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Potential role of inducible GPR3 expression under stimulated T cell conditions

白榊 紘子 広島大学

2022.05.26

概要

GPR3 は G 蛋白質共役型受容体の 1 つで、恒常的 Gαs 活性化能を有し、リガンド非存在下で細胞内 cAMP レベル上に寄与する受容体である。GPR3 は中枢神経系、卵母細胞に豊富に発現し、中枢神経系において神経突起伸長・生存・分化に関与し、卵母細胞では減数分裂停止の維持への関与、病態ではアルツハイマー病、多発性硬化症、脳梗塞との関連性が報告されている。近年、多発性硬化症において、末梢血単核細胞における GPR3 発現低下と予後良の相関性が報告された。しかしながら、免疫細胞における GPR3 の機能や役割は明であり、本研究では T 細胞における GPR3 発現と機能について検討した。

ヒト T リンパ球細胞株 Jurkat 細胞では、PKC 活性化剤 PMA とカルシウムイオノフォアの ionomycin 刺激により、刺激後 2 時間で顕著な GPR3 発現を観察し、さらにその発現は 8 時間まで持続した。T 細胞における GPR3 発現の役割を検索するため、Jurkat 細胞において GPR3 発現抑制下で変化する遺伝子群をマイクロアレイで解析した。PMA/ionomycin 刺激後 6 時間で GPR3発現抑制条件下で強い発現低下を認めた遺伝子として転写因子 NR4A2 を同定した。リアルタイム RT-PCR 法による NR4A 受容体発現解析においても、Jurkat 細胞刺激後 6 時間および 12 時間で NR4A2 発現の有意な低下を認めたが、NR4A1 および NR4A3 の有意な変化を認めなかった。一方、 GPR3 発現上により NR4A1-3 全ての発現誘導を認めた。以上の結果から、T 細胞刺激による GPR3の持続的発現上が、NR4A2 発現を誘導することが明らかとなった。

次に、GPR3 を介した NR4A2 発現誘導のシグナル伝達経路を検討した。Jurkat 細胞では PMA/ionomycin 刺激による NR4A2 発現誘導は、PKC、MEK、p38MAPK の各阻害剤によって有意に抑制された。GPR3 導入細胞においても、刺激後 6 時間で NR4A2 発現が有意に増加し、この効果は PKC、PKA、MEK、p38 MAPK の各阻害剤で有意に抑制された。以上の結果から GPR3 を介した NR4A2発現誘導には、PKA および MAPK シグナル経路の関与が示唆された。

NR4A 受容体は、NBRE プロモーター領域にモノマーとして、NurRE プロモーター領域にはホモまたはヘテロダイマーとして結合し、転写活性を上昇させる。Jurkat 細胞において、GPR3 発現が NR4A 活性に与える影響を解明するため、NBRE または NurRE プロモーター領域をルシフェラーゼの上流に挿入したコンストラクトを作製し、ルシフェラーゼレポーターアッセイを用いて評価した。NBRE・NurRE プロモーター活性は PMA/Ionomycin 刺激 12 時間まで発現増加がみられたが、GPR3 発現抑制により刺激後 12 時間において NBRE・NurRE プロモーター活性の有意な減少を認めた。一方で、GPR3 過剰発現により刺激後 4 時間で顕著で有意な NBRE・NurRE プロモーター活性増加を認めた。したがって、GPR3 発現と NBRE・NurRE プロモーター活性には正の相関を認めた。

さらに、マウス初代脾臓 T 細胞を用いて、T 細胞における GPR3 の役割を検索した。予想通り、マウス CD4+脾臓細胞における GPR3 発現は、CD3/28 または PMA/ionomycin 刺激後 1 時間で誘導されたが、この発現はそれぞれ一過性または持続的であった。T 細胞では NR4A2 発現により、 Treg 細胞分化の制御が報告されていることから、野生型マウス(WT)または GPR3 ノックアウト(GPR3KO)マウスを用いて、胸腺や脾臓細胞における Treg 細胞分化を検討した。胸腺と脾臓における T 細胞数や Treg 細胞割合について、WT と GPR3KO で差異を認めなかった。また、T 細胞刺激条件下で WT と GPR3KO の間で、NR4A1-3 発現に有意な差異を認めなかった。一方で、GPR3KO マウスでは、CD4+および CD8+ T 細胞両分画において、エフェクターT 細胞(CD44+CD62L-)の有意な割合増加を認めた。

本研究において、T 細胞において GPR3 が細胞刺激後 1-2 時間の早期に発現誘導し、持続的な GPR3 発現は NR4A2 発現や NR4A プロモーター活性に影響を与えることを明らかにした。また、初代培養 CD4 陽性 T 細胞においては、GPR3 発現レベルの持続はシグナル入力により異なり、今回検討した T 細胞刺激条件下では NR4A2 発現に影響を与えなかった。一方で、GPR3 は総じてエフェクターT 細胞活性の抑制に寄与することが明らかになった。T 細胞における GPR3 発現レベルと持続時間が、抗原受容体のシグナル伝達を調節し、T 細胞寛容性などに影響を与える可能性が示唆された。

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参考文献

1. Eggerickx D, Denef JF, Labbe O, et al. Molecular cloning of an orphan G-protein- coupled receptor that constitutively activates adenylate cyclase. Biochem J. 1995;309(Pt 3):837e843.

