リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

大学・研究所にある論文を検索できる 「極少数ヒト精子およびヒト精巣がん患者の精巣組織の凍結保存を可能にするための新規凍結コンテナーおよびプロトコルの開発と臨床応用」の論文概要。リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。
リケラボ

コピーが完了しました

URLをコピーしました

論文の公開元へ論文の公開元へ
書き出し

極少数ヒト精子およびヒト精巣がん患者の精巣組織の凍結保存を可能にするための新規凍結コンテナーおよびプロトコルの開発と臨床応用

鎌田 久美子 山梨大学 DOI:info:doi/10.34429/00004975

2021.03.23

概要

WHO によると不妊原因に男性因子が関係しているのは、全体の 50%である。しかしなが ら、ヒト生殖補助医療 (Assisted Reproduction Technology: ART) において、女性側への治療技術の進歩、卵子や胚培養方法などの技術の向上は目覚ましいが、男性側、精子の取り扱いについてはこの 30 年ほとんど技術が変わっていない現状が挙げられる。我が国のARTにおいては、精子数が少ないために顕微授精の割合が年々増加している。そこで、極少数の精子を確実に凍結融解できるコンテナーの開発と凍結融解の方法が必要であると考えた。また、精巣がん患者は日本においても世界的にも、射出精液の凍結が勧められているのが、現状である。その理由には、精巣組織凍結は研究段階であるからである。そこで、マウスおよびヒト精巣がん患者の精巣組織凍結方法の開発に取り組んだ。

第一章 極少数ヒト精子の凍結保存を可能にするための新規凍結コンテナーおよびプロトコルの開発
極少数の精子の患者に対しても、健常男性の精子と同様の凍結融解方法が用いられ、融解後に凍結液を洗浄する過程で、極少数の患者精子の多くが失われている。ヒト精子の凍結融解の従来法は、1.8ml のクライオチューブで 200µL～1mL の精子凍結液に精子を混和させ凍結し、解凍は 6mL の精子用の培養液に精子凍結液を混和させ、遠心処置を行い、沈殿した精子を回収する。この過程で精子が約 20～30%失われてしまう。大量の精子を有する患者であれば、凍結融解の過程で精子数が減少しても顕微授精や体外受精に使用可能だが、極少数の精子を有する患者の場合は、精子を失えば治療が不可能になる。開発した「MAYU」での精子凍結は、恒温槽を使用せず、倒立顕微鏡下で精子をガラスキャピラリーで吸引し、培養液のドロップで洗浄するため大量の洗浄液用の培養液も、遠心処置も必要がない。「MAYU」のヒトへの臨床応用を目指し、マウスで基礎実験を行った。「MAYU」で凍結したマウス精子の体外発生能力および産仔発生能力を確認し、ヒトの精子においても「MAYU」で凍結融解を行った。

結論として、1) 極少数のヒト精子 11 名の精子を「MAYU」と「クライオトップ」という卵子や胚の凍結デバイスで、凍結融解の比較を行ったところ、「MAYU」では 96.7%の精子が回収できたのに対して、「クライオトップ」では 21.2%であり、有意に「MAYU」の融解後の回収率が高かった(P<0.05)。2) 凍結融解後の運動率においても、「クライオトップ」が 19.2%であったのに対して、「MAYU」では 35.0%であった。3) マウスにおいて、「MAYU」とマウス精子の凍結の従来法である「ストロー」と新鮮精子を用いて、体外培養実験と産仔率の比較を行った。新鮮精子の受精率は 100%であったのに対して、「MAYU」では 90.3%、「ストロー」では 86.6%であった。胚盤胞発生率では、新鮮精子では 91.9%であったのに対して、「MAYU」では 77.2%、「ストロー」では 80.3%であった。偽妊娠誘起させたレシピエントマウスに胚盤胞移植を行ったところ、新鮮精子の産仔率は 29.8%であったのに対して、「MAYU」では 16.9%、「ストロー」では 17.1%であった。新鮮精子と比較すると「MAYU」および「ストロー」は、受精率、胚盤胞発生率、産仔率ともに有意に低い結果であったが、凍結区である「MAYU」は、従来法の「ストロー」と同等の結果を示した。4）「MAYU」を使用することにより、極少数の精子凍結方法が「クライオトップ」法よりも高い結果を示し、マウスにおいても健常な産仔が得られ、発育も新鮮精子由来の産仔と変わらなかったという成果を得た。2018 年に商標「MAYU」を登録し、 2019 年特許を取得した。

