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NK細胞のエフェクター機能制御をターゲットとした複合がん免疫薬物療法に関する研究

石田 紀穂 富山大学

2021.03.23

概要

がんの早期発見や個別化医療の実施など医療体制が革新的な進歩を遂げているにも関わらず、がんは他の疾患と比較しても死亡率が高く推移している。この高い死亡率の背景には、がん転移による再発が関わっており、がん転移に対する有用な治療が求められている。がん薬物治療として、化学療法や分子標的薬などに加え、近年新たな治療法としてがん免疫療法が注目されているが、これらの転移制御における有用性は明らかでない。また、自然免疫系に属するナチュラルキラー( natural killer: NK)細胞は前感作なしに細胞傷害性を示し、獲得免疫系への橋渡しを担う重要な細胞である。NK細胞の機能発現には抑制性シグナルと活性化シグナルによって厳密に制御され、標的細胞を認識した NK 細胞は炎症性サイトカインの産生や細胞傷害性顆粒等を介して、標的細胞を排除する。このような機能から NK 細胞は抗腫瘍エフェクター細胞として注目されてきたが、その詳細な機能制御メカニズムは未だ明らかとなっていない。一方、がん細胞は正常細胞から遺伝子変異により発生する異常な細胞であり、発がん過程は NK 細胞をはじめとする免疫細胞によるがん免疫監視機構により制御されており、逆にがん細胞は免疫細胞による排除機構を逃避することで病態を成立させていると考えられる。ゆえに、がん治療標的として免疫細胞のがん細胞排除に関わる機能強化と、がん細胞の免疫逃避機構の解除が重要である。特に臨床においてもその重要性が数多く報告されている NK 細胞の機能制御をターゲットとした研究は、がん転移に対する新たな治療へとつながる可能性がある。加えて、がん細胞の免疫逃避機構にはがん関連炎症が深く関わっていることが示唆されている。転移能が高いがん細胞では、signal transducer and activator of transcription 3( STAT3)をはじめとする腫瘍免疫抑制因子として働くことが知られている炎症性シグナル経路が恒常的に活性化している。特に STAT3 シグナル経路の活性化により産生される炎症性サイトカイン IL-6 は腫瘍免疫応答における抑制因子として作用し、がんの生存や増殖において重要な役割を果たしている。

以上の背景から、本研究ではがんの悪性化や転移を抑制する新たな治療戦略の確立を目指し、免疫エフェクター細胞によるがん細胞除機能の強化とがん関連炎症制御の双方に着目した複合薬物療法の確立に取り組むこととした。免疫エフェクター細胞として NK 細胞に着目し、特に NK 細胞の分化・成熟化過程や組織常在性 NK 細胞の転移抑制機能を増強するがん薬物治療について検討した。さらにがん関連炎症シグナルの薬物制御によるがん転移抑制の可能性について合わせて検討した。

1. Thalidomide の転移抑制効果における NK 細胞の重要性 1)
Thalidomide を代表とする Immunomoduratory Drugs( IMiDs) は多発性骨髄腫に対する治療薬として臨床で使用されている薬剤であり、NK 細胞を含めた免疫細胞の活性化作用が示唆されているが、その免疫調節作用の詳細なメカニズムは明らかでなかった。本研究では新たに Thalidomide が NK 細胞の機能成熟化を誘導することで、がん細胞の肺転移を抑制するメカニズムについて明らかにした。マウス B16 メラノーマ細胞を用いた実験的肺転移モデルにおいて、Thalidomide は NK 細胞依存的な肺転移抑制作用を示した。さらに Thalidomide 投与によって末梢組織常在性の成熟型 CD27lo NK 細胞の増加が肺や末梢血中で認められ、また Thalidomide 投与マウスの NK 細胞は対照群と比較して高い細胞傷害活性と IFN-産生を示した。このような Thalidomide による NK 細胞の機能成熟化とがん転移抑制には、シグナル分子 GSK3-の抑制と転写因子 T-bet の発現上昇が関連することを示した。

