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Hydrogen Sulfide Attenuates Lymphedema Via the Induction of Lymphangiogenesis Through a PI3K/Akt-Dependent Mechanism

鈴木, 淳也 名古屋大学

2023.07.05

概要

主論文の要旨

Hydrogen Sulfide Attenuates Lymphedema Via
the Induction of Lymphangiogenesis Through a
PI3K/Akt-Dependent Mechanism
硫化水素はPI3K/Aktシグナル依存的にリンパ管新生を促進し、
リンパ浮腫を軽減する

名古屋大学大学院医学系研究科
病態内科学講座

総合医学専攻

循環器内科分野

(指導:室原 豊明
鈴木 淳也

教授)

【緒言】
二次性リンパ浮腫はがん治療におけるリンパ節郭清、放射線療法などによりリンパ
管システムの機能不全が引き起こされ、四肢の浮腫を来す疾患である。容姿の問題だ
けでなく、繰り返す疼痛や感染などにより著しい QOL の低下を来す疾患である。今後
がん治療の進歩によりがんサバイバーが増えるとともに二次性リンパ浮腫患者も増加
する事が予想される。しかしリンパ浮腫に対する根治的な治療で推奨度の高いものは
限定的で、弾性ストッキングの着用や運動、スキンケアなど理学的な治療が中心とな
っており、新たな治療の確立が期待されている。
そこで私達が注目したのが硫化水素(H 2 S)である。硫化水素は生体内に微量に存在
するガス分子で、一酸化窒素や一酸化炭素と同様にガス情報伝達物質として作用する
事が知られている。硫化水素は生体内において恒常性の維持に重要な役割を担ってお
り、抗酸化作用、免疫や代謝の調整、血管新生や血管拡張など幅広い作用を持つ。私
達の研究グループでは以前に下肢虚血モデルにおいて硫化水素のドナーである diallyl
trisulfide(DATS)を投与する事で血管新生を促進し、下肢虚血が改善される事を報告し
ている。しかしリンパ管新生における硫化水素の作用は未解明であり、本研究ではリ
ンパ管新生における硫化水素の生理活性作用の解明と、リンパ浮腫に対するリンパ管
新生療法への治療応用を目的として研究を行った。
【方法と結果】
硫化水素は生体内においていくつかの酵素により生成される事が判明しているが、
まず私たちは主に心血管系において硫化水素を生成する Cystathionine γ-lyase(CSE)に
注目し研究を行った。まず CSE の全身性遺伝子欠損(グローバル knockout: KO)マウス
においてリンパ浮腫モデルを作製し評価を行った。リンパ浮腫モデルでは、尻尾の表
層をほぼ全周性に電気メスで焼灼し、皮下組織のリンパ管ネットワークを途絶させ人
工的にリンパ浮腫を作製した。1 か月間観察を行い、尻尾の径などを測定した。まず
術後 7 日目の尻尾組織における硫化水素濃度を測定すると、CSE-KO マウスでは野生
型のマウスに比べ硫化水素濃度が低い事がわかった(Fig.1A)。そして CSE-KO マウス
のリンパ浮腫モデルでは、野生型マウスと比べ、術後 21 日目以降においてより強いリ
ンパ浮腫が認められた(Fig.1B, 1C)。また術後 28 日におけるリンパ浮腫組織の免疫染
色による観察により、CSE-KO マウスの手術部位では LYVE-1/Podoplanin により二重
染色されるリンパ管内皮細胞が少なくリンパ管新生が抑制されている事が示さ れた
(Fig.1D, 1E)。また遠位部においてより強い炎症細胞集積を認めた(Fig.1F, 1G)。また
尻尾組織における Akt リン酸化を調べると、野生型マウスではリンパ浮腫を作製する
ことでリン酸化が促進されているが、CSE-KO マウスではその促進が抑えられている
事が示された(Fig1H, 1I)。
次に野生型のリンパ浮腫モデルマウスに対して、硫化水素のドナーである DATS を
投与し検討を行った。リンパ浮腫作成後、DATS を連続 10 日間腹腔内投与した所、術
後 7 日目において血中およびリンパ浮腫組織中の硫化水素濃度は DATS 投与群にて上

