し、卵胞発育の様式および速度を調べ、さらに発情様式および排卵誘起処置の目安となる卵胞直径を明らかにした。

第1章では、ヒグマの卵巣動態を明らかにするため、超音波画像診断装置を用いて卵巣を観察し、さらに、排卵可能な卵胞直径を明らかにするため排卵誘起処置を施した。また、卵胞発育期間中の内分泌学的評価のため、検査日に血液を採取し、性ステロイドホルモン濃度を測定した。のべ6頭の成熟雌ヒグマを使い、2017年6、7月、2018年5月から7月におよそ週1回(3-11日)の頻度で、麻酔下において超音波検査により卵巣内の構造物を観察記録した。超音波検査には、自作のアタッチメントを超音波検査用I型リニアプローブに装着して経直腸的に卵巣を描出した。その結果、5月には直径6.0mm未満の卵胞が発育と退行を繰り返す波状の発育がみられ、6月から7月にかけて1-2個の卵胞が直径6.0mmを超えて大型の卵胞(>10.0mm)へ発育することが分かった。卵巣に存在する胞状卵胞数は、5月の平均14.4個(4-25個)から6月以降は平均6.2個(1-13個)に減少しており、主席卵胞への選抜が起こっていることが示唆された。また、血中エストラジオール-17β(E2)濃度は、主席卵胞が最大直径を示す約14日前から増加し始め、約7日前に最大値を示し、その後低下していた。さらに卵胞発育速度は、5月(0.15mm/日)に比べて主席卵胞が出現した6月以降で加速していた(0.25mm/日)。6頭中1頭では、約13mmの卵胞の排卵が観察されており、一般には交尾排卵動物と考えられているヒグマにおいても飼育環境下では自然排卵する場合のあることが分かった。また、卵胞発育をモニタリングしていた2頭に対し、卵胞直径が初めて10mmを超えた検査日に排卵誘起のために性腺刺激ホルモン放出ホルモン(GnRH)を筋肉内投与したところ、直径10.2mmの卵胞は排卵し、その後黄体の形成が確認できたことから、直径10.0mm以上の卵胞は排卵を誘起できることが示唆された。一方、直径14.0mmの卵胞は排卵せず、その後、卵胞サイズが小さくなっていったことから、すでに退行過程にあったと考えられた。

第2章では、第1章で確認された卵胞発育および排卵可能な卵胞直径に関する情報の精度向上と発情様式の解明を目的として検討を行った。成熟雌ヒグマ6頭において繁殖期前である4月から排卵後の10月まで卵巣の観察を行い、卵胞発育開始時期の確認および発情様式の決定を行った。第2章では、血中ホルモン濃度に加え、血中ホルモンの影響を受けて変化する腟上皮細胞中の角化細胞率の割合および外陰部の充血・腫脹の変化を記録した。その結果、4月には卵胞発育の開始が確認された。5月から6月にかけては、波状の卵胞発育が認められ、6月以降は直径6.0mmを超えて発育して1-3個の主席卵胞へと選抜されていった。排卵および黄体形成後は主席卵胞の発育は認められなかった。以上の結果から、ヒグマの発情様式は季節性の単発情であることが分かった。第1章の卵胞発育動態を含めて計算した卵胞発育速度は、波状の卵胞発育時の卵胞は0.13mm/日、主席卵胞の発育速度は0.21mm/日であった。一方、血中E2濃度は、卵胞発育が活発となる5月および6月に高値を示し、排卵後は低値を維持していた。角化細胞率および外陰部の変化を示すスコアはE2濃度変動と類似し、5月初期に増加後、主席卵胞消失後には低下し、その後も低値を維持した。以上の角化細胞率および外陰部徴候は、卵胞期の指標にはなるもののAI実施時期の決定指標にはならないことが分かった。