第二章 「ヒト精巣がん患者の精巣組織の凍結保存を可能にするための新規凍結コンテナーおよびプロトコルの開発」
次に「MAYU」の特徴である簡便な凍結方法と底面の透明度の高さを利用して、精巣組織凍結融解方法の確立を目指した。精巣がん患者はがんの進行が早く緊急性が高い場合、すぐに精巣の摘出手術が行われる。そのため、射出精液の凍結保存が間に合わない場合も多い。さらに、精巣がん患者の場合、射出精液中の精子も数が減少し、異常精子が多いことも報告されている。精巣がん患者は、手術後に化学療法や放射線治療が行われるため、患者の精子の造精能力は極度に低下し、精子のDNA の異常が多いことが報告されている。がんを発症するのは生殖年齢期と重なるため、精子が確保できない状況は、夫婦の子供を望むことを諦めざるを得ない。精巣がん患者は日本のみではなく、海外では特に多く、精巣組織凍結融解方法の確立は、意義のある研究である。
そこで、「MAYU」を用いて、マウスの精巣組織凍結を行った。「MAYU」との比較のため、精巣組織の凍結で汎用されている「クライオチューブ」をコンテナー同士の比較、凍結液として、細胞や組織凍結で使用されている「Cellbanker1」とマウス精子凍結用の「FERTIUP 」の 2 種類の比較、凍結速度として、「Rapid」と「Slow」の比較、新鮮精巣組織との比較、合計 9 区の比較を行った。その結果、MAYU-Cellbanker1-Slow が他の 7 区よりも精子運動率、生存率が高かった。「MAYU」および「Cryotube」、「Cellbanker1」および「FERTIUP 」を「Slow」で凍結融解を行った。4 区と新鮮区の精子を使用し、マウス卵子に顕微授精を行い、受精率、体外培養後の発生率、胚移植後の産仔率の比較を行った。「MAYU」を使用して、健常な産仔を得た。さらに、金沢大学の倫理委員会の承認を得て、5 名の精巣がん患者の精巣組織凍結を行い、5 名全ての患者から融解後に運動精子を得ることができた。「MAYU」による精巣組織凍結は、精巣がん患者の妊孕性温存に寄与するものになると考える。

総括
「MAYU」により、極少数のヒト精子であっても、凍結融解の過程で精子数を減少させることなく凍結保存ができた。また、マウスによる基礎実験で、産仔を得て、健常に発育したことからも安全性を確認できた。さらに精巣がん患者の精巣組織の凍結融解にも、「MAYU」を使用し、運動精子を得ることができた。マウス精巣組織の凍結融解においても、産仔を得て、健常に発育したことからも安全性を確認できた。「MAYU」は極少数精子の凍結保存だけでなく、精巣組織保存にも有効であると考える。

論文の公開元へ

この論文で使われている画像

関連論文

関連論文をもっと見る

参考文献

1. Carlsen E, Giwercman A, Keiding N, Skakkebaek NE. Evidence for decreasing quality of semen past 50 years. Br Med J 1992; 305: 609-613, 1992

2. 平成 9 年度厚生省心身障害研究「不妊治療の在り方に関する研究」最近の精子数減少に関する国内外文献調査（分担研究：男性不妊の実態および治療に関する研究）分担研究報告書 研究協力者：聖マリアンナ医科大学泌尿器科 岩本晃明、松下智彦

3. Bhasin S, Cunningham GR, Hayes FJ, Matsumoto AM, Snyder PJ, Swerdloff RS, et al. Testosterone therapy in men with androgen deficiency syndromes: an Endocrine Society clinical practice guideline. J Clin Endocrinol Metab. 2010; 95: 2536–2559.