-1-

昇する事が示された(Fig.2A, 2B)。また術後 21 日目以降、DATS 投与群においてリン
パ浮腫が軽減することが示された(Fig.2C, 2D)。術後 28 日目におけるリンパ浮腫組織
の免疫染色による観察により、DATS 投与群ではより多くのリンパ管内皮細胞が観察
され、リンパ管新生が促進されている事が示された(Fig.2E, 2F)。また DATS 投与群に
おいて手術部位末梢のリンパ管内腔が小さく(Fig.2G, 2H)、炎症細胞集積も抑えられ
ている事が示された(Fig.2I, 2J)。また尻尾組織における Akt のリン酸化を調べると、
DATS 投与群においてよりリン酸化が促進されている事が示された(Fig.2K. 2L)。
続いてヒトリンパ管内皮細胞(lymphatic endothelial cell: LECs)において DATS の効
果を検討した。まず LECs に DATS を添加する事で細胞内の硫化水素濃度が上昇する
事を確認した(Fig.3A)。また増殖能(Fig.3B)や管腔形成能(Fig.3C, 3D)が DATS により
促進される事が示された。さらに、Akt のリン酸化および PROX1 の発現も DATS 投与
群において濃度依存的に促進される事が示された(Fig.3E, 3F, 3G)。
続いて PI3K/Akt 阻害薬である Wortmannin を用いた実験を行った。LECs に対して
DATS とともに Wortmannin を同時に添加したところ、DATS 単剤投与により促進され
る Akt のリン酸化は、Wortmannin を同時添加した群では促進が見られなかった(Fig.4A,
4B)。同様に増殖能、遊走能についても評価したところ、DATS 単剤の添加では促進さ
れるが、Wortmannin を同時添加したところ促進効果の一部がキャンセルされる結果が
示された(Fig.4C, 4D, 4E)。
最後に野生型マウスのリンパ浮腫モデルに対して、リンパ浮腫作成後連続 10 日間、
DATS とともに Wortmannin を腹腔内投与し検討を行った。先に示したように DATS 単
剤を投与した群では control 群と比べリンパ浮腫の改善が見られたが、Wortmannin を
同時投与した群では改善が見られなくなった(Fig.5A, 5B)。また術後 28 日におけるリ
ンパ浮腫組織の免疫染色による観察により、DATS 単剤投与群ではリンパ管内皮細胞
が多く認められリンパ管新生が促進されたことが示されたが、Wortmannin を同時投与
した群ではその促進効果の一部がキャンセルされる結果が示された(Fig.5C, 5D)。炎
症細胞の集積についても DATS 単剤投与により抑制されたが、Wortmannin を同時投与
した群ではその改善作用の一部がキャンセルされる結果が示された(Fig.5E, 5F)。尻尾
組織における Akt のリン酸化についても評価を行うと、DATS 単剤投与群では Akt の
リン酸化が促進されているが、Wortmannin を同時投与した群ではその促進作用が一部
キャンセルされる結果が示された(Fig.5G, 5H)。この結果から DATS による治療的な
リンパ管新生促進効果は、少なくとも部分的に Akt シグナルに依存した作用であるこ
とが示唆された。
【考察】
本研究において、(1)CSE-KO マウスのリンパ浮腫モデルにおいて、組織中の硫化水
素濃度が減少し、リンパ管新生が抑制され、リンパ浮腫が増悪する事、(2)野生型マウ
スのリンパ浮腫モデルに対して DATS を投与すると血中及びリンパ浮腫組織中の硫化
水素濃度が上昇し、リンパ管新生を促進しリンパ浮腫が改善する事、(3)DATS により

-2-

LECs の増殖能、遊走能、管腔形成能が促進される事、(4)PI3K/Akt シグナルの阻害に
より DATS によるリンパ管新生促進作用の一部がキャンセルされる事が示された。
硫化水素はこれまで心筋虚血再灌流モデルや下肢虚血モデルにおいて血管新生を促
進する事が報告されている。しかしリンパ浮腫に対する硫化水素の効果についてはほ
とんど報告がなく、本研究は in vivo および in vitro においてリンパ管新生を促進する
事を報告した最初の研究である。
DATS はニンニク油に含まれる物質で、生理的条件下にて硫化水素を遊離する。本
研究では DATS の持続的な投与により血中および局所組織中の硫化水素濃度が上昇し、
修復性リンパ管新生を促進させ、リンパ液の貯留と局所の炎症反応を軽減し、リンパ
浮腫を改善する事が示された。
【結論】
硫化水素は、少なくとも部分的に PI3K/Akt シグナル依存的に修復的リンパ管新生を
促進し、二次性リンパ浮腫を軽減する。さらに DATS のような硫化水素のドナーを用
いた治療的リンパ管新生療法が、二次性リンパ浮腫の治療戦略となり得ることが示唆
された。

