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DNA methyltransferase 3B plays a protective role against hepatocarcinogenesis caused by chronic inflammation via maintaining mitochondrial homeostasis

Iguchi, Eriko 京都大学 DOI:10.14989/doctor.k23415

2021.07.26

概要

肝細胞癌の多くはウイルス感染やNASHなどの慢性肝炎を背景に発生することが知られている。肝細胞癌のみならず、その前癌病変でもすでに DNA のメチル化異常が生じていることが報告されているが、発癌との関連については不明な点が多い。新規DNAメチル化酵素の中でも、Dnmt3b は活発に転写される遺伝子のgene body に特異的に作用することが近年報告され、その異常が発癌に関与する可能性を示唆している。本研究では、Dnmt3b の異常が肝発癌過程において果たす役割を明らかにすることを目的とする。

まず臨床検体を用いたRNA シーケンスの結果より、肝組織におけるDNMT3B の発現レベル及び発現アイソフォームの検討を行った。正常肝・慢性肝炎・肝硬変・肝癌と段階的にDnmt3b の発現上昇が認められたが、肝硬変や癌部で発現するDnmt3b のうち大部分が酵素活性ドメインを欠いたアイソフォームであり、正常な Dnmt3b の発現は慢性炎症の経過及び発癌とともに低下することが分かった。

次に肝細胞特異的 Dnmt3b 欠損マウスを作成し、チオアセトアミド(TAA)投与により慢性肝炎を惹起してその表現型を解析したところ、Dnmt3b 欠損マウスには、TAA4週投与により強い肝炎が認められ、TAA30 週投与後には進行した線維化を背景に多くの肝癌が発生した。

TAA 非投与下でのコントロールマウス及び Dnmt3b 欠損マウスの非腫瘍肝組織より抽出したDNA を用いて全ゲノムバイサルファイトシーケンスを行い、Dnmt3b 欠損により生じるDNA メチル化の変動を網羅的に解析したところ、Dnmt3b 欠損によりゲノム全体にわたって主にgene bodyに多くのメチル化低下部位が生じていることが確認された。

また、TAA 投与前またはTAA4 週投与後のコントロールマウス及び Dnmt3b 欠損マウスの非腫瘍肝組織より抽出した RNA を用いてトランスクリプトーム解析を行い、遺伝子発現プロファイルを比較すると、TAA 非投与・4 週投与のいずれの条件下でも、Dnmt3b 欠損マウス肝において酸化的リン酸化関連遺伝子群の発現低下を認めた。

この結果を踏まえ、Dnmt3b がミトコンドリア機能に及ぼす影響について検討した。初代肝細胞を用いたミトコンドリア呼吸の評価においては、予備呼吸能が Dnmt3b 欠損マウスで有意に低下している一方で活性酸素の生成が増強していることが確認された。また Dnmt3b 欠損マウスにおいては、非癌部肝組織で酸化ストレスマーカーである8-OHdG が高発現していることが確認された。

臨床検体における DNMT3B の発現解析からは、肝臓の炎症性発癌過程で正常なDNMT3B の発現が低下していくことが分かり、肝発癌に関与している可能性が示唆された。Dnmt3b 欠損マウスを用いた解析においては、Dnmt3b が欠損するとミトコンドリアの機能低下から酸化ストレスの蓄積をきたし、炎症の増悪及び発癌の促進が生じる可能性が示された。以上より、DNMT3B は酸化的リン酸化の恒常性維持を介し、炎症性肝発癌において防御的に機能している可能性が考えられる。

参考文献

1. Bray, F. et al. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer J. Clin. 68, 394–424. https://doi.org/10.3322/caac.21492 (2018).

2. Matsuda, Y., Ichida, T., Matsuzawa, J., Sugimura, K. & Asakura, H. p16(INK4) is inactivated by extensive CpG methylation in human hepatocellular carcinoma. Gastroenterology 116, 394–400. https://doi.org/10.1016/s0016-5085(99)70137-x (1999).

3. Lin, C. H. et al. Genome-wide hypomethylation in hepatocellular carcinogenesis. Cancer Res. 61, 4238–4243 (2001).

4. Yoshikawa, H. et al. SOCS-1, a negative regulator of the JAK/STAT pathway, is silenced by methylation in human hepatocellular carcinoma and shows growth-suppression activity. Nat. Genet. 28, 29–35. https://doi.org/10.1038/ng0501-29 (2001).

5. Um, T. H. et al. Aberrant CpG island hypermethylation in dysplastic nodules and early HCC of hepatitis B virus-related human multistep hepatocarcinogenesis. J. Hepatol. 54, 939–947. https://doi.org/10.1016/j.jhep.2010.08.021 (2011).

6. Nagashio, R. et al. Carcinogenetic risk estimation based on quantification of DNA methylation levels in liver tissue at the precan- cerous stage. Int. J. Cancer 129, 1170–1179. https://doi.org/10.1002/ijc.26061 (2011).