4. Mulhall JP, Trost LW, Brannigan RE, Kurtz EG, Redmon JB, Chiles KA, et al. Evaluation and Management of Testosterone Deficiency: AUA Guideline. J Urol. 2018; 200: 423–432.

5. Heidelbaugh JJ. Endocrinology update: testicular hypogonadism. FP Essent. 2016; 451: 31–41.

6. Tajar A, Forti G, O'Neill TW, Lee DM, Silman AJ, Finn JD, et al. Characteristics of secondary, primary, and compensated hypogonadism in aging men: evidence from the European Male Ageing Study. J Clin Endocrinol Metab. 2010; 95: 1810–1818.

7. Ramasamy R, Scovell JM, Kovac JR, Lipshultz LI. Testosterone supplementation versus clomiphene citrate for hypogonadism: an age matched comparison of satisfaction and efficacy. J Urol. 2014; 192: 875–879.

8. Zhang K.S., Zhao M.J., An Q., Jia Y.F., Fu L.L., Xu J.F., Gu Y.Q. Effects of testosterone supplementation therapy on lipid metabolism in hypogonadal men with T2DM: A meta- analysis of randomized controlled trials. Andrology. 2018; 6: 37–46.

9. Pubertal arrest due to Zn deficiency: the effect of zinc supplementation. Karaca Z, Tanriverdi F, Kurtoglu S, Tokalioglu S, Unluhizarci K, Kelestimur F.Hormones (Athens). 2007; 6: 71-4.

10. Association of hypogonadism with vitamin D status: the European Male Ageing Study. Lee DM, Tajar A, Pye SR, Boonen S, Vanderschueren D, Bouillon R, O'Neill TW, Bartfai G, Casanueva FF, Finn JD, Forti G, Giwercman A, Han TS, Huhtaniemi IT, Kula K, Lean ME, Pendleton N, Punab M, Wu FC; EMAS study group.Eur J Endocrinol. 2012; 166: 77-85.

11. 令和元年度倫理委員会 登録・調査小委員会報告 （2018 年分の体外受精・胚移植等の臨床実施成績および 2020 年 7 月における登録施設名）

12. Palermo GD, O'Neill CL, Chow S, Cheung S, Parrella A, Pereira N, Rosenwaks Z. Intracytoplasmic sperm injection: state of the art in humans. Reproduction. 2017; 154: F93- F110.

13. Microsurgical injection of spermatozoa into hamster eggs with subsequent transformation of sperm nuclei into male pronuclei. Uehara T, Yanagimachi R. Biol Reprod. 1976;15: 467-70.

14. Hosoi Y, Miyake M, Utsumi K, and Iritani A. 1988. Development of rabbit oocyte after microinjection of spermatozoa. (Abstr.331). In Proceedings of 11th International Congress on animal Reproduction and Artificial Insemination.

15. Goto K, Kinoshita A, Takuma Y and Ogawa K. Fertilization of bovine oocytes by the injection of immobilized, killed spermatozoa. Vet. Rec. 1990; 127, 517-520.

16. Intracytoplasmic sperm injection in the rat. Dozortsev D, Wakaiama T, Ermilov A, Yanagimachi R. Zygote. 1998; 6: 143-7.

17. Lanzendorf SE, Maloney MK, Veeck LL, Slusser J, Hodgen GD & Rosenwaks Z. A preclinical evaluation of pronuclear formation by microinjection of human spermatozoa into human oocytes. Fertility and Sterility. 1988; 49: 835–842.

18. Palermo G, Joris H, Devroey P, Van Steirteghem AC. Pregnancies after intracytoplasmic injection of single spermatozoon into an oocyte. Lancet 1992; 340: 17

19. Schoysman R, Vanderzwalmen P, Nijs M, Segal L, Segal-Bertin G, Geerts L, van Roosendaal E & Schoysman D. Pregnancy after fertilization with human testicular spermatozoa. Lancet: 1993: 342: 1237.

20. Tournaye H, Devroey P, Liu J, Nagy Z, Lissens W & VanSteirteghem A. Microsurgical epididymal sperm aspiration and intracytoplasmic sperm injection: a new effective approach to infertility as a result of congenital bilateral absence of the vas deferens. Fertility and Sterility 1994: 61: 1045–1051.

