リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

大学・研究所にある論文を検索できる 「次亜塩素酸ナトリウムに浸漬したMineral trioxide aggregateはヒト歯根膜幹細胞株の骨芽細胞分化能を低下させる」の論文概要。リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。
リケラボ

コピーが完了しました

URLをコピーしました

論文の公開元へ論文の公開元へ
書き出し

次亜塩素酸ナトリウムに浸漬したMineral trioxide aggregateはヒト歯根膜幹細胞株の骨芽細胞分化能を低下させる

山下, 梢 YAMASHITA, Kozue ヤマシタ, コズエ 九州大学

2022.03.23

概要

目的：White mineral trioxide aggregate(WMTA)は歯内治療用材料であり、これまでに次亜塩素酸ナトリウム(NaOCl)と接触することで、色調変化を引き起こすことが報告されている。しかしながら、NaOClと接触したWMTAが、その周囲に存在する細胞の硬組織形成能に及ぼす影響は未だ明らかとなっていない。そこで本研究では、NaOClに浸漬したWMTA discの表面構造と、それらがヒト歯根膜幹細胞株(1-17細胞株)の骨芽細胞分化に及ぼす影響について検証することとした。

材料と方法：ProRoot MTA(Dentsply Sirona)を蒸留水(DW)と混和し、直径5mm・高さ2mmの円形型枠に充填後、24時間硬化させWMTAdiscを作製した。WMTA discをDWまたはNaOClに24時間浸漬後、走査型電子顕微鏡(SEM)およびエネルギー分散型X線装置(EDX)を用いてWMTA disc表面の観察を行った。また、Calcium Assay Kitを用いてWMTA discから培地へのカルシウムイオン放出量の測定を行った。さらに、WMTA discを1-17細胞株と共培養し、von Kossa染色および定量的RT-PCR法を用いて、それらの骨芽細胞分化誘導能について評価を行った。

結果と考察：DWに浸漬したdisc(D-WMTA)では色調変化は認められなかったが、NaOlOに浸漬したdisc(Na-WMTA)では茶褐色に色調変化が認められた。SEM-EDXの結果、D-WMTA、Na-WMTAともに、Ca、Si、Al、C及びOを含む構造物が認められたが、Na-WMTAではそれらに加え、NaとClを含む構造物が認められた。Na-WMTAでは、D-WMTAと比較してdisc表面の元素分布におけるCaの割合が減少し、培地中に放出されるカルシウムイオンの量も減少した。D-WMTAを1-17細胞株と共培養した結果、多くの石灰化基質が形成され、骨関連遺伝子の発現も、disc無しで培養を行った1-17細胞株と比較し、有意に上昇した。一方で、Na-WMTAと共培養した1-17細胞株では、わずかに石灰化基質が形成される程度であり、骨関連遺伝子の発現も、D-WMTAと共培養した1-17細胞株と比較し、有意に低下した。本研究結果から、NaOClはWMTA表面の結晶構造及び元素分布を変化させることで、カルシウムイオンの放出量を減少させることが示唆された。加えて、NaOClによるWMTAからのカルシウムイオン放出量の減少が、WMTAのヒト歯根膜幹細胞に対する骨芽細胞分化誘導能を低下させる可能性が示唆された。

論文の公開元へ

この論文で使われている画像

関連論文

関連論文をもっと見る

参考文献

1. American Association of Endodontists. Glossary of endodontic terms. 9th ed. Chicago: American Association of Endodontists (2016).

2. Sinai, I. H. Endodontic perforations: Their prognosis and treatment. J. Am. Dent. Assoc. 1939(95), 90–95. https://doi.org/10.14219/ jada.archive.1977.0531 (1977).

3. Nakata, T. T., Bae, K. S. & Baumgartner, J. C. Perforation repair comparing mineral trioxide aggregate and amalgam using an anaerobic bacterial leakage model. J. Endod. 24, 184–186. https://doi.org/10.1016/s0099-2399(98)80180-5 (1998).

4. Ford, T. R., Torabinejad, M., McKendry, D. J., Hong, C. U. & Kariyawasam, S. P. Use of mineral trioxide aggregate for repair of furcal perforations. Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. 79, 756–763. https://doi.org/10.1016/s1079-2104(05) 80313-0 (1995).