排卵誘起処置は、GnRH製剤を、牛への最大投与量とされる20µgまたはその2倍量である40µgを筋肉内に投与して実施した。卵巣観察を行った6頭中3頭に排卵誘起処置を行い、GnRH投与量によらず排卵が確認された。排卵または黄体形成が確認される直前の検査日(7-9日前)に確認された卵胞直径は、9.4±1.1mm(平均±標準偏差,8.2-11.2mm,n=5)であった。また6頭のうち2頭において自然排卵が認められ、排卵する7日前に観察された卵胞直径は、7.7±1.2mm(5.8-8.8mm,n=6)であった。そのため、自然排卵が生じる可能性を考慮し、AIのための排卵誘起処置時期を決定する卵胞直径は、10.0mmではなく8.0mmが適切であることが考えられた。

本研究は、定期的な超音波検査によってヒグマの卵胞発育および発情様式と排卵可能な卵胞直径を明らかにした。ヒグマは、繁殖期開始前である4月には卵胞の発育が開始され、繁殖期中の5月から6月にかけて発育と退行を繰り返して波状に卵胞が発育し、交尾活動がピークとなる6月以降から卵胞直径6.0mmを超えて主席卵胞への発育が1回だけ認められることが分かった。また、主席卵胞の発育速度は、0.21mm/日であり、それ以前の卵胞発育速度(0.13mm/日)に比べ加速していた。また、繁殖期終了後には主席卵胞の発育が認められなかったため、ヒグマの発情様式は季節性の単発情であり、AIを実施する機会が1年に1回しかないことが明らかとなった。自然排卵の可能性を考慮すると、年1回のAIのチャンスを逃さないためには、排卵誘起処置のタイミングとして、最大卵胞が直径8.0mmになる時期が適切であることが分かった。本研究により、卵胞の発育速度および排卵可能な卵胞直径を調べることで、必要最低限の麻酔頻度で実施できるヒグマのAIプロトコールの確立が可能となった。また、このプロトコールをホッキョクグマなどの絶滅危惧種に応用することで、繁殖生理学に基づいたAIプロトコールの確立が可能となり、絶滅危惧種の飼育下での個体群および遺伝的多様性の維持に寄与すると考えられる。

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参考文献

[1] Wildt DE. The role of reproductive technologies in zoos: Past, present and future. Int Zoo Yearb 2003;38:111–118.

[2] Wildt DE, Bush M, Morton C, Morton F, Howard JG. Semen characteristics and testosterone profiles in ferrets kept in a long-day photoperiod, and the influence of hCG timing and sperm dilution medium on pregnancy rate after laparoscopic insemination. J Reprod Fertil 1989;86:349–358.

[3] Howard JG, Bush M, Morton C, Morton F, Wentzel K, Wildt DE. Comparative semen cryopreservation in ferrets (Mustela putorius furo) and pregnancies after laparoscopic intrauterine insemination with frozen-thawed spermatozoa. J Reprod Fertil 1991;92:109–118.

[4] Moore HDM, Bush M, Celma M, Garcia A ‐L, Hartman TD, Hearn JP, Hodges JK, Jones DM, Knight JA, Monsalve L, Wildt DE. Artificial insemination in the giant panda (Ailuropoda melanoleaca). J Zool 1984;203:269–278.

[5] Czekala N, McGeehan L, Steinman K, Xuebing L, Gual-Sil F. Endocrine monitoring and its application to the management of the giant panda. Zoo Biol 2003;22:389–400.

[6] Belant J, Biggins D, Garelle D, Griebel R., Hughes J. Mustela nigripes. IUCN Red List Threat Species 2015: e.T14020A45200314.

[7] Swaisgood R, Wang D, Wei F. Ailuropoda melanoleuca (errata version published in 2017). IUCN Red List Threat Species, 2016: e.T712A121745669.

[8] Bonney RC, Wood DJ, Kleiman DG. Endocrine correlates of behavioural oestrus in the female giant panda (Ailuropoda melaneleuca) and associated hormonal changes in the male. J Reprod Fertil 1982;64:209–215.