21. Devroey P, Liu J, Nagy Z, Goossens A, Tournaye H, Camus M, van Steirteghem A & Silber S. Pregnancies after testicular sperm extraction and intracytoplasmic sperm injection in non-obstructive azoospermia. Human Reproduction 1995: 10: 1457–1460.

22. Tournaye H, Devroey P, Liu J, Nagy Z, Lissens W & Van Steirteghem A. Microsurgical epididymal sperm aspiration and intracytoplasmic sperm injection: a new effective approach to infertility as a result of congenital bilateral absence of the vas deferens. Fertility and Sterility: 1994: 61: 1045–1051.

23. Podsiadly BT, Woolcott RJ, Stanger JD & Stevenson K. Pregnancy resulting from intracytoplasmic injection of cryopreserved spermatozoa recovered from testicular biopsy. Human Reproduction 1996: 11: 1306–1308.

24. Testicular spermatozoon is superior to ejaculated spermatozoon for intracytoplasmic sperm injection to achieve pregnancy in infertile males with high sperm DNA damage. Zhang J, Xue H, Qiu F, Zhong J, Su J.Andrologia. 2019 ;51: e13175.

25. Post-testicular sperm environment and fertility. Gatti JL, Castella S, Dacheux F, Ecroyd H, Métayer S, Thimon V, Dacheux JL.Anim Reprod Sci. 2004; 82-83: 321-39.

26. Comparison of oocyte activation and Ca2+ oscillation-inducing abilities of round/elongated spermatids of mouse, hamster, rat, rabbit and human assessed by mouse oocyte activation assay. Yazawa H, Yanagida K, Katayose H, Hayashi S, Sato A.Hum Reprod. 2000; 15: 2582-90.

27. Fertilization and developmental initiation of oocytes by injection of spermatozoa and pre- spermatozoal cells. Yanagimachi R.Ital J Anat Embryol. 2005; 110: 145-50.

28. Paternal age as an independent factor does not affect embryo quality and pregnancy outcomes of testicular sperm extraction intracytoplasmic sperm injection in azoospermia. Park YS, Lee SH, Lim CK, Choi HW, An JH, Park CW, Lee HS, Lee JS, Seo JT. Andrologia. 2018; 50.

29. Tomita K, Sakai S, Khanmohammadi M, Yamochi T, Hashimoto S, Anzai M, Morimoto Y, Taya M, Hosoi Y. Cryopreservation of a small number of human sperm using enzymatically fabricated, hollow hyaluronan microcapsules handled by conventional ICSI procedures. J Assist Reprod Genet 2016; 33: 501-511.

30. Araki Y, Yao T, Asayama Y, Matsuhisa A, Araki Y. Single human sperm cryopreservation method using hollow-core agarose capsules. Fertil Steril 2015; 104: 1004-1009.

31. Kuwayama, M., Vajta, G., Kato, O., Leibo, S.P. Highly efficient vitrification method for cryopreservation of human oocytes. Reprod Biomed Online 2005; 11, 300–308.

32. Endo Y, Fujii Y, Kurotsuchi S, Motoyama H, Funahashi H. Successful delivery derived from vitrified-warmed spermatozoa from a patient with nonobstructive azoospermia. Fertil Steril 2012; 98: 1423-1427.

33. Meirow D, Schenker JG. Cancer and male infertility. Hum Reprod. 1995; 10: 2017-22.

34. Jemma A Moody, Kamran Ahmed, Catherine Horsfield, Malene R V Pedersen, Tet Yap, Majid Shabbir. Fertility Preservation in Testicular Cancer - Predictors of Spermatogenesis. BJU Int. 2018; 122: 236-242.

35. Joensen UN, Jørgensen N, Rajpert-De Meyts E, Skakkebaek NE. Testicular dysgenesis syndrome and Leydig cell function. Basic Clin Pharmacol Toxicol. 2008; 102: 155-161.

36. Delouya G, Baazeem A, Boman JM, Violette P, Saad F, Zini A. Identification of spermatozoa in archived testicular cancer specimens: implications for bench side sperm retrieval at orchidectomy. Urology 2010; 75: 1436-1440.

