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γ-アミノ酪酸(GABA)を利用した哺乳類精子機能制御法の開発に資する研究

倉田 笙平 東北大学

2022.03.25

概要

世界的に食肉の需要は上昇しており[1]、生産増加が求められている。そのために家畜の育成効率の向上などによる生産性の増加が求められているが、まず安定的および効率的に産仔を得る必要がある。そして近年、欧米各国や日本において食肉の生産における人工授精の占める割合が増加している[2]。そのため、人工授精における受精・受胎率の向上が求められており、より効率的な繁殖のために、精子機能の制御・向上が必要であると考えられる。

哺乳類精子は射精後すぐの状態では受精する能力を獲得していないため、すぐには受精できず、雌性生殖器を通過中に、受精に向け、受精能力を獲得する必要がある[3]。雌性生殖器中で精子は、雌性生殖器から分泌されている神経伝達物質、酵素、イオンといった様々な因子に曝され[4]、精子タンパク質チロシンリン酸化や精子細胞膜のコレステロール除去などのプロセスを経て、受精能力を獲得する[5, 6]。これまでに、セロトニン[7]、グルタミン酸[8]、ドーパミン[9]、ニューロテンシン[10, 11]、アセチルコリン[12] など中枢神経系で作動すると考えられている神経伝達物質の受容体の哺乳類精子上の発現が報告されており、これらの受容体はリガンドの結合により刺激され、精子機能の制御に関与していると考えられている[9-14]。しかし、これら精子機能に影響を及ぼす神経伝達物質の内、ドーパミン、グルタミン酸等は細胞毒性が報告されており[15, 16]、また、セロトニン、ニューロテンシン等は非常に高価であるため、人工授精への応用は困難であると思われる。それに対し、神経伝達物質の一つであるγ-アミノ酪酸(GABA)は非常に安価であり、高い安全性が知られているため[17]、畜産ひいては人工授精への応用へ有用性が高いと考えられる。

GABA は哺乳類の脳など脊椎動物の中枢神経系において、広範囲に分布する抑制性神経伝達物質の一つである[18, 19]。GABA シグナルは細胞膜の受容体を介して細胞中に取り込まれ、哺乳類では、A, B, C の 3 つのタイプの GABA 受容体があることが知られている[20]。GABAA 受容体はイオンチャネル型受容体であり、活性化により塩化物イオンチャネルを開口させる。また、アンタゴニストのビククリンにより阻害されるなどの効果が分かっており[21]、アゴニスト、アンタゴニストは各種薬剤としても利用されている[22, 23]。GABAB 受容体は G タンパク質共役型受容体であり、G タンパク質を介して、カリウムチャンネル等と共役している。アンタゴニストはPhaclofen であり、アゴニストの Baclofen により活性化される[24]。GABAC 受容体は、GABAA 受容体と同様にイオンチャネル型受容体であり、5 つのρサブユニットから形成される。しかし薬理学的には、GABAC 受容体はビククリンや benzodiazepine、barbiturates といった多くの GABAA 受容体に影響を与える物質に制御されないことが報告されている[25]。

GABA は中枢神経系以外にも、様々な非神経組織に存在して、その組織特有の生理機能を有していると考えられており、GABA および GABAergic システムの発現は末梢組織でも報告されている[26, 27]。GABA はグルタミン酸からグルタミン酸デカルボキシラーゼ (Glutamate decarboxylase : GAD)により生成され [28]、GAD は2つのアイソフォームをもち、それぞれ GAD67、 GAD65 と呼ばれている[29]。GAD67 は精巣で、 GAD65 は卵管での発現が知られており[30, 31]、ラットの雌雄生殖器、ヒトの精液で GABA の検出が報告されている[32, 33]。いままで、ヒト精子における GABAA 受容体の発現[34]、ヒトやウシおよびラットの精子にて GABA が先体反応を促進することが報告されているが[35-37]、家畜生産性の向上に向け、GABA を用いた精子機能の制御による人工授精の受胎率の向上への試みは未だになされていない。