[9] Hodges JK, Bevan DJ, Celma M, Hearn JP, Jones DM, Kleiman DG, Knight JA, Moore DM. Aspects of the reproductive endocrinology of the female giant panda (Ailuropoda metanoleaca) in captivity with special reference to the detection of ovulation and pregnancy. J Zool 1984;203:253–267.

[10] McGeehan L, Li X, Jackintell L, Huang S, Wang A, Czekala NM. Hormonal and behavioral correlates of estrus in captive giant pandas. Zoo Biol 2002;21:449–466.

[11] Durrant BS, Olson MA, Amodeo D, Andersen A, Russ KD, Campos-Morales R, Gual-Still F, Garza JR. Vaginal cytology and vulvar swelling as indicators of impending estrus and ovulation in the giant panda (Ailuropoda melanoleuca). Zoo Biol 2003;22:313–321.

[12] Palmer S, Nelson RA, Ramsay MA, Stirling I, Bahr JM. Annual changes in serum sex steroids in male and female black (Ursus americanus) and polar (Ursus maritimus) bears. Biol Reprod 1988;38:1044–1050. 45

[13] Rosing-Asvid A, Born EW, Kingsley MCS. Age at sexual maturity of males and timing of the mating season of polar bears (Ursus maritimus) in Greenland. Polar Biol 2002;25:878–883.

[14] Stoops MA, MacKinnon KM, Roth TL. Longitudinal fecal hormone analysis for monitoring reproductive activity in the female polar bear (Ursus maritimus). Theriogenology 2012;78:1977–1986.

[15] Knott KK, Mastromonaco GF, Owen MA, Kouba AJ. Urinary profiles of progestin and androgen metabolites in female polar bears during parturient and non-parturient cycles. Conserv Physiol 2017;5:1–12.

[16] Steinman KJ, O’Brien JK, Alan Fetter G, Curry E, Roth TL, Owen MA, Robeck TR. Enzyme immunoassay analysis for androgens in polar bear (Ursus maritimus) urine using enzyme hydrolysis. Aquat Mamm 2017;43:245–253.

[17] Curry E, Wyatt J, Sorel LJ, Mackinnon KM, Roth TL. Ovulation induction and artificial insemination of a captive polar bear (Ursus maritimus) using fresh semen. J Zoo Wildl Med 2014;45:645–649.

[18] Seneca zoo homepage (https://senecaparkzoo.org/anoki-artificial-insemination/).

[19] Miller W, Schuster SC, Welch AJ, Ratan A, Bedoya-Reinaa OC, Zhao F, Kim HL, Burhans RC, Drautz DI, Wittekindt NE, Tomsho LP, Ibarra-Laclette E, Herrera-Estrella L, Peacock E, Farley S, Sage GK, Rode K, Obbard M, Montiel R, Bachmann L, Igolfsson O, Aars J, Mailund T, Wiig O, Talbot SL, Lindqvist C. Polar and brown bear genomes reveal ancient admixture and demographic footprints of past climate change. Proc Natl Acad Sci 2012;109(36):E2382– E2390.

[20] Howard JG, Wildt DE. Approaches and efficacy of artificial insemination in felids and mustelids. Theriogenology 2009;71:130–148.

[21] Tsubota T, Kanagawa H, Takahashi K, Yasue K, Fukunaga S. Observation of sexual behavior under captive conditions in Hokkaido brown bears (Ursus arctos yesoensis). Jpn J Anim Reprod 1985;31:203–210.

[22] Craighead L, Hornocker M, Craighead F. Reproductive biology of young female grizzly bears. J Reprod Fertil Suppl 1969;18:447–475.

[23] Tsubota T, Takahashi Y, Kanagawa H. Changes in serum progesterone levels and growth of fetuses in Hokkaido brown bears. Int Conf Bear Res Manag 1987:355–358.