-3-

Figure1. CSE の欠失はリンパ管新生を抑制し、リンパ浮腫を増悪させる。
A 野生型マウスと CSE-KO マウスの尻尾組織における硫化水素濃度. **P<0.01 vs WT by unpaired
Student t-test. B リンパ浮腫モデルの尾部写真. C リンパ浮腫作成後の尻尾径の経時的変化.
*P<0.05 vs the respective WT-Lymph by 2-way ANOVA and Sidak’s post hoc tests. D リンパ浮腫モデ
ルの尾組織の免疫染色写真. LYVE-1(green)/Podoplanin(red). 白矢頭:LYVE-1/Podoplanin 二重染色
細胞. E 新生リンパ管密度(LYVE-1/Podoplanin 二重染色細胞)の定量評価. Bars: 100 μm. Data are
mean±SEM. *P<0.05 vs WT-Lymph by 1-way ANOVA and Tukey post hoc tests. F リンパ浮腫モデル
の尾組織の免疫染色写真. F4/80(red) G F4/80 陽性細胞密度の定量評価. Bars: 100 μm. Data are
mean±SEM. ****P<0.0001 vs WT-Sham and ###P=0.0005 vs WT-Lymph by 1-way ANOVA and Tukey
post hoc tests. H phospho-Akt(p-Akt), total Akt(t-Akt)のウエスタンブロッティング写真. I 定量的評
価(p-Akt/t-Akt). Data are mean±SEM (n=7 each). ****P<0.0001 vs WT-Sham and ##P<0.001 vs CSEKO-Lymph by 1-way ANOVA and Tukey post hoc tests.

-4-

Figure2. DATS 投与はリンパ浮腫組織においてリンパ管新生を促進する。
A, B 血中(A)およびリンパ浮腫組織中(B)の硫化水素濃度. Data are mean±SEM (n=7 each). *P<0.05
and ***P<0.001 vs control by 2-tailed Mann-Whitney U test. C リンパ浮腫モデルの尾部写真. D リン
パ浮腫作成後の尻尾径の経時的変化. Data are mean±SEM (n=10 for Sham-[Vehicle] Control; n=10 for
Sham-DATS; n=11 for Lymph-[Vehicle] Control; n=10 for Lymph-DATS). *P<0.05 and **P<0.01 vs the
respective WT by 2-way ANOVA and Sidak post hoc tests. E リンパ浮腫モデルの尾組織の免疫染色
写真. LYVE-1(green)/Podoplanin (red). F 新生リンパ管密度(LYVE-1/Podoplanin 二重染色細胞)の定
量評価. Bars: 100 μm. *P<0.05 vs Lymph-Control by 1-way ANOVA and Tukey post hoc tests. G リン
パ浮腫モデルの尾組織の免疫染色写真. LYVE-1(green)/Podoplanin (red). H リンパ管内腔の評価.
Bars: 100 μm. ***P<0.001 vs control by 2-tailed Mann-Whitney U test. I リンパ浮腫モデルの尾組織
の免疫染色写真. F4/80(red). J F4/80 陽性細胞密度の定量評価. ***P<0.001 vs Lymph-Control by 1way ANOVA and Tukey post hoc tests. K p-Akt, t-Akt のウエスタンブロッティング写真. L 定量的評
価(p-Akt/t-Akt). Data are mean±SEM (n=5 each). **P<0.01 vs Sham-Control and ##P<0.01 vs LymphDATS by 1-way ANOVA and Tukey post hoc tests.

-5-

Figure3. DATS はリンパ管内皮細胞の増殖能、管腔形成能、Akt のリン酸化を促進する。
A リンパ管内皮細胞(LECs)の硫化水素濃度. Data are mean±SEM (n=6 each). *P<0.05 vs control by
Student t test. B LECs の WST-1 proliferation assay 結果. ****P<0.0001 vs 0 μmol/L, ####P<0.0001 vs
10 μmol/L by 1-way ANOVA and Tukey post hoc tests. C LECs の管腔形成写真. D 管腔形成能の定量
評価. Data are mean±SEM (n=10 each). ***P<0.001 vs control by Student t test. E p-Akt, t-Akt, PROX1
のウエスタンブロッティング写真. F 定量評価(p-Akt/t-Akt). Data are mean±SEM (n=7 each).
**P<0.01 vs 0 μmol/L and #P<0.05 vs 10 μmol/L by 1-way ANOVA and Tukey post hoc tests. G 定量評
価(PROX1/GAPDH). Data are mean±SEM (n=5 each). **P<0.01 vs 0 μmol/L and ##P<0.01 vs 10 μmol/L
by 1-way ANOVA and Tukey post hoc tests.