2. Baicalein による腫瘍免疫抑制因子 STAT3 の活性制御と肺転移抑制作用 2)
がん細胞は炎症性シグナルにより抗腫瘍免疫応答からの逃避メカニズムを備えていることに着目した研究も行った。特に、がん細胞の増殖・転移に加えて免疫逃避に関わる重要な分子である STAT3 に着目し、和漢薬を用いた STAT3 活性の制御によるがん転移の薬物治療の可能性について明らかにした。多くのがん細胞では恒常的な炎症性シグナル経路の活性化が維持されており、特に STAT3 シグナル経路は IL-6 産生誘導による positive feedback loop を介してがん細胞の増殖・転移に加え、NK 細胞を含めた抗腫瘍エフェクター細胞からの免疫逃避に関わることが知られている。本研究ではがん細胞における STAT3 転写活性抑制を指標に、和漢薬由来の化合物ライブラリーのスクリーニングから、生薬オウゴンの活性成分として知られているフラボノイド化合物 Baicalein が STAT3 阻害活性を有することを明らかにした。Baicalein はマウス乳がん細胞株である 4T1 細胞の STAT3 活性化抑制に伴う IL-6 産生抑制作用に加えて、in vivoでの実験的肺転移モデルにおいてもがん細胞の肺転移抑制を示した。

以上、本研究では本章では Thalidomide が NK 細胞依存的にがん細胞の肺転移を抑制すること、Thalidomide 投与マウスでは特に末梢組織で成熟型の NK 細胞サブセットである CD27lo NK 細胞が増加すること、肺 NK 細胞の抗腫瘍エフェクター機能が Thalidomide 投与により活性化することを明らかとした。IMiDs は抹消組織に常在する成熟 CD27lo NK 細胞に主に作用し、その抗腫瘍エフェクター機能の強化を介してがん転移抑制作用を示すと考えられた。加えて、STAT3 活性阻害を介した抗転移活性を持つ有望な天然化合物として Baicalein を同定した。STAT3 シグナル経路の活性化により産生される炎症性サイトカイン IL-6 は腫瘍免疫応答における抑制因子として作用し、がんの生存や増殖において重要な役割を果たしているが、Baicalein は乳がん細胞からの IL-6 産生を抑制した。これらの薬物を複合的に用いることで、抗腫瘍エフェクター細胞の機能強化と免疫抑制機構の解除による新たな免疫療法へと結びつくことが期待できる。

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参考文献

1. Sun JC, Lanier LL. NK cell development, homeostasis and function: parallels with CD8+ T cells. Nature Reviews Immunology. 2011;11(10):645-57.

2. Obaldia MED, Bhandoola A. Transcriptional Regulation of Innate and Adaptive Lymphocyte Lineages. Annual Review of Immunology. 2015;33(1):607-42.

3. Chiossone L, Dumas P-Y, Vienne M, Vivier E. Natural killer cells and other innate lymphoid cells in cancer. Nature Reviews Immunology. 2018;18(11):671-88.

4. Martinet L, Smyth MJ. Balancing natural killer cell activation through paired receptors. Nature Reviews Immunology. 2015;15(4):243-54.

5. Lanier LL. Up on the tightrope: natural killer cell activation and inhibition. Nature Immunology. 2008;9(5):495-502.

6. Kumar S. Natural killer cell cytotoxicity and its regulation by inhibitory receptors. Immunology. 2018;154(3):383-93.

7. Vivier E, Nunès JA, Vély F. Natural Killer Cell Signaling Pathways. Science. 2004;306(5701):1517-9.

8. Cella M, Fujikawa K, Tassi I, Kim S, Latinis K, Nishi S, et al. Differential Requirements for Vav Proteins in DAP10- and ITAM-mediated NK Cell Cytotoxicity. Journal of Experimental Medicine. 2004;200(6):817-23.

9. Smyth MJ, Cretney E, Kelly JM, Westwood JA, Street SE, Yagita H, et al. Activation of NK cell cytotoxicity. Molecular immunology. 2005;42(4):501-10.