[24] Tsubota T, Kanagawa H, Yamamoto K, Mano T, Yamanaka M, Kita I, Tiba T. Serum progesterone concentrations using P-EIA kit in captive and free-ranging Hokkaido brown bears, Ursus arctos yesoensis. J Vet Med Sci 1992;54:1–5.

[25] Torii Y, Matsumoto N, Sakamoto H, Nagano M, Katagiri S, Yanagawa Y. Monitoring follicular dynamics using ultrasonography in captive brown bears (Ursus arctos) during the breeding season. Theriogenology 2019;140:164–170.

[26] Ishikawa A, Sakamoto H, Katagiri S, Takahashi Y. Changes in sexual behavior and fecal steroid hormone concentrations during the breeding season in female Hokkaido brown bears (Ursus arctos yesoensis) under captive condition. J Vet Med Sci 2003;65:99–102.

[27] Dehnhard M, Hildebrandt TB, Knauf T, Jewgenow K, Kolter L, Göritz F. Comparative endocrine investigations in three bear species based on urinary steroid metabolites and volatiles. Theriogenology 2006;66:1755–1761.

[28] Hermes R, Olson D, Göritz F, Brown JL, Schmitt DL, Hagan D, Peterson JS, Fritsch G, Hildebrandt TB. Ultrasonography of the estrous cycle in female African elephants (Loxodonta africana). Zoo Biol 2000;19:369–382.

[29] Stoops MA, Pairan RD, Roth TL. Follicular, endocrine and behavioural dynamics of the Indian rhinoceros (Rhinoceros unicornis) oestrous cycle. Reproduction 2004;128:843–856.

[30] Lueders I, Hildebrandt TB, Pootoolal J, Rich P, Gray CS, Niemuller C. Ovarian ultrasonography correlated with fecal progestins and estradiol during the estrous cycle and early pregnancy in giraffes (Giraffa camelopardalis rothschildi). Biol Reprod 2009;81:989–995.

[31] Kirberger RM, Schulman ML, Hartman MJ. Ultrasonographic and laparoscopic evaluation of the reproductive tract of the captive female African lion (Panthera leo). Theriogenology 2011;76:810–818.

[32] Schulman ML, Kirberger RM, Tordiffe ASW, Marker LL, Schmidt-Küntzel A, Hartman MJ. Ultrasonographic and laparoscopic evaluation of the reproductive tract in older captive female cheetahs (Acinonyx jubatus). Theriogenology 2015;84:1611–1619.

[33] Goritz F, Hildebrandt T, Jewgenow K, Wagner N, Hermes R, Strauss G, Meyer HHD. Transrectal ultrasonographic examination of the female urogenital tract in nonpregnant and pregnant captive bears (Ursidae). J Reprod Fertil Suppl 1997;51:303–312.

[34] Hildebrandt TB, Brown JL, Goritz F, Ochs A, Morris P, Sutherland-Smith M. Ultrasonography to assess and enhance health and reproduction in the giant panda. In: Zhang A, Wildt DE, Janssen DL, Zhang H, Ellis S, editors. Giant Pandas Biol Vet Med Manag, Cambridge: Cambridge University Press; 2006, p. 410–439.

[35] Kang HG, Jeong DH, Yang JJ, Lee BK, Kong JY, Lee JW, Kim IH. Serial transrectal ultrasonography for monitoring the reproductive activity of the asiatic black bear (Ursus thibetanus ussuricus). Reprod Domest Anim 2015;50:149–158.

[36] McLellan BN, Proctor MF, Huber D, Michel S. Ursus arctos. IUCN Red List of Threat Species 2017: e.T41688A121229971.

[37] Muhammad Ali Nawaz. Status of the brown bear in Pakistan. Ursus 2007;18:89–100.

[38] Sathyakumar S. Status and management of Asiatic black bear and Himalayan brown bear in India. Ursus 2001;12:21–29.