37. Choy JT, Wiser HJ, Bell SW, Cashy J, Brannigan RE, Köhler TS. Predictors of spermatogenesis in orchiectomy specimens. Urology 2013; 81: 288-292.

38. Beaud H, Tremblay AR, Chan PTK, Delbes G. Sperm DNA Damage in Cancer Patients. Adv Exp Med Biol 2019; 1166: 189-203.

39. Gandini L, Sgrò P, Lombardo F, Paoli D, Culasso F, Toselli L, Tsamatropoulos P, LenziA. Effect of chemoor radiotherapy on sperm parameters of testicular cancer patients. Hum Reprod 2006; 21: 2882-2889.

40. Trottman M, Becker AJ, Stadler T et al. Semen quality in men with malignant diseases before and after therapy and the role of cryopreservation. Eur Urol. 2007; 52: 355-367.

41. Jemma A Moody, Kamran Ahmed, Catherine Horsfield, Malene R V Pedersen, Tet Yap, Majid Shabbir. Fertility Preservation in Testicular Cancer - Predictors of Spermatogenesis. BJU Int. 2018; 122: 236-242.

42. Sandro C. Esteves, Matheus Rnque, Cara K. Bradley and Nicolas Garrido. Reproductive outcomes of testicular versus ejaculated sperm for intracytoplasmic sperm injection among men with high levels of DNA fragmentation in semen: systematic review and meta-analysis. Fert Steril 2017: 108: 456-467.

43. Baert Y, Van Saen D, Haentjens P, in’t Velt P, Tournaye H, Goossens E. What is the best cryopreservation protocol for human testicular tissue banking? Hum Reprod 2013; 28: 1816- 1826.

44. Polge C, Smith AU, Parkes AS. Revial of spermatozoa after vitrification and dehydration at low temperatures. Nature 1949; 164: 666.

45. Bunge RG, Sherman JK. Fertilizing capacity of frozen human spermatozoa. Nature 1953; 172: 767-768.

46. Hashimoto H, Ishikawa T, Goto S, Kokeguchi S, Fujisawa M, Shiotani M. The effects of severity of oligozoospermia on Intracytoplasmic Sperm Injection (ICSI) cycle outcome. Syst Biol Reprod Med. 2010; 56: 91-5.

47. Deruyver Y, Vanderschueren D, Van der Aa F. Outcome of microdissection TESE compared with conventional TESE in non-obstructive azoospermia: a systematic review. Andrology 2014; 2: 20-24.

48. World Health Organization. WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen. 5th ed. Geneva: WHO Press; 2010.

49. Liu J, Nagy Z, Joris H, Tournaye H, Devroey P, Van Steirteghem AC. Intracytoplasmic sperm injection does not require special treatment of the spermatozoa. Hum Repro 1994; 9: 1127-1130.

50. Takeo T, Hoshii T, Kondo Y, Toyodome H, Arima H, Yamamura K, Irie T, Nakagata N. Methyl-beta-cyclodextrin improves fertilizing ability of C57BL/6 mouse sperm after freezing and thawing by facilitating cholesterol efflux from the cells. Biol Reprod 2008; 78: 546-551.

51. Takeo T, Nakagata N. Combination medium of cryoprotective agents containing L-glutamine and methyl-{beta}-cyclodextrin in a preincubation medium yields a high fertilization rate for cryopreserved C57BL/6J mouse sperm. Lab Anim 2010; 44: 132-137.

52. Koshimoto C, Mazur P. Effects of Cooling and Warming Rate to and from 70°C, and Effect of Further Cooling from －70 °C to －196°C on the Motility of Mouse Spermatozoa. Biol Reprod 2002; 66: 1477-1484.

53. Diercks A-K, Bürgers HF, Schwab A, Schenkel J. Improved assessment of frozen/thawed mouse spermatozoa using fluorescence microscopy. J Vet Sci 2012; 13: 315-322.

54. Bianchi PG, Manicardi GC, Urner F, Campana A, Sakkas D. Chromatin packaging and morphology in ejaculated human spermatozoa: evidence of hidden anomalies in normal spermatozoa. Mol Hum Reprod. 1996; 2: 139–144.