以上より、人工授精への応用を見据え、GABA 受容体の発現と GABA 濃度の哺乳類精子への影響解析を行い、GABA を利用した精子機能制御の有用性の検討は受精ならびに受胎性制御機構の理解に貢献し、同時に生産性の向上に貢献することが期待できると考えられる。本研究の目的は家畜の生産性の向上に貢献するため、γ-アミノ酪酸(GABA)を利用した精子機能制御法を開発することである。本研究の構成については、まずはモデル動物として検討が安価で容易であるマウスを用い、精子機能に対する GABA の影響を解明するために、第 2 章にて、マウス精子における GABA 受容体の発現および雌側における GABA 発現を検討した。続いて第 3 章にて、GABA がマウス精子機能に及ぼす影響を検討した。その後、第 4 章にて、実際の畜産動物であるブタにおいて、GABA を利用した精子機能制御を検討した。

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参考文献

[1] OECD. Agricultural output - Meat consumption (indicator). 2022 (Accessed on 14 January 2022).

[2] Rath D. Low dose insemination in the sow - A review. Reproduction in Domestic Animals. 2002;37:201-5.

[3] Yanagimachi R, Chang MC. Fertilization of Hamster Eggs in vitro. Nature. 1963;200:281-&.

[4] Ghersevich S, Massa E, Zumoffen C. Oviductal secretion and gamete interaction. Reproduction. 2015;149:R1-R14.

[5] Visconti PE, Moore GD, Bailey JL, Leclerc P, Connors SA, Pan DY, et al. Capacitation of mouse spermatozoa. II. Protein tyrosine phosphorylation and capacitation are regulated by a cAMP-dependent pathway. Development. 1995;121:1139-50.

[6] Visconti PE, Ning XP, Fornes MW, Alvarez JG, Stein P, Connors SA, et al. Cholesterol efflux-mediated signal transduction in mammalian sperm: Cholesterol release signals an increase in protein tyrosine phosphorylation during mouse sperm capacitation. Developmental Biology. 1999;214:429-43.

[7] Jimenez-Trejo F, Tapia-Rodriguez M, Cerbon M, Kuhn DM, Manjarrez-Gutierrez G, Mendoza-Rodriguez CA, et al. Evidence of 5-HT components in human sperm: implications for protein tyrosine phosphorylation and the physiology of motility. Reproduction. 2012;144:677-85.

[8] Hu JH, Yang N, Ma YH, Jiang J, Zhang JF, Fei J, et al. Identification of glutamate receptors and transporters in mouse and human sperm. Journal of Andrology. 2004;25:140-6.

[9] Ramirez AR, Castro MA, Angulo C, Ramio L, Rivera MM, Torres M, et al. The Presence and Function of Dopamine Type 2 Receptors in Boar Sperm: A Possible Role for Dopamine in Viability, Capacitation, and Modulation of Sperm Motility. Biology of Reproduction. 2009;80:753-61.

[10] Umezu K, Hiradate Y, Oikawa T, Ishiguro H, Numabe T, Hara K, et al. Exogenous neurotensin modulates sperm function in Japanese Black cattle. J Reprod Dev. 2016;62:409-14.

[11] Hiradate Y, Inoue H, Kobayashi N, Shirakata Y, Suzuki Y, Gotoh A, et al. Neurotensin enhances sperm capacitation and acrosome reaction in mice. Biology of Reproduction. 2014;91.

[12] Makino Y, Hiradate Y, Umezu K, Hara K, Tanemura K. Expression and Possible Role of Nicotinic Acetylcholine Receptor epsilon Subunit (AChRe) in Mouse Sperm. Biology-Basel. 2021;10.

[13] Momeni HR, Etemadi T, Alyasin A, Eskandari N. A novel role for involvement of N-methyl-D-aspartate (NMDA) glutamate receptors in sperm acrosome reaction. Andrologia. 2021;53.