10. Konjević GM, Vuletić AM, Mirjačić Martinović KM, Larsen AK, Jurišić VB. The role of cytokines in the regulation of NK cells in the tumor environment. Cytokine. 2019;117:30- 40.

11. Herberman RB, Nunn ME, Holden HT, Lavrin DH. Natural cytotoxic reactivity of mouse lymphoid cells against syngeneic and allogeneic tumors. II. Characterization of effector cells. International Journal of Cancer. 1975;16(2):230-9.

12. Herberman RB, Nunn ME, Lavrin DH. Natural cytotoxic reactivity of mouse lymphoid cells against syngeneic and allogeneic tumors. I. Distribution of reactivity and specificity. International Journal of Cancer. 1975;16(2):216-29.

13. Smyth MJ, Hayakawa Y, Takeda K, Yagita H. New aspects of natural-killer-cell surveillance and therapy of cancer. Nature Reviews Cancer. 2002;2(11):850-61.

14. Zitvogel L, Terme M, Borg C, Trinchieri G. Dendritic Cell-NK Cell Cross-Talk: Regulation and Physiopathology. In: Compans RW, Cooper MD, Honjo T, Koprowski H, Melchers F, Oldstone MBA, et al., editors. Immunobiology of Natural Killer Cell Receptors. Berlin, Heidelberg: Springer Berlin Heidelberg; 2006. p. 157-74.

15. Hayakawa Y, Smyth MJ. CD27 Dissects Mature NK Cells into Two Subsets with Distinct Responsiveness and Migratory Capacity. The Journal of Immunology. 2006;176(3):1517-24.

16. Freud AG, Yu J, Caligiuri MA. Human natural killer cell development in secondary lymphoid tissues. Semin Immunol. 2014;26(2):132-7.

17. Hayakawa Y, Huntington ND, Nutt SL, Smyth MJ. Functional subsets of mouse natural killer cells. Immunological Reviews. 2006;214(1):47-55.

18. Silva A, Andrews DM, Brooks AG, Smyth MJ, Hayakawa Y. Application of CD27 as a marker for distinguishing human NK cell subsets. International Immunology. 2008;20(4):625-30.

19. Freud AG, Mundy-Bosse BL, Yu J, Caligiuri MA. The Broad Spectrum of Human Natural Killer Cell Diversity. Immunity. 2017;47(5):820-33.

20. Huntington ND, Vosshenrich CAJ, Di Santo JP. Developmental pathways that generate natural-killer-cell diversity in mice and humans. Nature Reviews Immunology. 2007;7(9):703-14.

21. Sun JC. Transcriptional Control of NK Cells. In: Vivier E, Di Santo J, Moretta A, editors. Natural Killer Cells. Cham: Springer International Publishing; 2016. p. 1-36.

22. Seillet C, Belz GT, Huntington ND. Development, Homeostasis, and Heterogeneity of NK Cells and ILC1. In: Vivier E, Di Santo J, Moretta A, editors. Natural Killer Cells. Cham: Springer International Publishing; 2016. p. 37-61.

23. Townsend MJ, Weinmann AS, Matsuda JL, Salomon R, Farnham PJ, Biron CA, et al. T-bet Regulates the Terminal Maturation and Homeostasis of NK and Vα14i NKT Cells. Immunity. 2004;20(4):477-94.

24. Gordon Scott M, Chaix J, Rupp Levi J, Wu J, Madera S, Sun Joseph C, et al. The Transcription Factors T-bet and Eomes Control Key Checkpoints of Natural Killer Cell Maturation. Immunity. 2012;36(1):55-67.

25. Daussy C, Faure F, Mayol K, Viel S, Gasteiger G, Charrier E, et al. T-bet and Eomes instruct the development of two distinct natural killer cell lineages in the liver and in the bone marrow. Journal of Experimental Medicine. 2014;211(3):563-77.

26. Takahashi K, Yamanaka S. A decade of transcription factor-mediated reprogramming to pluripotency. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 2016;17(3):183-93.

27. 国立がん研究センター.

28. 厚生労働省 令和元年人口動態統計.

