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マウス胃オルガノイドを用いたWnt阻害因子Dickkopf 3のエピジェネティックな変化による転写因子T-box3を介した加齢に伴う胃発癌機序の解明

竹内 章夫 東北大学

2022.03.25

概要

【背景・目的】加齢はがんの危険因子である。加齢に伴う老化の原因として幹細胞老化という概念が提唱されており、病的な幹細胞老化の 1 つとして発がんが考えられている。近年、Wnt/β-catenin シグナルを人為的に調整し幹細胞由来の 3 次元培養を行うオルガノイド培養系が確立してきた。胃に関してもオルガノイドを用いた分化や発癌機序の研究が進む一方、加齢がどのように胃発癌に寄与するかに関しては未だ不明な点が多い。本研究は、加齢マウス由来のオルガノイドを樹立し、幹細胞の観点から加齢による胃発癌機序を解明することを目的とした。

【方法】若年および加齢マウス胃粘膜からオルガノイドを作成し形態を確認後、細胞増殖能と TCF レポーターアッセイで Wnt/β-catenin シグナル活性を測定した。次に加齢由来胃オルガノイドの遺伝子発現を、Microarray を用いて網羅的に解析し、 Quantitative reverse transcription polymerase chain reaction (q-PCR)法と免疫蛍光染色で確認した。細胞老化は Senescence-associated β-galactosidase 法で評価した。さらに Wnt/β-catenin シグナルを制御する遺伝子発現を確認後、Methylation-specific PCR 法で DNA メチル化状態を検討した。最後にヒト固有胃腺と粘膜内胃癌に対して免疫組織化学を行い、発現を検証した。

【結果】加齢由来胃オルガノイドは若年由来と比較し、大きなオルガノイドが形成され、細胞増殖能は 2.71 倍亢進し、Wnt/β-catenin シグナルも 2.89 倍と活性化していた。また、長期継代培養が可能であった。 次に Microarray 解析データを基に Gene Set Enrichment Analysis を行ったところ、“G2/M Checkpoint”関連遺伝子群との相関、および“Senescence”関連遺伝子群との逆相関を認めた。実際に細胞周期を調節する p19ARF、p53、p21WAF1 の発現低下と Cyclin B1 の発現亢進を認め、細胞老化は抑制さ れていた。そして、Wnt 標的遺伝子の中で転写因子 T-box3 (Tbx3)の発現誘導を認め た。Wnt/β-catenin シグナルのニッチ因子の中で、分泌型糖蛋白質 Dickkopf 3 (Dkk3) が加齢マウス胃粘膜で 1.73 倍と発現増加傾向を認めた一方、逆に加齢由来胃オルガ ノイドでは 0.0016 倍と著しく発現低下していた。Dkk3 リコンビナント蛋白添加によ って加齢由来胃オルガノイドの増殖は抑制された。マウス Dkk3 の intron1 領域には CpG island が存在し、加齢由来胃オルガノイドで若年由来より DNA メチル化状態に あった。ヒト胃粘膜における TBX3 の発現は、免疫組織化学的に非萎縮固有胃腺、 萎縮固有胃腺、分化型粘膜内癌の順に増加していた。

【結論】加齢マウス胃粘膜では DNA メチル化により Dkk3 発現が抑制されている幹細胞クローンが出現し、Wnt/β-catenin シグナルの活性化により Tbx3 発現が亢進することによって、G2/M 期が進行し、細胞老化が回避され、細胞増殖能が亢進することが明らかとなった。本機序が加齢に伴うヒト胃癌発症に関与する可能性が示唆された。

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参考文献

1. Magalhães JP de. How ageing processes influence cancer. Nat Rev Cancer 2013;13:357–365.

2. 全国がん登録 [Internet]. 東京: 国立がん研究センターがん情報サービス「がん統計」. c2021 [cited 2021 Sep 1]. https://ganjoho.jp/reg_stat/statistics/data/dl/index.html.