[39] Swenson JE, Dahle B, Zedrosser A. Action plan for conservation of the brown bear in Europe. Counc Eur Strasbg Cedex 2000;114:1–70.

[40] Gomes-Alves S, Alvarez M, Nicolas M, Lopez -Urueña E, Martínez-Rodríguez C, Borragán S, de Paz P, Anel L. Use of commercial extenders and alternatives to prevent sperm agglutination for cryopreservation of brown bear semen. Theriogenology 2014;82:469–474.

[41] de Paz P, Alvarez-Rodriguez M, Nicolas M, Alvarez M, Chamorro CA, Borragán S, Martínez-Pastor F, Anel L. Optimization of glycerol concentration and freezing rate in the cryopreservation of ejaculate from brown bear (Ursus arctos). Reprod Domest Anim 2012;47:105–112.

[42] Anel L, Álvarez M, Martínez-Pastor F, Gomes S, Nicolás M, Mata M, Martonez AF, Boorágan S, Anel E, de Paz P. Sperm cryopreservation in brown bear (Ursus arctos): Preliminary aspects. Reprod Domest Anim 2008;43:9–17.

[43] Ginther OJ, Bergfelt DR, Kulick LJ, Kot K. Selection of the dominant follicle in cattle: role of estradiol1. Biol Reprod 2000;63:383–389.

[44] Yanagawa Y, Matsuura Y, Suzuki M, Saga S, Okuyama H, Fukui D, Bando G, Nagano M, Katagiri S, Takahashi Y, Tsubota T. Accessory corpora lutea formation in pregnant Hokkaido sika deer (Cervus nippon yesoensis) investigated by examination of ovarian dynamics and steroid hormone concentrations. J Reprod Dev 2015;61:61–66.

[45] Schmidt PM, Chakraborty PK, Wildt DE. Ovarian activity, circulating hormones and sexual behavior in the cat. II. relationships during pregnancy, parturition, lactation and the postpartum estrus. Biol Reprod 1983;28:657-671.

[46] Ginther OJ. Major and minor follicular waves during the equine estrous cycle. J Equine Vet Sci 1993;13:19–25.

[47] Bartlewski PM, Beard AP, Cook SJ, Rawlings NC. Ovarian follicular dynamics during anoestrus in ewes. Reproduction 1998;113:275–285.

[48] Araki H, Tsubota T, Maeda N, Harada N, Kominami S, Mason J, Kita I. Intraovarian immunolocalization of steroidogenic enzymes in a Hokkaido brown bear, Ursus arctos yezoensis during the mating season. J Vet Med Sci 1996:787–790.

[49] Legan SJ, I’Anson H, Fitzgerald BP, Akaydin MS. Importance of short luteal phases in the endocrine mechanism controlling initiation of estrous cycles in anestrous ewes. Endocrinology 1985;117:1530–1536.

[50] Watson ED, Bae SE, Steele M, Thomassen R, Pedersen HG, Bramley T, Hogg CO, Armstrong DG. Expression of messenger ribonucleic acid encoding for steroidogenic acute regulatory protein and enzymes, and luteinizing hormone receptor during the spring transitional season in equine follicles. Domest Anim Endocrinol 2004;26:215–230.

[51] Ginther OJ, Woods BG, Meira C, Beg MA, Bergfelt DR. Hormonal mechanism of follicle deviation as indicated by major versus minor follicular waves during the transition into the anovulatory season in mares. Reproduction 2003;126:653–660.

[52] Douglas DA, Pierson RA, Murphy BD. Ovarian follicular development in mink (Mustela vison). Reproduction 1994;100:583–590.

[53] Saint-Dizier M, Malandain E, Thoumire S, Remy B, Chastant-Maillard S. Expression of follicle stimulating hormone and luteinizing hormone receptors during follicular growth in the domestic cat ovary. Mol Reprod Dev 2007;74:989–996.

