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生産現場における牛の腸管寄生原虫の分子疫学調査および防除法に関する研究

清水 優 大阪府立大学 DOI:info:doi/10.24729/00017712

2022.07.05

概要

子牛の下痢症は、日本を含め世界中の畜産現場で高頻度に発生する重要な疾病である(Cho et al., 2013)。下痢症を患った子牛は増体が著しく減退し、農家の生産性が低下する。また、下痢症の治療や育成期間が延長される等、これら経費の増加も相まって多大な経済的損失を引き起こす(ChoandYoon,2014)。特に14日齢以下の子牛では、下痢症の罹患により90日齢までの死亡率が高くなるために損失はさらに増大する(Frank and Kaneene, 1993)。日本では、2018年全国家畜共済統計によると子牛の死亡事例で下痢症が原因であると考えられる割合は、肉用子牛で31.0%、乳用子牛で40.1%であり、その損害額は年間10億2千9百万円と試算されている(農林水産省経営局保険課保険数理室,2018)。下痢症は、消化不良等を原因とする非感染性のものと病原微生物の感染による感染性のものに分けられる。病原微生物としては、ウイルス、細菌、および寄生虫等があげられる(Izzo et al., 2011)。しかし、下痢症では、複数の病原微生物による感染が関与している場合やさらに非感染性の要因も排除できないことも多く、直接的な原因の特定が困難な事例が多い(Izzo et al., 2011; Cho and Yoon, 2014)。そのため、上記の統計報告においても下痢症の正確な原因の記載がないと推察される。また、子牛の下痢症の治療において、多くの場合で抗生剤が使用されることから耐性菌が出現する等も考えられ(Smith,2015)、さらにこれら病原微生物には人獣共通に感染するものも存在する。したがって、生産性の向上のみならず、公衆衛生学的にも下痢症の原因を精査し、特に病原微生物の関与が疑われる場合には分子疫学を含む詳細な解析が必要となる。

感染性下痢症と関連する病原体のなかでウシの腸管に感染する寄生虫は、線虫、吸虫、条虫および原虫が知られている。線虫では、細頸毛様線虫、乳頭糞線虫および牛鞭虫等、数多く存在し、特に乳頭糞線虫は子牛の突然死を引き起こすことで問題となっていた(Taira and Ura, 1991)。しかし、現在は治療薬としてイベルメクチン製剤が普及し、乳頭糞線虫を含め線虫の駆虫は容易である(Charlieretal.,2009)。ウシに寄生する吸虫や条虫は、それぞれ肝蛭やベネデン条虫等が知られているが、現在は放牧の減少等により感染は激減している。また、条虫はプラジカンテルの単回投与で完全に駆虫が可能である(堀井,2016)。一方、原虫は生産現場において、診断、治療および防除対策が極めて難しい。これに該当するウシに寄生する原虫としては、Cryptosporidium spp.、 GiardiaintestinalisおよびEntamoeba spp.があげられる。Cryptosporidium spp.は近年、簡易診断キットが開発されたものの、その予防法や治療法は未だ確立しておらず、子牛に感染した場合に発症率や死亡率が高い。また、G.intestinalisは日本国内での分布状況は分かっておらず、Entamoeba spp.については世界的な感染状況および病原性も明らかにされていない。上述した線虫等の寄生虫に比べ、これら原虫については解決すべき課題が未だ多く残されている。

Cryptosporidium spp.は、水様下痢を主徴とするクリプトスポリジウム症を引き起こす。極めて多くの種が存在するが、特にC. parvumは高病原性であり、幼弱子牛での感染率は高いとされる。さらに本種はヒト、およびウシ以外の動物にも感染することから、家畜衛生のみならず公衆衛生の面からも重要とされている(Ryanetal., 2014)。下痢症を呈する子牛においてCryptosporidium spp.の感染率は世界各地で高く、例えば、北海道では75.0%(Karanisetal.,2010)、ドイツで41.3%(Gillhuber et al., 2014)等の報告がある。Cryptosporidium spp.の感染はオーシストの糞口経路により成立する。摂取されたオーシストから脱殻したスポロゾイトは宿主の腸管上皮細胞に侵入し、上皮細胞の微絨毛で無性生殖につづき有性生殖によりオーシストを形成する。このオーシストは直径が約5μmと原虫の中でも極めて小さいため、日常的に実施される糞便検査で検出することは容易ではなく、正しい検査方法を実施し、顕微鏡下で観察されるオーシストの形態を熟知していない場合には陰性と誤診される。Cryptosporidium spp.の種はこれまで、検出される宿主別、オーシストの大きさから分類されてきた。しかし、近年は18 Sribosomal RNA(18SrRNA)をコードする遺伝子等の部分塩基配列の比較により分類が可能となっている(Ichikawa-Seki et al., 2015)。正確にオーシストを検出し、遺伝子解析により種および遺伝子型を同定することは、病原性や人獣共通の感染性を考察するためには重要である。しかし、臨床現場において、Cryptosporidium spp.による感染が疑われる症例に対してこれらの精度の高い検査および遺伝子解析を実施することは難しく、そのため同一の畜産現場においてさえ、本原虫の病態発現状況および長期的な疫学情報が不足している。