3. Correa P, Houghton J. Carcinogenesis of Helicobacter pylori. Gastroenterology 2007;133:659–672.

4. Radyk MD, Burclaff J, Willet SG, et al. Metaplastic Cells in the Stomach Arise, Independently of Stem Cells, via Dedifferentiation or Transdifferentiation of Chief Cells. Gastroenterology 2018;154:839-843.e2.

5. López-Otín C, Blasco MA, Partridge L, et al. The Hallmarks of Aging. Cell 2013;153:1194–1217.

6. Oh J, Lee YD, Wagers AJ. Stem cell aging: mechanisms, regulators and therapeutic opportunities. Nat Med 2014;20:870–880.

7. Kuribayashi W, Oshima M, Itokawa N, et al. Limited rejuvenation of aged hematopoietic stem cells in young bone marrow niche. J Exp Med 2021;218:e20192283.

8. Brack AS, Conboy MJ, Roy S, et al. Increased Wnt Signaling During Aging Alters Muscle Stem Cell Fate and Increases Fibrosis. Science 2007;317:807–810.

9. He D, Wu H, Xiang J, et al. Gut stem cell aging is driven by mTORC1 via a p38 MAPK-p53 pathway. Nat Commun 2020;11:37.

10. Cai Q, Shi P, Yuan Y, et al. Inflammation-Associated Senescence Promotes Helicobacter pylori–Induced Atrophic Gastritis. Cell Mol Gastroenterol Hepatol 2021;11:857–880.

11. Engevik AC, Feng R, Choi E, et al. The Development of Spasmolytic Polypeptide/TFF2-Expressing Metaplasia (SPEM) During Gastric Repair Is Absent in the Aged Stomach. Cell Mol Gastroenterol Hepatol 2016;2:605–624.

12. Blokzijl F, Ligt J de, Jager M, et al. Tissue-specific mutation accumulation in human adult stem cells during life. Nature 2016;538:260–264.

13. Gorgoulis V, Adams PD, Alimonti A, et al. Cellular Senescence: Defining a Path Forward. Cell 2019;179:813–827.

14. Muñoz-Espín D, Serrano M. Cellular senescence: from physiology to pathology. Nat Rev Mol Cell Biol 2014;15:482–496.

15. Krenning L, Feringa FM, Shaltiel IA, et al. Transient Activation of p53 in G2 Phase Is Sufficient to Induce Senescence. Mol Cell 2014;55:59–72.

16. Gire V, Dulić V. Senescence from G2 arrest, revisited. Cell Cycle 2015;14:297–304.

17. Nusse R, Clevers H. Wnt/β-Catenin Signaling, Disease, and Emerging Therapeutic Modalities. Cell 2017;169:985–999.

18. Aberle H, Bauer A, Stappert J, et al. β-catenin is a target for the ubiquitin–proteasome pathway. EMBO J 1997;16:3797–3804.

19. The Wnt Homepage [Internet]. Stanford: Nusse R. c1997-2021 [cited 2021 Sep 1]. http://web.stanford.edu/group/nusselab/cgi-bin/wnt/.

20. Fafilek B, Krausova M, Vojtechova M, et al. Troy, a Tumor Necrosis Factor Receptor Family Member, Interacts With Lgr5 to Inhibit Wnt Signaling in Intestinal Stem Cells. Gastroenterology 2013;144:381–391.

21. Gregorieff A, Pinto D, Begthel H, et al. Expression Pattern of Wnt Signaling Components in the Adult Intestine. Gastroenterology 2005;129:626–638.

22. Pentinmikko N, Iqbal S, Mana M, et al. Notum produced by Paneth cells attenuates regeneration of aged intestinal epithelium. Nature 2019;571:398–402.

23. Clevers H. Wnt/β-Catenin Signaling in Development and Disease. Cell 2006;127:469–480.

24. Lancaster MA, Knoblich JA. Organogenesis in a dish: Modeling development and disease using organoid technologies. Science 2014;345:1247125.

25. Sato T, Clevers H. Growing Self-Organizing Mini-Guts from a Single Intestinal Stem Cell: Mechanism and Applications. Science 2013;340:1190–1194.