7. Arai, E. et al. Genome-wide DNA methylation profiles in liver tissue at the precancerous stage and in hepatocellular carcinoma.Int. J. Cancer 125, 2854–2862. https://doi.org/10.1002/ijc.24708 (2009).

8. Kuramoto, J. et al. Genome-wide DNA methylation analysis during non-alcoholic steatohepatitis-related multistage hepatocar- cinogenesis: comparison with hepatitis virus-related carcinogenesis. Carcinogenesis 38, 261–270. https://doi.org/10.1093/carcin/ bgx005 (2017).

9. Murphy, S. K. et al. Relationship between methylome and transcriptome in patients with nonalcoholic fatty liver disease. Gastro- enterology 145, 1076–1087. https://doi.org/10.1053/j.gastro.2013.07.047 (2013).

10. Nishida, N., Kudo, M., Nagasaka, T., Ikai, I. & Goel, A. Characteristic patterns of altered DNA methylation predict emergence of human hepatocellular carcinoma. Hepatology 56, 994–1003. https://doi.org/10.1002/hep.25706 (2012).

11. Deng, Y. B. et al. Identification of genes preferentially methylated in hepatitis C virus-related hepatocellular carcinoma. Cancer Sci. 101, 1501–1510. https://doi.org/10.1111/j.1349-7006.2010.01549.x (2010).

12. Okano, M., Bell, D. W., Haber, D. A. & Li, E. DNA methyltransferases Dnmt3a and Dnmt3b are essential for de novo methylation and mammalian development. Cell 99, 247–257. https://doi.org/10.1016/s0092-8674(00)81656-6 (1999).

13. Okano, M., Xie, S. & Li, E. Cloning and characterization of a family of novel mammalian DNA (cytosine-5) methyltransferases.Nat. Genet. 19, 219–220. https://doi.org/10.1038/890 (1998).

14. Lyko, F. The DNA methyltransferase family: a versatile toolkit for epigenetic regulation. Nat. Rev. Genet. 19, 81–92. https://doi. org/10.1038/nrg.2017.80 (2018).

15. Zhang, W. & Xu, J. DNA methyltransferases and their roles in tumorigenesis. Biomark. Res. 5, 1. https://doi.org/10.1186/s40364- 017-0081-z (2017).

16. Butcher, D. T. & Rodenhiser, D. I. Epigenetic inactivation of BRCA1 is associated with aberrant expression of CTCF and DNA methyltransferase (DNMT3B) in some sporadic breast tumours. Eur. J. Cancer 43, 210–219. https://doi.org/10.1016/j.ejca.2006.09.002 (2007).

17. Ibrahim, A. E. et al. Sequential DNA methylation changes are associated with DNMT3B overexpression in colorectal neoplastic progression. Gut 60, 499–508. https://doi.org/10.1136/gut.2010.223602 (2011).

18. Kobayashi, Y. et al. DNA methylation profiling reveals novel biomarkers and important roles for DNA methyltransferases in prostate cancer. Genome Res. 21, 1017–1027. https://doi.org/10.1101/gr.119487.110 (2011).

19. Oh, B. K. et al. DNA methyltransferase expression and DNA methylation in human hepatocellular carcinoma and their clinico- pathological correlation. Int. J. Mol. Med. 20, 65–73 (2007).

20. Saito, Y. et al. Overexpression of a splice variant of DNA methyltransferase 3b, DNMT3b4, associated with DNA hypomethylation on pericentromeric satellite regions during human hepatocarcinogenesis. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 99, 10060–10065. https://doi. org/10.1073/pnas.152121799 (2002).

21. Takeshima, H. et al. Distinct DNA methylation activity of Dnmt3a and Dnmt3b towards naked and nucleosomal DNA. J. Biochem.139, 503–515. https://doi.org/10.1093/jb/mvj044 (2006).

22. Baubec, T. et al. Genomic profiling of DNA methyltransferases reveals a role for DNMT3B in genic methylation. Nature 520, 243–247. https://doi.org/10.1038/nature14176 (2015).

23. Neri, F. et al. Intragenic DNA methylation prevents spurious transcription initiation. Nature 543, 72–77. https://doi.org/10.1038/ nature21373 (2017).

24. Ueda, Y. et al. Roles for Dnmt3b in mammalian development: a mouse model for the ICF syndrome. Development 133, 1183–1192. https://doi.org/10.1242/dev.02293 (2006).

25. Xie, S. et al. Cloning, expression and chromosome locations of the human DNMT3 gene family. Gene 236, 87–95. https://doi.org/ 10.1016/s0378-1119(99)00252-8 (1999).