-6-

Figure4. PI3K/Akt シグナルが in vitro での DATS によるリンパ管形成に関わっている。
A p-Akt, t-Akt のウエスタンブロッティング写真. B 定量評価(p-Akt/t-Akt). Data are mean±SEM
(n=5 for each). *P<0.05 vs control and #P<0.05 vs DATS by 1-way ANOVA and Tukey post hoc tests.
C 遊走細胞の DAPI による免疫染色写真. Bars: 100 μm. D 遊走細胞の定量評価. Data are
mean±SEM (n=6 for each). ***P<0.001 and ****P<0.0001 vs control and #P<0.05 vs DATS by 1-way
ANOVA and Tukey post hoc tests. E LECs の WST-1 proliferation assay 結果. ****P<0.0001 vs control
and ##P<0.01 vs DATS by 1-way ANOVA and Tukey post hoc tests.

-7-

Figure5. PI3K/Akt シグナルの阻害は in vivo において DATS によるリンパ管新生促進作用を阻害
する。
A リンパ浮腫モデルの尾部写真. B リンパ浮腫作成後の尻尾径の経時的変化. Data are mean±SEM
(n=9 for Lymph-Control, Lymph-Wortmannin, Lymph-DATS, and Lymph-DATS+Wortmannin; n=5 for
Sham-[Vehicle] Control, Sham-Wortmannin, and Sham-DATS+Wortmannin). *P<0.05 and **P<0.01 vs
respective Lymph-(Vehicle) Control; #P<0.05 and ##P<0.01 vs respective Lymph-DATS by 2-way ANOVA
and Sidak post hoc tests. C リンパ浮腫モデルの尾組織の免疫染色写真. LYVE-1(green)/Podoplanin
(red). D 新生リンパ管密度(LYVE-1/Podoplanin 二重染色細胞)の定量評価. Bars: 100 μm. Data are
mean±SEM (n=11 for each). **P<0.01 vs control and #P<0.05 vs DATS samples by 1-way ANOVA and
Tukey post hoc tests. E リンパ浮腫モデルの尾組織の免疫染色写真. F4/80(red). F F4/80 陽性細胞密
度の定量評価. Bars: 100 μm. ***P<0.001 vs control and #P<0.05 vs DATS by 1-way ANOVA and Tukey
post hoc tests. G p-Akt, t-Akt のウエスタンブロッティング写真. H 定量的評価(p-Akt/t-Akt). Data
are mean±SEM (n=4 each). ****P<0.0001 vs Sham-Control, ####P<0.0001 vs Lymph-Control, and
††††P<0.0001 vs Lymph-DATS by 1-way ANOVA and Tukey post hoc tests.

-8-

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参考文献

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Supplemental Material

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(mm)

6.0

DATS

CSE-KO

Tail diameter

Control

5.5

5.0

4.5

4.0

CSE-KO

3.5

CSE-KO+DATS

3.0

14

21

28

(day)

Figure S1. DATS treatment ameliorates lymphedema in murine tail lymphedema of

CSE-KO mice.

(A) Representative pictures of tail lymphedema in CSE-KO mice

administered with or without DATS. (B) Changes in the tail diameters after the surgery.

Data are mean ± SEM (n = 8 for each). *P<0.05 vs the respective CSE-KO-Control by 2way ANOVA and Sidak’s post hoc tests.

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####

****

N.S.

DATS

1.0

10

100μM

p-Erk

t-Erk

0.5

p-Erk/t-Erk

mRNA VEGFR3

normalized by GAPDH

0.0

10 100μM

DATS

10 100μM

DATS

Figure S2. The reaction of VEGFR3 expression or Erk phosphorylation in LECs after

DATS treatment. (A) The expression of mRNA VEGFR3 in LECs after DATS treatment.

Data are mean ± SEM (n = 5 each). (B) Representative immunoblots of phospho-Erk and

total Erk after DATS treatment. (C) Quantitative analysis of Erk phosphorylation. Data are

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mean ± SEM (n = 4 each). ****P<0.0001 vs 0 µM and

ANOVA and Tukey's post hoc tests.

####P<0.0001

vs 10 µM by 1-way

****

DATS

1.0

0.5

0.0

Cont DATS DATS

+LY294002

DATS

+LY294002

Absorbance

1.5

##

DAPI

***

###

100

Migrating cells

****

Control

80

60

40

20

Cont DATS DATS

+LY294002

Figure S3. Inhibition of PI3K/Akt pathway with LY294002 partially impedes DATS-induced

lymphangiogenesis in vitro (A) WST-1 proliferation assay of LECs in response to treatments

with DATS or DATS + LY294002 (n = 6 for each). ****P<0.0001 vs control and

##P<0.01

vs

DATS by 1-way ANOVA and Tukey's post hoc tests. (B) Representative images of DAPIstained migrating cells. (C) Quantitative analysis of migrating cells. Data are mean ± SEM (n =

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7 for each). ***P<0.001 vs control and ###P<0.001 vs DATS by 1-way ANOVA and Tukey's post

hoc tests.

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