29. Sanmamed MF, Chen L. A Paradigm Shift in Cancer Immunotherapy: From Enhancement to Normalization. Cell. 2018;175(2):313-26.

30. Quail DF, Joyce JA. Microenvironmental regulation of tumor progression and metastasis. Nature Medicine. 2013;19(11):1423-37.

31. Dunn GP, Old LJ, Schreiber RD. The Immunobiology of Cancer Immunosurveillance and Immunoediting. Immunity. 2004;21(2):137-48.

32. Schreiber RD, Old LJ, Smyth MJ. Cancer Immunoediting: Integrating Immunity’s Roles in Cancer Suppression and Promotion. Science. 2011;331(6024):1565-70.

33. Delahaye NF, Rusakiewicz S, Martins I, Ménard C, Roux S, Lyonnet L, et al. Alternatively spliced NKp30 isoforms affect the prognosis of gastrointestinal stromal tumors. Nature Medicine. 2011;17(6):700-7.

34. Ishigami S, Natsugoe S, Tokuda K, Nakajo A, Che X, Iwashige H, et al. Prognostic value of intratumoral natural killer cells in gastric carcinoma. Cancer. 2000;88(3):577-83.

35. Coca S, Perez-Piqueras J, Martinez D, Colmenarejo A, Saez MA, Vallejo C, et al. The prognostic significance of intratumoral natural killer cells in patients with colorectal carcinoma. Cancer. 1997;79(12):2320-8.

36. Donskov F, Maase Hvd. Impact of Immune Parameters on Long-Term Survival in Metastatic Renal Cell Carcinoma. Journal of Clinical Oncology. 2006;24(13):1997-2005.

37. Gannon PO, Poisson AO, Delvoye N, Lapointe R, Mes-Masson A-M, Saad F. Characterization of the intra-prostatic immune cell infiltration in androgen-deprived prostate cancer patients. Journal of Immunological Methods. 2009;348(1):9-17.

38. Pasero C, Gravis G, Guerin M, Granjeaud S, Thomassin-Piana J, Rocchi P, et al. Inherent and Tumor-Driven Immune Tolerance in the Prostate Microenvironment Impairs Natural Killer Cell Antitumor Activity. Cancer Research. 2016;76(8):2153-65.

39. Ménard C, Blay J-Y, Borg C, Michiels S, Ghiringhelli F, Robert C, et al. Natural Killer Cell IFN-γ Levels Predict Long-term Survival with Imatinib Mesylate Therapy in Gastrointestinal Stromal Tumor–Bearing Patients. Cancer Research. 2009;69(8):3563-9.

40. Semeraro M, Rusakiewicz S, Zitvogel L, Kroemer G. Natural killer cell mediated immunosurveillance of pediatric neuroblastoma. OncoImmunology. 2015;4(11):e1042202.

41. Street SE, Cretney E, Smyth MJ. Perforin and interferon-gamma activities independently control tumor initiation, growth, and metastasis. Blood. 2001;97(1):192-7.

42. Smyth MJ, Thia KY, Cretney E, Kelly JM, Snook MB, Forbes CA, et al. Perforin is a major contributor to NK cell control of tumor metastasis. J Immunol. 1999;162(11):6658- 62.

43. Takeda K, Hayakawa Y, Smyth MJ, Kayagaki N, Yamaguchi N, Kakuta S, et al. Involvement of tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand in surveillance of tumor metastasis by liver natural killer cells. Nature Medicine. 2001;7(1):94-100.

44. Shalapour S, Karin M. Pas de Deux: Control of Anti-tumor Immunity by Cancer- Associated Inflammation. Immunity. 2019;51(1):15-26.

45. Mantovani A, Allavena P, Sica A, Balkwill F. Cancer-related inflammation. Nature. 2008;454(7203):436-44.

46. Grivennikov SI, Karin M. Inflammatory cytokines in cancer: tumour necrosis factor and interleukin 6 take the stage. Annals of the Rheumatic Diseases. 2011;70(Suppl 1):i104- i8.