[54] Orosz SE, Morris PJ, Doody MC, Niemeyer GP, Cortelyou Lee J, Eaton NL, Lothrop Jr. CD. Stimulation of folliculogenesis in domestic cats with human FSH and LH. Theriogenology 1992;37:993–1004.

[55] Malandain E, Rault D, Froment E, Baudon S, Desquilbet L, Begon D, Chastant-Maillard S. Follicular growth monitoring in the female cat during estrus. Theriogenology 2011;76:1337– 1346.

[56] Boone WR, Keck BB, Catlin JC, Casey KJ, Boone ET, Dye PS, Schuett RJ, Tsubota T, Bahr JC. Evidence that bears are induced ovulators. Theriogenology 2004;61:1163–1169.

[57] Brown JL. Comparative endocrinology of domestic and nondomestic felids. Theriogenology 2006;66:25–36.

[58] Schulz CL, Nelson RA, Pyter LM, Bahr JM. Induction of pseudopregnancy in the American black bear (Ursus americanus). J Exp Zool 2003;298A:162–166.

[59] Okano T. Reproductive physiology and establishment of artificial insemination technique during mating season in Japanese black bears (Ursus thibetanus japonicus). Ph. D. Thesis. Gifu University, 2007.

[60] Roche JF, Mihm M, Diskin MG, Ireland JJ. A review of regulation of follicle growth in cattle. J Anim Sci 1998;76(Suppl 3):16–29.

[61] The IUCN Red List of Threatened Species (https://www.iucnredlist.org/search?taxonomies=101398&searchType=species).

[62] Anel L, Gomes-Alves S, Alvarez M, Borragan S, Anel E, Nicolas M, Mata M, Martinez AF, Borragán S, Anel E, de Paz P. Effect of basic factors of extender composition on post-thawing quality of brown bear electroejaculated spermatozoa. Theriogenology 2010;74:643–651.

[63] Ishikawa A, Matsu M, Sakamoto H, Katagiri S, Takahashi Y. Cryopreservation of the semen collected by electroejaculation from the Hokkaido brown bear (Ursus arctos yesoensis). J Vet Med Sci 2002;64:373–376.

[64] Spady TJ, Lindburg DG, Durrant BS. Evolution of reproductive seasonality in bears. Mamm Rev 2007;37:21–53.

[65] Craighead L, Paetkau D, Reynolds H V, Vyse ER, Strobeck C. Microsatellite analysis of paternity and reproduction in Arctic grizzly bears. J Hered 1995;86:255–261.

[66] Steyaert SMJG, Endrestøl A, Hackländer K, Swenson JE, Zedrosser A. The mating system of the brown bear Ursus arctos. Mamm Rev 2012;42:12–34.

[67] Durrant BS. Reproduction in mammals: captive perspectives. In: Gibbons EF, Durrant BS, Demarest J, editors. Conserv Endanger species Captiv an Interdiscip approach, State University of New York Press; 1995, p. 331–354.

[68] Johnston SD, Roof-Kustritz MV, Olson PNS. Canine and feline theriogenology. 1st ed. New York: Saunders; 2001. Chapter 3. p. 32-40.

[69] Frederick C, Kyes R, Hunt K, Collins D, Durrant B, Wasser SK. Methods of estrus detection and correlates of the reproductive cycle in the sun bear (Helarctos malayanus). Theriogenology 2010;74:1121–1135.

[70] Pierson RA, Ginther OJ. Ultrasonic imaging of the ovaries and uterus in cattle. Theriogenology 1988;29:21–37.

[71] Shimozuru M, Shirane Y, Tsuruga H, Yamanaka M, Nakanishi M, Ishinazaka T, Kasai S, Nose T, Masuda Y, Fujimoto Y, Mano T, Tsubota T. Incidence of multiple paternity and inbreeding in high-density brown bear populations on the Shiretoko Peninsula, Hokkaido, Japan. J Hered 2019;110:321–331.