[14] Meizel S, Turner KO. Serotonin or its agonist 5-methoxytryptamine can stimulate hamster sperm acrosome reactions in a more direct manner than catecholamines. Journal of Experimental Zoology. 1983;226:171-4.

[15] Clement MW, Long LH, Ramalingam J, Halliwell B. The cytotoxicity of dopamine may be an artefact of cell culture. Journal of Neurochemistry. 2002;81:414-21.

[16] Kritis AA, Stamoula EG, Paniskaki KA, Vavilis TD. Researching glutamate - induced cytotoxicity in different cell lines: a comparative/collective analysis/study. Frontiers in Cellular Neuroscience. 2015;9.

[17] Oketch-Rabah HA, Madden EF, Roe AL, Betz JM. United States Pharmacopeia (USP) Safety Review of Gamma-Aminobutyric Acid (GABA). Nutrients. 2021;13.

[18] Roberts E, Frankel S. gamma-Aminobutyric acid in brain: its formation from glutamic acid. Journal of Biological Chemistry. 1950;187:55-63.

[19] Sivilotti L, Nistri A. GABA receptor mechanisms in the central nervous system. Progress in Neurobiology. 1991;36:35-92.

[20] Bormann J. The 'ABC' of GABA receptors. Trends in Pharmacological Sciences. 2000;21:16-9.

[21] Seutin V, Johnson SW. Recent advances in the pharmacology of quaternary salts of bicuculline. Trends in Pharmacological Sciences. 1999;20:268-70.

[22] Calcaterra NE, Barrow JC. Classics in chemical neuroscience: diazepam (valium). Acs Chemical Neuroscience. 2014;5:253-60.

[23] Posternak MA, Mueller TI. Assessing the risks and benefits of benzodiazepines for anxiety disorders in patients with a history of substance abuse or dependence. American Journal on Addictions. 2001;10:48-68.

[24] Kerr DIB, Ong J, Prager RH, Gynther BD, Curtis DR. Phaclofen: a peripheral and central baclofen antagonist. Brain Research. 1987;405:150-4.

[25] Johnston GAR. GABA(C) receptors: Relatively simple transmitter-gated ion channels? Trends in Pharmacological Sciences. 1996;17:319-23.

[26] Erdo SL, Wolff JR. gamma-Aminobutyric acid outside the mammalian brain. Journal of Neurochemistry. 1990;54:363-72.

[27] Taniyama K, Kusunoki M, Saito N, Tanaka C. GABA evoked ACH release from isolated guinea pig ileum. Life Sciences. 1983;32:2349-53.

[28] Komatsuzaki N, Nakamura T, Kimura T, Shima J. Characterization of glutamate decarboxylase from a high gamma-aminobutyric acid (GABA)-producer, Lactobacillus paracasei. Bioscience Biotechnology and Biochemistry. 2008;72:278-85.

[29] Fenalti G, Law RHP, Buckle AM, Langendorf C, Tuck K, Rosado CJ, et al. GABA production by glutamic acid decarboxylase is regulated by a dynamic catalytic loop. Nature Structural & Molecular Biology. 2007;14:280-6.

[30] Tillakaratne NJK, Erlander MG, Collard MW, Greif KF, Tobin AJ. Glutamate decarboxylases in nonneural cells of rat testis and oviduct: differential expression of GAD65 and GAD67. Journal of Neurochemistry. 1992;58:618-27.

[31] Murashima YL, Kato T. Distribution of gamma-aminobutyric acid and glutamate decarboxylase in the layers of rat oviduct. Journal of Neurochemistry. 1986;46:166-72.

[32] Delrio RM. Gamma-aminobutyric acid system in rat oviduct. Journal of Biological Chemistry. 1981;256:9816-9.

[33] Ritta MN, Calamera JC, Bas DE. Occurrence of GABA and GABA receptors in human spermatozoa. Molecular Human Reproduction. 1998;4:769-73.

[34] Wistrom CA, Meizel S. Evidence suggesting involvement of a unique human sperm steroid receptor/Cl- channel complex in the progesterone-initiated acrosome reaction. Developmental Biology. 1993;159:679-90.