47. Suganuma M, Okabe S, Kurusu M, Iida N, Ohshima S, Saeki Y, et al. Discrete roles of cytokines, TNF-alpha, IL-1, IL-6 in tumor promotion and cell transformation. Int J Oncol. 2002;20(1):131-6.

48. Zhong Z, Wen Z, Darnell J. Stat3: a STAT family member activated by tyrosine phosphorylation in response to epidermal growth factor and interleukin-6. Science. 1994;264(5155):95-8.

49. HEINRICH PC, BEHRMANN I, MÜLLER-NEWEN G, SCHAPER F, GRAEVE L. Interleukin-6-type cytokine signalling through the gp130/Jak/STAT pathway1. Biochemical Journal. 1998;334(2):297-314.

50. Taga T, Kishimoto T. gp130 AND THE INTERLEUKIN-6 FAMILY OF CYTOKINES. Annual Review of Immunology. 1997;15(1):797-819.

51. Liu Y, Huang J, Li W, Chen Y, Liu X, Wang J. Meta-analysis of STAT3 and phospho- STAT3 expression and survival of patients with breast cancer. Oncotarget. 2018;9(16).

52. Ara T, Song L, Shimada H, Keshelava N, Russell HV, Metelitsa LS, et al. Interleukin-6 in the Bone Marrow Microenvironment Promotes the Growth and Survival of Neuroblastoma Cells. Cancer Research. 2009;69(1):329-37.

53. Shain KH, Yarde DN, Meads MB, Huang M, Jove R, Hazlehurst LA, et al. β1 Integrin Adhesion Enhances IL-6–Mediated STAT3 Signaling in Myeloma Cells: Implications for Microenvironment Influence on Tumor Survival and Proliferation. Cancer Research. 2009;69(3):1009-15.

54. Grivennikov S, Karin E, Terzic J, Mucida D, Yu G-Y, Vallabhapurapu S, et al. IL-6 and Stat3 Are Required for Survival of Intestinal Epithelial Cells and Development of Colitis- Associated Cancer. Cancer Cell. 2009;15(2):103-13.

55. Kujawski M, Kortylewski M, Lee H, Herrmann A, Kay H, Yu H. Stat3 mediates myeloid cell–dependent tumor angiogenesis in mice. The Journal of Clinical Investigation. 2008;118(10):3367-77.

56. D'Amato RJ, Loughnan MS, Flynn E, Folkman J. Thalidomide is an inhibitor of angiogenesis. Proceedings of the National Academy of Sciences. 1994;91(9):4082-5.

57. Bartlett JB, Dredge K, Dalgleish AG. The evolution of thalidomide and its IMiD derivatives as anticancer agents. Nature Reviews Cancer. 2004;4(4):314-22.

58. Ito T, Ando H, Suzuki T, Ogura T, Hotta K, Imamura Y, et al. Identification of a Primary Target of Thalidomide Teratogenicity. Science. 2010;327(5971):1345-50.

59. Ito T, Ando H, Handa H. Teratogenic effects of thalidomide: molecular mechanisms. Cellular and Molecular Life Sciences. 2011;68(9):1569-79.

60. Asatsuma-Okumura T, Ito T, Handa H. Molecular Mechanisms of the Teratogenic Effects of Thalidomide. Pharmaceuticals. 2020;13(5):95.

61. Lu G, Middleton RE, Sun H, Naniong M, Ott CJ, Mitsiades CS, et al. The Myeloma Drug Lenalidomide Promotes the Cereblon-Dependent Destruction of Ikaros Proteins. Science. 2014;343(6168):305-9.

62. Matyskiela ME, Lu G, Ito T, Pagarigan B, Lu C-C, Miller K, et al. A novel cereblon modulator recruits GSPT1 to the CRL4CRBN ubiquitin ligase. Nature. 2016;535(7611):252- 7.

63. Zhu YX, Braggio E, Shi C-X, Bruins LA, Schmidt JE, Van Wier S, et al. Cereblon expression is required for the antimyeloma activity of lenalidomide and pomalidomide. Blood. 2011;118(18):4771-9.