55. Kimura Y, Yanagimachi R. Intracytoplasmic sperm injection in the mouse. Biol Reprod 1995; 52: 709-720.

56. Meirow D, Schenker JG. Cancer and male infertility. Hum Reprod. 1995; 10: 2017-22.

57. Agarwal A (2000) Semen banking in patients with cancer: 20-year experience. Int J Androl 23,16–19.

58. Agarwal A, Ranganathan P, Kattal N, Pasqualotto F, Hallak J, Khayal S, Mascha E. Fertility after cancer: a prospective review of assisted reproductive outcome with banked semen specimens. Fertil Steril 2004; 81: 342–348.

59. Baert Y, Van Saen D, Haentjens P, in’t Velt P, Tournaye H, Goossens E. What is the best cryopreservation protocol for human testicular tissue banking? Hum Reprod 2013; 28: 1816- 1826.

60. Jemma A Moody, Kamran Ahmed, Catherine Horsfield, Malene R V Pedersen, Tet Yap, Majid Shabbir. Fertility Preservation in Testicular Cancer - Predictors of Spermatogenesis. BJU Int. 2018; 122: 236-242.

61. Joensen UN, Jørgensen N, Rajpert-De Meyts E, Skakkebaek NE. Testicular dysgenesis syndrome and Leydig cell function. Basic Clin Pharmacol Toxicol. 2008; 102: 155-161.

62. Delouya G, Baazeem A, Boman JM, Violette P, Saad F, Zini A. Identification of spermatozoa in archived testicular cancer specimens: implications for bench side sperm retrieval at orchidectomy. Urology 2010; 75: 1436-1440.

63. Choy JT, Wiser HJ, Bell SW, Cashy J, Brannigan RE, Köhler TS. Predictors of spermatogenesis in orchiectomy specimens. Urology 2013; 81: 288-292.

64. Beaud H, Tremblay AR, Chan PTK, Delbes G. Sperm DNA Damage in Cancer Patients. Adv Exp Med Biol 2019; 1166: 189-203.

65. Gandini L, Sgrò P, Lombardo F, Paoli D, Culasso F, Toselli L, Tsamatropoulos P, LenziA. Effect of chemoor radiotherapy on sperm parameters of testicular cancer patients. Hum Reprod 2006; 21: 2882-2889.

66. Trottman M, Becker AJ, Stadler T et al. Semen quality in men with malignant diseases before and after therapy and the role of cryopreservation. Eur Urol. 2007; 52: 355-367.

67. Jemma A Moody, Kamran Ahmed, Catherine Horsfield, Malene R V Pedersen, Tet Yap, Majid Shabbir. Fertility Preservation in Testicular Cancer - Predictors of Spermatogenesis. BJU Int. 2018; 122: 236-242.

68. Akanksha Mehta, Alexander Bolyakov, Peter N Schlegel, Darius A Paduch. Higher Pregnancy Rates Using Testicular Sperm in Men with Severe Oligospermia. Fertil Steril 2015; 104: 1382-1387.

69. Sandro C. Esteves, Matheus Rnque, Cara K. Bradley and Nicolas Garrido. Reproductive outcomes of testicular versus ejaculated sperm for intracytoplasmic sperm injection among men with high levels of DNA fragmentation in semen: systematic review and meta-analysis. Fert Steril 2017: 108: 456-467.

70. Furuhashi K, Ishikawa T, Hashimoto H, Yamada S, Ogata S, Mizusawa Y, Matsumoto Y, Okamoto E, Kokeguchi S, Shiotani M. Onco-testicular sperm extraction: testicular sperm extraction in azoospermic and very severely oligozoospermic cancer patients. Andrologia 2013; 45: 107-110.

71. M Roque, M Sampaio, P G de Oliveira Salles, S Geber. Onco-testicular Sperm Extraction: Birth of a Healthy Baby After Fertility Preservation in Synchronous Bilateral Testicular Cancer and Azoospermia. Andrologia 2015; 47: 482-485.