[72] Stenhouse G, Boulanger J, Lee J, Graham K, Duval J, Cranston J. Grizzly bear associations along the eastern slopes of Alberta. Ursus 2005;16:31–40.

[73] Shille VM, Lundström KE, Stabenfeldt GH. Follicular function in the domestic cat as determined by estradiol-17β concentrations in plasma: relation to estrous behavior and cornification of exfoliated vaginal epithelium. Biol Reprod 1979;21:953–963.

[74] England GCW, Burgess CM, Freeman SL, Smith SC, Pacey AA. Relationship between the fertile period and sperm transport in the bitch. Theriogenology 2006;66:1410–1418.

[75] Doak RL, Hall A, Dale HE. Longevity of spermatozoa in the reproductive tract of the bitch. J Reprod Fertil 1967;13:51–58.

[76] Girman DJ, Mills MGL, Geffen E, Wayne RK. A molecular genetic analysis of social structure, dispersal, and interpack relationships of the African wild dog (Lycaon pictus). Behav Ecol Sociobiol 1997;40:187–198.

[77] Gottelli D, Sillero-Zubiri C, Applebaum GD, Roy MS, Girman DJ, Garcia-Moreno J, Ostrander EA, Wayne PK. Molecular genetics of the most endangered canid: the Ethiopian wolf canis simensis. Mol Ecol 1994;3:301–312.

[78] Okano T, Nakamura S, Nakashita R, Komatsu T, Murase T, Asano M, Tsubota T. Incidence of ovulation without coital stimuli in captive Japanese black bears (Ursus thibetanus japonicus) based on serum progesterone profiles. J Vet Med Sci 2006;68:1133–1137.

[79] Lawler D, Johnston S, Hegstad R, Keltner D, Owens S. Ovulation without cervical stimulation in domestic cats. J Reprod Fertil Suppl 1993;43:57–61.

[80] Gudermuth D, Newton L, Daels P, Cancannon P. Incidence of spontaneous ovulation in young, group-housed cats based on serum and faecal concentrations of progesterone. J Reprod Fertil Suppl 1997;51:177–184.

[81] Schramm RD, Briggs MB, Reeves JJ. Spontaneous and induced ovulation in the lion (Panthera leo). Zoo Biol 1994;13:301–307.

[82] Brown JL, Wildt DE, Wielebnowski N, Goodrowe K, Graham L, Wells S, Howard JG. Reproductive activity in captive female cheetahs (Acinonyx jubatus) assessed by feacal steroids. J Reprod Fertil 1996;106:337–346.

[83] Brown JL, Wildt DE, Graham LH, Byers AP, Collins L, Barrett S, Howard JG. Natural versus chorionic gonadotropin-induced ovarian responses in the clouded leopard (Neofelis nebulosa) assessed by fecal steroid analysis. Biol Reprod 1995;53:93–102.

[84] Concannon PW. Endocrinologic control of normal canine ovarian function. Reprod Domest Anim 2009;44:3–15.

[85] Sirois J, Kimmich TL, Fortune JE. Steroidogenesis by equine preovulatory follicles: Relative roles of theca interna and granulosa cells. Endocrinology 1991;128:1159–1166.

[86] Soede N, Helmond F, Kemp B. Preovulatory profiles of oestradiol, LH and progesterone in relation to oestrus and embryo mortality in multiparous sows using transrectal ultrasonography to detect ovulation. J Reprod Fertil 1994;101:633–641.

[87] Czekala N, McGeehan L, Steinman K, Xuebing L, Gual-Sil F. Endocrine monitoring and its application to the management of the giant panda. Zoo Biol 2003;22:389–400.

[88] Schwarzenberger F, Fredriksson G, Schaller K, Kolter L. Fecal steroid analysis for monitoring reproduction in the sun bear (Helarctos malayanus). Theriogenology 2004;62:1677–1692.

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