64. Corral LG, Haslett PA, Muller GW, Chen R, Wong LM, Ocampo CJ, et al. Differential cytokine modulation and T cell activation by two distinct classes of thalidomide analogues that are potent inhibitors of TNF-alpha. J Immunol. 1999;163(1):380-6.

65. Davies FE, Raje N, Hideshima T, Lentzsch S, Young G, Tai Y-T, et al. Thalidomide and immunomodulatory derivatives augment natural killer cell cytotoxicity in multiple myeloma. Blood. 2001;98(1):210-6.

66. Galustian C, Meyer B, Labarthe M-C, Dredge K, Klaschka D, Henry J, et al. The anti-cancer agents lenalidomide and pomalidomide inhibit the proliferation and function of T regulatory cells. Cancer Immunology, Immunotherapy. 2009;58(7):1033-45.

67. Cortes M, Wong E, Koipally J, Georgopoulos K. Control of lymphocyte development by the Ikaros gene family. Current Opinion in Immunology. 1999;11(2):167-71.

68. Holmes ML, Huntington ND, Thong RP, Brady J, Hayakawa Y, Andoniou CE, et al. Peripheral natural killer cell maturation depends on the transcription factor Aiolos. The EMBO Journal. 2014;33(22):2721-34.

69. Fionda C, Abruzzese MP, Zingoni A, Cecere F, Vulpis E, Peruzzi G, et al. The IMiDs targets IKZF-1/3 and IRF4 as novel negative regulators of NK cell-activating ligands expression in multiple myeloma. Oncotarget. 2015;6(27).

70. Haslett PAJ, Corral LG, Albert M, Kaplan G. Thalidomide Costimulates Primary Human T Lymphocytes, Preferentially Inducing Proliferation, Cytokine Production, and Cytotoxic Responses in the CD8+ Subset. Journal of Experimental Medicine. 1998;187(11):1885-92.

71. LeBlanc R, Hideshima T, Catley LP, Shringarpure R, Burger R, Mitsiades N, et al. Immunomodulatory drug costimulates T cells via the B7-CD28 pathway. Blood. 2004;103(5):1787-90.

72. Lazarevic V, Glimcher LH, Lord GM. T-bet: a bridge between innate and adaptive immunity. Nature Reviews Immunology. 2013;13(11):777-89.

73. Chamoto K, Takeshima T, Kosaka A, Tsuji T, Matsuzaki J, Togashi Y, et al. NKT cells act as regulatory cells rather than killer cells during activation of NK cell-mediated cytotoxicity by α-galactosylceramide in vivo. Immunology Letters. 2004;95(1):5-11.

74. Taylor A, Harker JA, Chanthong K, Stevenson PG, Zuniga EI, Rudd CE. Glycogen Synthase Kinase 3 Inactivation Drives T-bet-Mediated Downregulation of Co-receptor PD-1 to Enhance CD8+ Cytolytic T Cell Responses. Immunity. 2016;44(2):274-86.

75. Parameswaran R, Ramakrishnan P, Moreton SA, Xia Z, Hou Y, Lee DA, et al. Repression of GSK3 restores NK cell cytotoxicity in AML patients. Nature Communications. 2016;7(1):11154.

76. Gribben JG, Fowler N, Morschhauser F. Mechanisms of Action of Lenalidomide in B-Cell Non-Hodgkin Lymphoma. Journal of Clinical Oncology. 2015;33(25):2803-11.

77. Gandhi AK, Kang J, Havens CG, Conklin T, Ning Y, Wu L, et al. Immunomodulatory agents lenalidomide and pomalidomide co-stimulate T cells by inducing degradation of T cell repressors Ikaros and Aiolos via modulation of the E3 ubiquitin ligase complex CRL4CRBN. British Journal of Haematology. 2014;164(6):811-21.

78. Takeda K, Nakayama M, Sakaki M, Hayakawa Y, Imawari M, Ogasawara K, et al. IFN-γ production by lung NK cells is critical for the natural resistance to pulmonary metastasis of B16 melanoma in mice. Journal of Leukocyte Biology. 2011;90(4):777-85.