26. Sato T, Es JH van, Snippert HJ, et al. Paneth cells constitute the niche for Lgr5 stem cells in intestinal crypts. Nature 2011;469:415–418.

27. Schlaermann P, Toelle B, Berger H, et al. A novel human gastric primary cell culture system for modelling Helicobacter pylori infection in vitro. Gut 2016;65:202–213.

28. Fujii M, Shimokawa M, Date S, et al. A Colorectal Tumor Organoid Library Demonstrates Progressive Loss of Niche Factor Requirements during Tumorigenesis. Cell Stem Cell 2016;18:827–838.

29. Schwank G, Koo B-K, Sasselli V, et al. Functional Repair of CFTR by CRISPR/Cas9 in Intestinal Stem Cell Organoids of Cystic Fibrosis Patients. Cell Stem Cell 2013;13:653– 658.

30. Yui S, Nakamura T, Sato T, et al. Functional engraftment of colon epithelium expanded in vitro from a single adult Lgr5+ stem cell. Nat Med 2012;18:618–623.

31. Nanki K, Toshimitsu K, Takano A, et al. Divergent Routes toward Wnt and R- spondin Niche Independency during Human Gastric Carcinogenesis. Cell 2018;174:856- 869.e17.

32. Pang M-J, Burclaff JR, Jin R, et al. Gastric Organoids: Progress and Remaining Challenges. Cell Mol Gastroenterol Hepatol 2021:Online ahead of print.

33. Nalapareddy K, Nattamai KJ, Kumar RS, et al. Canonical Wnt Signaling Ameliorates Aging of Intestinal Stem Cells. Cell Rep 2017;18:2608–2621.

34. Yamada S, Okamura T, Kobayashi S, et al. Reduced gland mucin-specific O-glycan in gastric atrophy: A possible risk factor for differentiated-type adenocarcinoma of the stomach: O -glycan in gastric atrophy. J Gastroenterol Hepatol 2015;30:1478–1484.

35. Miao Z-F, Liu X-Y, Xu H-M, et al. Tbx3 overexpression in human gastric cancer is correlated with advanced tumor stage and nodal status and promotes cancer cell growth and invasion. Virchows Arch 2016;469:505–513.

36. Fridman AL, Tainsky MA. Critical pathways in cellular senescence and immortalization revealed by gene expression profiling. Oncogene 2008;27:5975–5987.

37. Brummelkamp TR, Kortlever RM, Lingbeek M, et al. TBX-3, the Gene Mutated in Ulnar-Mammary Syndrome, Is a Negative Regulator of p19ARF and Inhibits Senescence. J Biol Chem 2002;277:6567–6572.

38. Fan W, Huang X, Chen C, et al. TBX3 and Its Isoform TBX3+2a Are Functionally Distinctive in Inhibition of Senescence and Are Overexpressed in a Subset of Breast Cancer Cell Lines. Cancer Res 2004;64:5132–5139.

39. Sato H, Suzuki H, Toyota M, et al. Frequent epigenetic inactivation of DICKKOPF family genes in human gastrointestinal tumors. Carcinogenesis 2007;28:2459–2466.

40. MethPrimer 2.0 [Internet]. Beijing: The Li Lab. c2016 [cited 2021 Sep 1]. http://www.urogene.org/methprimer2/.

41. Kuilman T, Michaloglou C, Mooi WJ, et al. The essence of senescence. Genes Dev 2010;24:2463–2479.

42. Johmura Y, Shimada M, Misaki T, et al. Necessary and Sufficient Role for a Mitosis Skip in Senescence Induction. Mol Cell 2014;55:73–84.

43. Wang Z, Li Y, Wu D, et al. Nuclear receptor HNF4α performs a tumor suppressor function in prostate cancer via its induction of p21-driven cellular senescence. Oncogene 2020;39:1572–1589.

44. Begnami MD, Fregnani JHTG, Nonogaki S, et al. Evaluation of cell cycle protein expression in gastric cancer: cyclin B1 expression and its prognostic implication. Hum Pathol 2010;41:1120–1127.