2. Ikawa F, Tanaka S, Harada K, Hide I, Maruyama H, Sakai N. Detailed neuronal distribution of GPR3 and its co-expression with EF-hand calcium-binding proteins in the mouse central nervous system. Brain Res. 2021;1750:147166.

3. Mehlmann LM, Saeki Y, Tanaka S, et al. The Gs-linked receptor GPR3 maintains meiotic arrest in mammalian oocytes. Science. 2004;306(5703):1947e1950.

4. Tanaka S, Ishii K, Kasai K, Yoon SO, Saeki Y. Neural expression of G protein- coupled receptors GPR3, GPR6, and GPR12 up-regulates cyclic AMP levels and promotes neurite outgrowth. J Biol Chem. 2007;282(14):10506e10515.

5. Tanaka S, Shimada N, Shiraki H, et al. GPR3 accelerates neurite outgrowth and neuronal polarity formation via PI3 kinase-mediating signaling pathway in cultured primary neurons. Mol Cell Neurosci. 2021:103691.

6. Tanaka S, Miyagi T, Dohi E, et al. Developmental expression of GPR3 in rodent cerebellar granule neurons is associated with cell survival and protects neurons from various apoptotic stimuli. Neurobiol Dis. 2014;68:215e227.

7. Thathiah A, Spittaels K, Hoffmann M, et al. The orphan G protein-coupled re- ceptor 3 modulates amyloid-beta peptide generation in neurons. Science. 2009;323(5916):946e951.

8. Hecker M, Paap BK, Goertsches RH, et al. Reassessment of blood gene expres- sion markers for the prognosis of relapsing-remitting multiple sclerosis. PLoS One. 2011;6(12), e29648.

9. Torgersen KM, Vang T, Abrahamsen H, Yaqub S, Taske´n K. Molecular mecha- nisms for protein kinase A-mediated modulation of immune function. Cell Signal. 2002;14(1):1e9.

10. Conche C, Boulla G, Trautmann A, Randriamampita C. T cell adhesion primes antigen receptor-induced calcium responses through a transient rise in aden- osine 3',5'-cyclic monophosphate. Immunity. 2009;30(1):33e43.

11. Henney CS, Lichtenstein LM. The role of cyclic AMP in the cytolytic activity of lymphocytes. J Immunol. 1971;107(2):610e612.

12. Minguet S, Huber M, Rosenkranz L, Schamel WW, Reth M, Brummer T. Adenosine and cAMP are potent inhibitors of the NF-kappa B pathway downstream of immunoreceptors. Eur J Immunol. 2005;35(1):31e41.

13. Tamir A, Granot Y, Isakov N. Inhibition of T lymphocyte activation by cAMP is associated with down-regulation of two parallel mitogen-activated protein kinase pathways, the extracellular signal-related kinase and c-Jun N-terminal kinase. J Immunol. 1996;157(4):1514e1522.

14. Vang AG, Housley W, Dong H, et al. Regulatory T-cells and cAMP suppress effector T-cells independently of PKA-CREM/ICER: a potential role for Epac. Biochem J. 2013;456(3):463e473.

15. Vang T, Abrahamsen H, Myklebust S, Horejsi V, Tasken K. Combined spatial and enzymatic regulation of Csk by cAMP and protein kinase a inhibits T cell re- ceptor signaling. J Biol Chem. 2003;278(20):17597e17600.

16. Ohta A, Ohta A, Madasu M, et al. A2A adenosine receptor may allow expansion of T cells lacking effector functions in extracellular adenosine-rich microen- vironments. J Immunol. 2009;183(9):5487e5493.

17. Vang AG, Ben-Sasson SZ, Dong H, et al. PDE8 regulates rapid Teff cell adhesion and proliferation independent of ICER. PLoS One. 2010;5(8):e12011.

18. Wells AD. New insights into the molecular basis of T cell anergy: anergy fac- tors, avoidance sensors, and epigenetic imprinting. J Immunol. 2009;182(12): 7331e7341.

19. Bopp T, Becker C, Klein M, et al. Cyclic adenosine monophosphate is a key component of regulatory T cell-mediated suppression. J Exp Med. 2007;204(6): 1303e1310.

20. Maxwell MA, Muscat GE. The NR4A subgroup: immediate early response genes with pleiotropic physiological roles. Nucl Recept Signal. 2006;4:e002.

21. Saucedo-Cardenas O, Quintana-Hau JD, Le WD, et al. Nurr1 is essential for the induction of the dopaminergic phenotype and the survival of ventral mesen- cephalic late dopaminergic precursor neurons. Proc Natl Acad Sci U S A. 1998;95(7):4013e4018.