26. Duymich, C. E., Charlet, J., Yang, X., Jones, P. A. & Liang, G. DNMT3B isoforms without catalytic activity stimulate gene body methylation as accessory proteins in somatic cells. Nat. Commun. 7, 11453. https://doi.org/10.1038/ncomms11453 (2016).

27. Sakurai, T. et al. p38alpha inhibits liver fibrogenesis and consequent hepatocarcinogenesis by curtailing accumulation of reactive oxygen species. Cancer Res. 73, 215–224. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-12-1602 (2013).

28. Matsumoto, T. et al. Hepatic inflammation facilitates transcription-associated mutagenesis via AID activity and enhances liver tumorigenesis. Carcinogenesis 36, 904–913. https://doi.org/10.1093/carcin/bgv065 (2015).

29. Gardiner-Garden, M. & Frommer, M. CpG islands in vertebrate genomes. J. Mol. Biol. 196, 261–282. https://doi.org/10.1016/ 0022-2836(87)90689-9 (1987).

30. Nasrin, N. et al. SIRT4 regulates fatty acid oxidation and mitochondrial gene expression in liver and muscle cells. J. Biol. Chem.285, 31995–32002. https://doi.org/10.1074/jbc.M110.124164 (2010).

31. Challen, G. A. et al. Dnmt3a and Dnmt3b have overlapping and distinct functions in hematopoietic stem cells. Cell Stem Cell 15, 350–364. https://doi.org/10.1016/j.stem.2014.06.018 (2014).

32. Kawaguchi, Y. Sox9 and programming of liver and pancreatic progenitors. J. Clin. Invest. 123, 1881–1886. https://doi.org/10.1172/ JCI66022 (2013).

33. Karantzali, E. et al. Sall1 regulates embryonic stem cell differentiation in association with nanog. J. Biol. Chem. 286, 1037–1045. https://doi.org/10.1074/jbc.M110.170050 (2011).

34. Zhu, W. W. et al. Evaluation of midkine as a diagnostic serum biomarker in hepatocellular carcinoma. Clin. Cancer Res. 19, 3944–3954. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-12-3363 (2013).

35. Ivanov, A. V. et al. Oxidative stress, a trigger of hepatitis C and B virus-induced liver carcinogenesis. Oncotarget 8, 3895–3932. https://doi.org/10.18632/oncotarget.13904 (2017).

36. Mansouri, A., Gattolliat, C. H. & Asselah, T. Mitochondrial dysfunction and signaling in chronic liver diseases. Gastroenterology155, 629–647. https://doi.org/10.1053/j.gastro.2018.06.083 (2018).

37. Elsharkawy, A. M. & Mann, D. A. Nuclear factor-kappaB and the hepatic inflammation-fibrosis-cancer axis. Hepatology 46, 590–597. https://doi.org/10.1002/hep.21802 (2007).

38. Lin, W. et al. Hepatitis C virus regulates transforming growth factor beta1 production through the generation of reactive oxygen species in a nuclear factor kappaB-dependent manner. Gastroenterology 138, 2509–2518. https://doi.org/10.1053/j.gastro.2010.03.008 (2010).

39. Wink, D. A. et al. DNA deaminating ability and genotoxicity of nitric oxide and its progenitors. Science 254, 1001–1003. https:// doi.org/10.1126/science.1948068 (1991).

40. Cieslar-Pobuda, A. et al. DNMT3B deficiency alters mitochondrial biogenesis and alpha-ketoglutarate levels in human embryonic stem cells. Stem Cells https://doi.org/10.1002/stem.3256 (2020).

41. Haigis, M. C. et al. SIRT4 inhibits glutamate dehydrogenase and opposes the effects of calorie restriction in pancreatic beta cells.Cell 126, 941–954. https://doi.org/10.1016/j.cell.2006.06.057 (2006).

42. Kim, S. K. et al. Comprehensive analysis of genetic aberrations linked to tumorigenesis in regenerative nodules of liver cirrhosis.J. Gastroenterol. 54, 628–640. https://doi.org/10.1007/s00535-019-01555-z (2019).

43. Aoi, T. et al. Generation of pluripotent stem cells from adult mouse liver and stomach cells. Science 321, 699–702. https://doi.org/ 10.1126/science.1154884 (2008).

44. da Huang, W., Sherman, B. T. & Lempicki, R. A. Systematic and integrative analysis of large gene lists using DAVID bioinformatics resources. Nat. Protoc. 4, 44–57. https://doi.org/10.1038/nprot.2008.211 (2009).

45. Li, L. C. & Dahiya, R. MethPrimer: designing primers for methylation PCRs. Bioinformatics 18, 1427–1431. https://doi.org/10. 1093/bioinformatics/18.11.1427 (2002).

46. Krueger, F. & Andrews, S. R. Bismark: a flexible aligner and methylation caller for Bisulfite-Seq applications. Bioinformatics 27, 1571–1572. https://doi.org/10.1093/bioinformatics/btr167 (2011).

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