45. Agarwal R, Gonzalez-Angulo A-M, Myhre S, et al. Integrative Analysis of Cyclin Protein Levels Identifies Cyclin B1 as a Classifier and Predictor of Outcomes in Breast Cancer. Clin Cancer Res 2009;15:3654–3662.

46. Bamshad M, Lin RC, Law DJ, et al. Mutations in human TBX3 alter limb, apocrine and genital development in ulnar-mammary syndrome. Nat Genet 1997;16:311–315.

47. Khan SF, Damerell V, Omar R, et al. The roles and regulation of TBX3 in development and disease. Gene 2020;726:144223.

48. Renard C-A, Labalette C, Armengol C, et al. Tbx3 Is a Downstream Target of the Wnt/β-Catenin Pathway and a Critical Mediator of β-Catenin Survival Functions in Liver Cancer. Cancer Res 2007;67:901–910.

49. Krstic M, Kolendowski B, Cecchini MJ, et al. TBX3 promotes progression of pre- invasive breast cancer cells by inducing EMT and directly up-regulating SLUG. J Pathol 2019;248:191–203.

50. Sigal M, Logan CY, Kapalczynska M, et al. Stromal R-spondin orchestrates gastric epithelial stem cells and gland homeostasis. Nature 2017;548:451–455.

51. Yin J, Yang L, Xie Y, et al. Dkk3 dependent transcriptional regulation controls age related skeletal muscle atrophy. Nat Commun 2018;9:1752.

52. Lim X, Tan SH, Koh WLC, et al. Interfollicular Epidermal Stem Cells Self-Renew via Autocrine Wnt Signaling. Science 2013;342:1226–1230.

53. Yu J, Tao Q, Cheng YY, et al. Promoter methylation of the Wnt/β-catenin signaling antagonist Dkk-3 is associated with poor survival in gastric cancer. Cancer 2009;115:49–60.

54. Zhao S, Hao C, Zhao E, et al. The Suppressing Effects of Dkk3 Expression on Aggressiveness and Tumorigenesis of Colorectal Cancer. Front Oncol 2020;10:600322.

55. Jee BA, Choi J-H, Rhee H, et al. Dynamics of Genomic, Epigenomic, and Transcriptomic Aberrations during Stepwise Hepatocarcinogenesis. Cancer Res 2019;79:5500–5512.

56. Ermolaeva M, Neri F, Ori A, et al. Cellular and epigenetic drivers of stem cell ageing. Nat Rev Mol Cell Biol 2018;19:594–610.

57. Toh TB, Lim JJ, Chow EK-H. Epigenetics in cancer stem cells. Mol Cancer 2017;16:29.

58. Kang GH, Lee HJ, Hwang KS, et al. Aberrant CpG Island Hypermethylation of Chronic Gastritis, in Relation to Aging, Gender, Intestinal Metaplasia, and Chronic Inflammation. Am J Pathol 2003;163:1551–1556.

59. Belshaw NJ, Pal N, Tapp HS, et al. Patterns of DNA methylation in individual colonic crypts reveal aging and cancer-related field defects in the morphologically normal mucosa. Carcinogenesis 2010;31:1158–1163.

60. Lewis SK, Nachun D, Martin MG, et al. DNA Methylation Analysis Validates Organoids as a Viable Model for Studying Human Intestinal Aging. Cell Mol Gastroenterol Hepatol 2020;9:527–541.

61. Kakiuchi N, Ogawa S. Clonal expansion in non-cancer tissues. Nat Rev Cancer 2021;21:239–256.

62. Bartfeld S, Bayram T, Wetering M van de, et al. In Vitro Expansion of Human Gastric Epithelial Stem Cells and Their Responses to Bacterial Infection. Gastroenterology 2015;148:126-136.e6.

63. Kim J, Koo B-K, Knoblich JA. Human organoids: model systems for human biology and medicine. Nat Rev Mol Cell Biol 2020;21:571–584.

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