79. Lagrue K, Carisey A, Morgan DJ, Chopra R, Davis DM. Lenalidomide augments actin remodeling and lowers NK-cell activation thresholds. Blood. 2015;126(1):50-60.

80. Collins A, Rothman N, Liu K, Reiner SL. Eomesodermin and T-bet mark developmentally distinct human natural killer cells. JCI Insight. 2017;2(5).

81. van Helden MJ, Goossens S, Daussy C, Mathieu A-L, Faure F, Marçais A, et al. Terminal NK cell maturation is controlled by concerted actions of T-bet and Zeb2 and is essential for melanoma rejection. Journal of Experimental Medicine. 2015;212(12):2015-25.

82. Werneck MBF, Lugo-Villarino G, Hwang ES, Cantor H, Glimcher LH. T-Bet Plays a Key Role in NK-Mediated Control of Melanoma Metastatic Disease. The Journal of Immunology. 2008;180(12):8004-10.

83. Cichocki F, Valamehr B, Bjordahl R, Zhang B, Rezner B, Rogers P, et al. GSK3 Inhibition Drives Maturation of NK Cells and Enhances Their Antitumor Activity. Cancer Research. 2017;77(20):5664-75.

84. Szabo SJ, Kim ST, Costa GL, Zhang X, Fathman CG, Glimcher LH. A Novel Transcription Factor, T-bet, Directs Th1 Lineage Commitment. Cell. 2000;100(6):655-69.

85. Sullivan BM, Juedes A, Szabo SJ, von Herrath M, Glimcher LH. Antigen-driven effector CD8 T cell function regulated by T-bet. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2003;100(26):15818-23.

86. Spits H, Artis D, Colonna M, Diefenbach A, Di Santo JP, Eberl G, et al. Innate lymphoid cells — a proposal for uniform nomenclature. Nature Reviews Immunology. 2013;13(2):145-9.

87. Klose Christoph SN, Blatz K, d’Hargues Y, Hernandez Pedro P, Kofoed-Nielsen M, Ripka Juliane F, et al. The Transcription Factor T-bet Is Induced by IL-15 and Thymic Agonist Selection and Controls CD8αα+ Intraepithelial Lymphocyte Development. Immunity. 2014;41(2):230-43.

88. Malaisé M, Rovira J, Renner P, Eggenhofer E, Sabet-Baktach M, Lantow M, et al. KLRG1<sup>+</sup> NK Cells Protect T-bet–Deficient Mice from Pulmonary Metastatic Colorectal Carcinoma. The Journal of Immunology. 2014;192(4):1954-61.

89. Sehgal K, Das R, Zhang L, Verma R, Deng Y, Kocoglu M, et al. Clinical and pharmacodynamic analysis of pomalidomide dosing strategies in myeloma: impact of immune activation and cereblon targets. Blood. 2015;125(26):4042-51.

90. Lu L, Payvandi F, Wu L, Zhang L-H, Hariri RJ, Man H-W, et al. The anti-cancer drug lenalidomide inhibits angiogenesis and metastasis via multiple inhibitory effects on endothelial cell function in normoxic and hypoxic conditions. Microvascular Research. 2009;77(2):78-86.

91. Ishdorj G, Johnston JB, Gibson SB. Inhibition of Constitutive Activation of STAT3 by Curcurbitacin-I (JSI-124) Sensitized Human B-Leukemia Cells to Apoptosis. Molecular Cancer Therapeutics. 2010;9(12):3302-14.

92. Blaskovich MA, Sun J, Cantor A, Turkson J, Jove R, Sebti SM. Discovery of JSI-124 (cucurbitacin I), a selective Janus kinase/signal transducer and activator of transcription 3 signaling pathway inhibitor with potent antitumor activity against human and murine cancer cells in mice. Cancer Res. 2003;63(6):1270-9.

93. Kortylewski M, Yu H. Role of Stat3 in suppressing anti-tumor immunity. Current Opinion in Immunology. 2008;20(2):228-33.

94. Wu C-J, Sundararajan V, Sheu B-C, Huang RY-J, Wei L-H. Activation of STAT3 and STAT5 Signaling in Epithelial Ovarian Cancer Progression: Mechanism and Therapeutic Opportunity. Cancers. 2020;12(1):24.