5. Storm, B., Eichmiller, F. C., Tordik, P. A. & Goodell, G. G. Setting expansion of gray and white mineral trioxide aggregate and Portland cement. J. Endod. 34, 80–82. https://doi.org/10.1016/j.joen.2007.10.006 (2008).

6. Zehnder, M. Root canal irrigants. J. Endod. 32, 389–398. https://doi.org/10.1016/j.joen.2005.09.014 (2006).

7. Camilleri, J. Color stability of white mineral trioxide aggregate in contact with hypochlorite solution. J. Endod. 40, 436–440. https:// doi.org/10.1016/j.joen.2013.09.040 (2014).

8. Zapf, A. M., Chedella, S. C. & Berzins, D. W. Effect of additives on mineral trioxide aggregate setting reaction product formation. J. Endod. 41, 88–91. https://doi.org/10.1016/j.joen.2014.07.020 (2015).

9. Seo, B. M. et al. Investigation of multipotent postnatal stem cells from human periodontal ligament. Lancet 364, 149–155. https:// doi.org/10.1016/s0140-6736(04)16627-0 (2004).

10. Vidovic Zdrilic, I. et al. Mineral trioxide aggregate improves healing response of periodontal tissue to injury in mice. J. Periodontal Res. 52, 1058–1067. https://doi.org/10.1111/jre.12478 (2017).

11. Tomokiyo, A. et al. Development of a multipotent clonal human periodontal ligament cell line. Differ. Res. Biol. Divers. 76, 337–347. https://doi.org/10.1111/j.1432-0436.2007.00233.x (2008).

12. Fujii, S., Maeda, H., Wada, N., Kano, Y. & Akamine, A. Establishing and characterizing human periodontal ligament fibroblasts immortalized by SV40T-antigen and hTERT gene transfer. Cell Tissue Res. 324, 117–125. https://doi.org/10.1007/s00441-005- 0101-4 (2006).

13. Tomokiyo, A. et al. A multipotent clonal human periodontal ligament cell line with neural crest cell phenotypes promotes neuro- cytic differentiation, migration, and survival. J. Cell. Physiol. 227, 2040–2050. https://doi.org/10.1002/jcp.22933 (2012).

14. Tomokiyo, A. et al. Detection, characterization, and clinical application of mesenchymal stem cells in periodontal ligament tissue. Stem Cells Int. 2018, 5450768. https://doi.org/10.1155/2018/5450768 (2018).

15. Maeda, H., Wada, N., Nakamuta, H. & Akamine, A. Human periapical granulation tissue contains osteogenic cells. Cell Tissue Res. 315, 203–208. https://doi.org/10.1007/s00441-003-0832-z (2004).

16. Mohammadi, Z. Sodium hypochlorite in endodontics: An update review. Int. Dent. J. 58, 329–341. https://doi.org/10.1111/j.1875- 595x.2008.tb00354.x (2008).

17. Gordon, T. M., Damato, D. & Christner, P. Solvent effect of various dilutions of sodium hypochlorite on vital and necrotic tissue. J. Endod. 7, 466–469. https://doi.org/10.1016/s0099-2399(81)80308-1 (1981).

18. Sena, N. T. et al. In vitro antimicrobial activity of sodium hypochlorite and chlorhexidine against selected single-species biofilms. Int. Endod. J. 39, 878–885. https://doi.org/10.1111/j.1365-2591.2006.01161.x (2006).

19. Tsotsis, P., Dunlap, C., Scott, R., Arias, A. & Peters, O. A. A survey of current trends in root canal treatment: Access cavity design and cleaning and shaping practices. Austral. Endod. J. 47, 27–33. https://doi.org/10.1111/aej.12449 (2021).

20. Keskin, C., Demiryurek, E. O. & Ozyurek, T. Color stabilities of calcium silicate-based materials in contact with different irrigation solutions. J. Endod. 41, 409–411. https://doi.org/10.1016/j.joen.2014.11.013 (2015).

21. Voveraityte, V., Gleizniene, S., Lodiene, G., Grabliauskiene, Z. & Machiulskiene, V. Spectrophotometric analysis of tooth discol- ouration induced by mineral trioxide aggregate after final irrigation with sodium hypochlorite: An in vitro study. Austral. Endod. J. 43, 11–15. https://doi.org/10.1111/aej.12149 (2017).