72. Nakata K, Yoshida K, Yamashita N. Preclinical evaluation of a new cryopreservation container for a limited number of human spermatozoa. J Reprod Dev 2019; 9; 65: 297-304. doi: 10.1262/jrd.2017-086.

73. Keros V, Rosenlund B, Hultenby K, Aghajanova L, Levkov L, Hovatta O. Optimizing cryopreservation of human testicular tissue: Comparison of protocols with glycerol, propanediol and dimethylsulphoxide as cryoprotectants. Hum Reprod. 2005; 20: 1676-1687.

74. Curaba M, Poels J, Langendonckt A, van, Donnez J, Wyns C. Can prepubertal human testicular tissue be cryopreserved by vitrification? Fertil Steril 2011a; 95: 2123.

75. Unni S, Kasiviswanathan S, D’Souza S, Khavale S, Mukherjee S, Patwardhan S, Bhartiya D. Efficient cryopreservation of testicular tissue: effect of age, sample state, and concentration of cryoprotectant. Fert Steril 2012; 97: 200-208.

76. Pacchiarotti J, Ramos T, Howerton K, Greilach S, Zaragoza K, Olmstead M, Izadyar F. Developing a clinical-grade cryopreservation protocol for human testicular tissue and cells. Biomed Res Int 2013; 2013: 930-962.

77. Baert Y, Braye A, Struiji RB, Pelt AMM, van Goossens E. Cryopreservation of testicular tissue before long-term testicular cell culture does not alter in vitro cell dynamics. Fert Steril 2015; 104: 1244-1252.

78. Poels J, Van Langendonckt A, Many M-C, Wese F-X, Wyns C. Vitrification preserves proliferation capacity in spermatogonia. Hum Reprod 2013; 28: 578-589.

79. Yango P, Altman E, Smith JF, Klatsky PC, Tran ND. Optimizing cryopreservation of human spermatogonial stem cells: comparing the effectiveness of testicular tissue and single cell suspension cryopreservation. Fertil Steril 2014; 102: 1491-1498.

80. Jens O.M. Karlson and Mehmet Toner. Long term storage of tissues by cryopreservation: critical issues. Biomaterials 1996; 17: 243-256.

81. Hauser R, Bibi G, Yogev L, Carmon A, Azem F, Botchan A, Yavetz H, Klieman SE, Lehavi O, Amit A, Ben-Yosef D. Virtual azoospermia and cryptozoospermia-- fresh/frozen testicular or ejaculate sperm for better IVF outcome? J Androl 2011; 32: 484-490.

82. Ito D, Wakayama S, Kamada Y, Shibasaki I, Kamimura S, Ooga M, Wakayama T. Effect of trehalose on the preservation of freeze-dried mice spermatozoa at room temperature. J Reprod Dev 2019: 9; 65: 353-359.

83. Mazur P. The role of intracellular freezing in the death of cells cooled at supraoptimal rates. Cryobiology 1977; 272: 251-272.

84. Mazur P. Freezing of living cells: mechanisms and implications. Am J Physiol 1984; 247: C125-C142.

85. Enrique Criado Scholz and Cristina González Navas, The Maining of Cryopreservation for in-vitro Fertilization Patients. Recent Advances in Cryopreservation Chapter 6: 83-122.

86. Poels J, Van Langendonckt A, Dehoux JP, Donnez J, Wyns C. Vitrification of non-human primate immature testicular tissue allows maintenance of proliferating spermatogonial cells after xenografting to recipient mice. Theriogenology 2012; 77: 1008-1013.

87. Yokonishi T, Sato T, Komeya M, Katagiri K, Kubota Y, Nakabayashi K, Hata K, Inoue K, Ogonuki N, Ogura A. Offspring production with sperm grown in vitro from cryopreserved testis tissues. Nat Commun 2014; 5: 4320.

88. GEORGE MORRIS CURTIS. THE MORPHOLOGY OF THE MAMMALIAN SEMINIFEROUS TUBULE. AUTHOR'S ABSTRACT OF THIS PAPER ISSUBD BY THE BIBLIOGRAPHIC SERVICE, JULY 19, 339-390.

参考文献をもっと見る

全国の大学の
卒論・修論・学位論文
を
一発検索！

この論文の関連論文を見る