22. Zetterstro€m RH, Solomin L, Jansson L, Hoffer BJ, Olson L, Perlmann T. Dopamine neuron agenesis in Nurr1-deficient mice. Science. 1997;276(5310):248e250.

23. Sekiya T, Kashiwagi I, Yoshida R, et al. Nr4a receptors are essential for thymic regulatory T cell development and immune homeostasis. Nat Immunol. 2013;14(3):230e237.

24. Sekiya T, Kashiwagi I, Inoue N, et al. The nuclear orphan receptor Nr4a2 in- duces Foxp3 and regulates differentiation of CD4+ T cells. Nat Commun. 2011;2:269.

25. Hogquist KA, Baldwin TA, Jameson SC. Central tolerance: learning self-control in the thymus. Nat Rev Immunol. 2005;5(10):772e782.

26. Tetradis S, Bezouglaia O, Tsingotjidou A. Parathyroid hormone induces expression of the nuclear orphan receptor Nurr1 in bone cells. Endocrinology. 2001;142(2):663e670.

27. Smith AG, Luk N, Newton RA, Roberts DW, Sturm RA, Muscat GE. Melanocortin- 1 receptor signaling markedly induces the expression of the NR4A nuclear receptor subgroup in melanocytic cells. J Biol Chem. 2008;283(18): 12564e12570.

28. Miyagi T, Tanaka S, Hide I, Shirafuji T, Sakai N. The subcellular dynamics of the gs-linked receptor GPR3 contribute to the local activation of PKA in cerebellar granular neurons. PLoS One. 2016;11(1):e0147466.

29. Maira M, Martens C, Philips A, Drouin J. Heterodimerization between members of the Nur subfamily of orphan nuclear receptors as a novel mechanism for gene activation. Mol Cell Biol. 1999;19(11):7549e7557.

30. Philips A, Lesage S, Gingras R, et al. Novel dimeric Nur77 signaling mechanism in endocrine and lymphoid cells. Mol Cell Biol. 1997;17(10):5946e5951.

31. Cheng LE, Chan FK, Cado D, Winoto A. Functional redundancy of the Nur77 and Nor-1 orphan steroid receptors in T-cell apoptosis. EMBO J. 1997;16(8): 1865e1875.

32. Lith SC, van Os BW, Seijkens TTP, de Vries CJM. Nur'turing tumor T cell toler- ance and exhaustion: novel function for Nuclear Receptor Nur77 in immunity. Eur J Immunol. 2020;50(11):1643e1652.

33. Amsen D, Revilla Calvo C, Osborne BA, Kruisbeek AM. Costimulatory signals are required for induction of transcription factor Nur77 during negative se- lection of CD4(+)CD8(+) thymocytes. Proc Natl Acad Sci U S A. 1999;96(2): 622e627.

34. Pirih FQ, Nervina JM, Pham L, Aghaloo T, Tetradis S. Parathyroid hormone in- duces the nuclear orphan receptor NOR-1 in osteoblasts. Biochem Biophys Res Commun. 2003;306(1):144e150.

35. Newton RA, Roberts DW, Leonard JH, Sturm RA. Human melanocytes expressing MC1R variant alleles show impaired activation of multiple signaling pathways. Peptides. 2007;28(12):2387e2396.

36. Oh S, Shin JH, Jang EJ, et al. Anti-inflammatory activity of chloroquine and amodiaquine through p21-mediated suppression of T cell proliferation and Th1 cell differentiation. Biochem Biophys Res Commun. 2016;474(2): 345e350.

37. Torii T, Kawarai T, Nakamura S, Kawakami H. Organization of the human orphan nuclear receptor Nurr1 gene. Gene. 1999;230(2):225e232.

38. Murphy EP, Conneely OM. Neuroendocrine regulation of the hypothalamic pituitary adrenal axis by the nurr1/nur77 subfamily of nuclear receptors. Mol Endocrinol. 1997;11(1):39e47.

39. Saxena M, Williams S, Taske´n K, Mustelin T. Crosstalk between cAMP- dependent kinase and MAP kinase through a protein tyrosine phosphatase. Nat Cell Biol. 1999;1(5):305e311.

40. Brudvik KW, Taske´n K. Modulation of T cell immune functions by the prosta- glandin E(2) - cAMP pathway in chronic inflammatory states. Br J Pharmacol. 2012;166(2):411e419.

41. Mahic M, Yaqub S, Johansson CC, Taske´n K, Aandahl EM. FOXP3+CD4+CD25+ adaptive regulatory T cells express cyclooxygenase-2 and suppress effector T cells by a prostaglandin E2-dependent mechanism. J Immunol. 2006;177(1): 246e254.

42. Montarolo F, Martire S, Perga S, Bertolotto A. NURR1 impairment in multiple sclerosis. Int J Mol Sci. 2019;20(19).

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