22. Zou, L., Shen, Y., Li, W. & Haapasalo, M. Penetration of sodium hypochlorite into dentin. J. Endod. 36, 793–796. https://doi.org/ 10.1016/j.joen.2010.02.005 (2010).

23. Torabinejad, M., Rastegar, A. F., Kettering, J. D. & Pitt Ford, T. R. Bacterial leakage of mineral trioxide aggregate as a root-end filling material. J. Endod. 21, 109–112. https://doi.org/10.1016/s0099-2399(06)80433-4 (1995).

24. Shahi, S. et al. Comparison of the sealing ability of mineral trioxide aggregate and Portland cement used as root-end filling materi- als. J. Oral Sci. 53, 517–522. https://doi.org/10.2334/josnusd.53.517 (2011).

25. Tang, H. M., Torabinejad, M. & Kettering, J. D. Leakage evaluation of root end filling materials using endotoxin. J. Endod. 28, 5–7. https://doi.org/10.1097/00004770-200201000-00002 (2002).

26. Bayram, H. M., Saklar, F., Bayram, E., Orucoglu, H. & Bozkurt, A. Determination of the apical sealing abilities of mineral trioxide aggregate, Portland cement, and bioaggregate after irrigation with different solutions. J. Int. Oral Health 7, 13–17 (2015).

27. De-Deus, G., Reis, C., Brandão, C., Fidel, S. & Fidel, R. A. The ability of Portland cement, MTA, and MTA Bio to prevent through- and-through fluid movement in repaired furcal perforations. J. Endod. 33, 1374–1377. https://doi.org/10.1016/j.joen.2007.07.024 (2007).

28. Lee, Y. L. et al. Effects of physiological environments on the hydration behavior of mineral trioxide aggregate. Biomaterials 25, 787–793. https://doi.org/10.1016/s0142-9612(03)00591-x (2004).

29. Lazić, S. & Radiation Protection Department, I. o. N. S., Yugoslavia. Microcrystalline hydroxyapatite formation from alkaline solutions. J. Cryst. Growth 147, 147–154 (1995).

30. Torabinejad, M., Hong, C. U., McDonald, F. & Pitt Ford, T. R. Physical and chemical properties of a new root-end filling material. J. Endod. 21, 349–353. https://doi.org/10.1016/s0099-2399(06)80967-2 (1995).

31. Morita, M. et al. Antibacterial activities and mineral induction abilities of proprietary MTA cements. Dent. Mater. J. 40, 297–303. https://doi.org/10.4012/dmj.2019-351 (2021).

32. Denes, B. J., Ait-Lounis, A., Wehrle-Haller, B. & Kiliaridis, S. Core matrisome protein signature during periodontal ligament maturation from pre-occlusal eruption to occlusal function. Front. Physiol. 11, 174. https://doi.org/10.3389/fphys.2020.00174 (2020).

33. Wada, N. et al. Periodontal ligament cells secrete the factor that inhibits osteoclastic differentiation and function: The factor is osteoprotegerin/osteoclastogenesis inhibitory factor. J. Periodontal Res. 36, 56–63. https://doi.org/10.1034/j.1600-0765.2001.00604.x (2001).

34. Garna, D., Kaur, M., Hughes, F. J. & Ghuman, M. Comparison of the expression of periodontal markers in dental and bone marrow- derived mesenchymal stem cells. Open Dent. J. 14, 196–202 (2020).

35. Silva, R. A. B. et al. Histopathological, histoenzymological, immunohistochemical and immunofluorescence analysis of tissue response to sealing materials after furcation perforation. Int. Endod. J. 52, 1489–1500. https://doi.org/10.1111/iej.13145 (2019).

36. Markopoulou, C. E., Vrotsos, I. A., Vavouraki, H. N., Dereka, X. E. & Mantzavinos, Z. S. Human periodontal ligament cell responses to recombinant human bone morphogenetic protein-2 with and without bone allografts. J. Periodontol. 74, 982–989. https://doi. org/10.1902/jop.2003.74.7.982 (2003).

37. Maeda, H. et al. Mineral trioxide aggregate induces bone morphogenetic protein-2 expression and calcification in human peri- odontal ligament cells. J. Endod. 36, 647–652. https://doi.org/10.1016/j.joen.2009.12.024 (2010).

参考文献をもっと見る

全国の大学の
卒論・修論・学位論文
を
一発検索！

この論文の関連論文を見る