[35] Puente MA, Tartaglione CM, Ritta MN. Bull sperm acrosome reaction induced by gamma-aminobutyric acid (GABA) is mediated by GABAergic receptors type A. Animal Reproduction Science. 2011;127:31-7.

[36] Jin JY, Chen WY, Zhou CX, Chen ZH, Yu-Ying Y, Ni Y, et al. Activation of GABAA receptor/Cl- channel and capacitation in rat spermatozoa: HCO3- and Cl- are essential. Systems Biology in Reproductive Medicine. 2009;55:97-108.

[37] Shi QX, Yuan YY, Roldan ERS. gamma-Aminobutyric acid (GABA) induces the acrosome reaction in human spermatozoa. Molecular Human Reproduction. 1997;3:677-83.

[38] Ertzgaard P, Campo C, Calabrese A. Efficacy and safety of oral baclofen in the management of spasticity: A rationale for intrathecal baclofen. Journal of Rehabilitation Medicine. 2017;49:193-203.

[39] Lybaert P, Danguy A, Leleux F, Meuris S, Lebrun P. Improved methodology for the detection and quantification of the acrosome reaction in mouse spermatozoa. Histology and Histopathology. 2009;24:999-1007.

[40] Visconti PE, Bailey JL, Moore GD, Pan DY, Oldsclarke P, Kopf GS. Capacitation of mouse spermatozoa. I. Correlation between the capacitation state and protein tyrosine phosphorylation. Development. 1995;121:1129-37.

[41] Breitbart H. Signaling pathways in sperm capacitation and acrosome reaction. Cellular and Molecular Biology. 2003;49:321-7.

[42] Breitbart H. Intracellular calcium regulation in sperm capacitation and acrosomal reaction. Molecular and Cellular Endocrinology. 2002;187:139-44.

[43] Finkelstein M, Etkovitz N, Breitbart H. Ca2+ signaling in mammalian spermatozoa. Molecular and Cellular Endocrinology. 2020;516.

[44] Erdo SL, Villanyi P, Laszlo A. Gestational changes of GABA levels and GABA binding in the human uterus. Life Sciences. 1989;44:2009-14.

[45] Louzan P, Gallardo MGP, Tramezzani JH. Gamma-aminobutyric acid in the genital tract of the rat during the estrous-cycle. Journal of Reproduction and Fertility. 1986;77:499-504.

[46] Xia JS, Ren DJ. The BSA-induced Ca(2+) influx during sperm capacitation is CATSPER channel-dependent. Reproductive Biology and Endocrinology. 2009;7.

[47] Roca J, Parrilla I, Bolarin A, Martinez EA, Rodriguez-Martinez H. Will AI in pigs become more efficient? Theriogenology. 2016;86:187-93.

[48] Kerns K, Zigo M, Drobnis EZ, Sutovsky M, Sutovsky P. Zinc ion flux during mammalian sperm capacitation. Nature Communications. 2018;9.

[49] Garcia MA, Meizel S. Determination of the steady-state intracellular chloride concentration in capacitated human spermatozoa (vol 20, pg 88, 1999). Journal of Andrology. 1999;20:434-.

[50] Umezu K, Yajima R, Hiradate Y, Yanai R, Numabe T, Hara K, et al. Improvement in blastocyst quality by neurotensin signaling via its receptors in bovine spermatozoa during in vitro fertilization. J Reprod Dev. 2019;65:147-53.

[51] Hu JH, He XB, Wu Q, Yan YC. Biphasic effect of GABA on rat sperm acrosome reaction: Involvement of GABA(A) and GABA(B) receptors. Archives of Andrology. 2002;48:369-78.

[52] Geigerseder C, Doepner R, Thalhammer A, Frungieri MB, Gamel-Didelon K, Calandra RS, et al. Evidence for a GABAergic system in rodent and human testis: Local GABA production and GABA receptors. Neuroendocrinology. 2003;77:314-23.

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