95. Rodrigues T, Reker D, Schneider P, Schneider G. Counting on natural products for drug design. Nature Chemistry. 2016;8(6):531-41.

96. Orlikova B, Legrand N, Panning J, Dicato M, Diederich M, editors. Anti-Inflammatory and Anticancer Drugs from Nature2014; Berlin, Heidelberg: Springer Berlin Heidelberg.

97. Johnson DE, O'Keefe RA, Grandis JR. Targeting the IL-6/JAK/STAT3 signalling axis in cancer. Nature Reviews Clinical Oncology. 2018;15(4):234-48.

98. Rokavec M, Öner MG, Li H, Jackstadt R, Jiang L, Lodygin D, et al. IL- 6R/STAT3/miR-34a feedback loop promotes EMT-mediated colorectal cancer invasion and metastasis. The Journal of Clinical Investigation. 2014;124(4):1853-67.

99. Chai EZP, Shanmugam MK, Arfuso F, Dharmarajan A, Wang C, Kumar AP, et al. Targeting transcription factor STAT3 for cancer prevention and therapy. Pharmacology & Therapeutics. 2016;162:86-97.

100. Browning L, Patel MR, Horvath EB, Tawara K, Jorcyk CL. IL-6 and ovarian cancer: inflammatory cytokines in promotion of metastasis. Cancer Manag Res. 2018;10:6685-93.

101. Gao Y, Snyder SA, Smith JN, Chen YC. Anticancer properties of baicalein: a review. Medicinal Chemistry Research. 2016;25(8):1515-23.

102. Ke M, Zhang Z, Xu B, Zhao S, Ding Y, Wu X, et al. Baicalein and baicalin promote antitumor immunity by suppressing PD-L1 expression in hepatocellular carcinoma cells. International Immunopharmacology. 2019;75:105824.

103. Avalle L, Pensa S, Regis G, Novelli F, Poli V. STAT1 and STAT3 in tumorigenesis. JAK-STAT. 2012;1(2):65-72.

104. Yu H, Pardoll D, Jove R. STATs in cancer inflammation and immunity: a leading role for STAT3. Nature Reviews Cancer. 2009;9(11):798-809.

105. Eswaran D, Suyun H. STAT3 as a Central Regulator of Tumor Metastases. Current Molecular Medicine. 2009;9(5):626-33.

106. Huang S. Regulation of Metastases by Signal Transducer and Activator of Transcription 3 Signaling Pathway: Clinical Implications. Clinical Cancer Research. 2007;13(5):1362-6.

107. Kortylewski M, Kujawski M, Wang T, Wei S, Zhang S, Pilon-Thomas S, et al. Inhibiting Stat3 signaling in the hematopoietic system elicits multicomponent antitumor immunity. Nature Medicine. 2005;11(12):1314-21.

108. Wu J, Gao F-x, Wang C, Qin M, Han F, Xu T, et al. IL-6 and IL-8 secreted by tumour cells impair the function of NK cells via the STAT3 pathway in oesophageal squamous cell carcinoma. Journal of Experimental & Clinical Cancer Research. 2019;38(1):321.

109. Fujiwara Y, Sun Y, Torphy RJ, He J, Yanaga K, Edil BH, et al. Pomalidomide Inhibits PD-L1 Induction to Promote Antitumor Immunity. Cancer Research. 2018;78(23):6655-65.

110. Kawamata A, Ito D, Odani T, Isobe T, Iwase M, Hatori M, et al. Thalidomide suppresses melanoma growth by activating natural killer cells in mice. Oncol Rep. 2006;16(6):1231-6.

111. Gotthardt D, Putz EM, Straka E, Kudweis P, Biaggio M, Poli V, et al. Loss of STAT3 in murine NK cells enhances NK cell–dependent tumor surveillance. Blood. 2014;124(15):2370-9.

112. Cacalano NA. Regulation of Natural Killer Cell Function by STAT3. Frontiers in Immunology. 2016;7(128).

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