Cryptosporidium spp.のオーシストは、感染個体の糞便中に含まれて外界に多量に排出される。このオーシストは農場で一般的に使用されている消毒薬に対して極めて強い耐性を有し、また環境中で長期間生存できるため、一旦、飼育環境がオーシストに汚染された場合、清浄化することは非常に難しい(Chauret et al., 2001)。現在のところクリプトスポリジウム症に対する有効な治療法は存在しないため、子牛の飼養施設から感染源となるオーシストを排除し、新たな感染個体を生じさせないことが唯一の対策となるが、畜産現場で実施可能な効果的かつ簡便な防除方法は確立されていない。

G.intestinalisはヒトを含む多くの哺乳類に寄生し、下痢症を引き起こす。子牛においても下痢症との関連が示唆されているが(Barigye et al., 2008)、これを証明する十分な疫学情報や結果は得られていない。この原虫は、鞭毛を有し宿主の腸管内に寄生する栄養体と糞便中に排泄されるシストの2相性の生活環を有する。これまで、G.intestinalisは栄養体の形態や検出された宿主により分類されてきた。しかし、栄養体は外界では短時間で死滅するために通常の検査法による検出は難しい。シストは外界において長期間生存可能であるために感染源となるが、大きさは約10μmと小さく、検出にはコーン染色等の特殊な染色を実施することが推奨されている(Carranza et al., 2010)。近年では、PCRによる検出も実施され、そしてG.intestinalisはGiardiaβ-giardin遺伝子領域の塩基配列の比較により、assemblagesAからHの8遺伝子型に分類されている(Ballweber et al., 2010; Heyworth, 2016)。しかし、日本のウシにおいて分子生物学的な手法によりG. intestinalisが同定された報告はわずか2件のみであり(Itagakietal.,2005;Matsubayashietal.,2005)、Cryptosporidium spp.との混合感染の報告はない。国内におけるG.intestinalisの分布および病態発現状況等の実態を解明するためには、分子生物学的手法を用いた疫学的な調査を実施する必要がある.

Entamoeba spp.は無脊椎動物や脊椎動物から極めて多くの種が報告されてい(Stensvold et al., 2011)。多くの種において、G.intestinalisと同様に栄養体とシストの形態をとる。強い病原性を示すのは、ヒトを含む多くの哺乳類に感染し血便症状を引き起こすE.histolytica (Kantor et al., 2018)と爬虫類に感染し重篤な潰瘍性大腸炎を引き起こすE.invadens (Kojimoto et al., 2001)の2種のみとされている。これ以外のEntamoebaspp.では病原性はないか、または未解明である。しかし、ブタに寄生するE. suisおよびE. poleckiはこれまで非病原性であると報告されていたが、近年、E. suisは出血性腸炎や下痢、E. poleckiはLawsoniaintracellularisとの混合感染により難治性の回腸炎を惹起する可能性が報告されている(Matsubayashietal.,2014,2015a)。これらはいずれも、細菌学的、ウイルス学的検査に加えて病理学的な解析等が実施され、原虫の正確な種および遺伝子型が決定されたうえで病原性が考察されている。一方でウシに寄生するEntamoeba spp.はE. bovisと2つの遺伝子亜型が知られているが、病原性に関する記述はこれまでになく、偶発的に検出されたシストを用いて分子生物学的に種および遺伝子型が同定されているのみであり(Stensvold et al., 2011; Nolan et al., 2017)、世界的な感染率および分布状況等の情報は限られている。上述したE.suisやE.poleckiのように、他の病原体との混合感染を含めウシに臨床症状を引き起こすEntamoeba spp.が飼育現場において潜在的に存在する可能性を評価するには、分子生物学的な手法により種および遺伝子型を決定したうえで臨床症状および感染動態を評価する必要がある。

近年、ウシの飼養施設は大型化する傾向にあり、子牛に関しては専用の施設が設置され、栄養面や衛生面において厳重に管理、飼養されている。しかし、飼養衛生管理システム等の改善にも関わらず、子牛の下痢症は未だ農場において、解決すべき大きな課題となっている(Choetal.,2014)。特に上述した原虫では、生産現場における感染動態、病態発現状況、長期的な分子疫学解析および防除対策の報告も限られる。これらの原虫の下痢症への関与や原因の究明、感染予防および対策には、原虫の正確な検出および遺伝子型を含めた種の同定が必要不可欠である。そこで本研究では、これらの課題を解決すべく、生産現場において検出が難しく、かつ国内においてその分子疫学等の情報が不足している3種の腸管寄生原虫、Cryptosporidium spp.、G. intestinalisおよびEntamoeba spp.について、感染状況および飼育環境中の原虫の有無について遺伝子解析による疫学調査を実施し、さらに原虫の特性を考慮した防除対策を行いその有効性を評価した。

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Abdel-Moein K.A., Saeed H. 2016. The zoonotic potential of Giardia intestinalis assemblage E in rural settings. Parasitol Res. 115: 3197-3202.

Abe N., Kimata I., Iseki M. 2002. Identification of genotypes of Cryptosporidium parvum isolates from a patient and a dog in Japan. J Vet Med Sci. 64: 165-168.

Appelbee A.J., Frederick L.M., Heitman T.L., Olson M.E. 2003. Prevalence and genotyping of Giardia duodenalis from beef calves in Alberta, Canada. Vet Parasitol. 112: 289-294.

Bajer A. 2008. Cryptosporidium and Giardia spp. infections in humans, animals and the environment in Poland. Parasitol Res. 104: 1-17.

Ballweber L.R., Xiao L., Bowman D.D., Kahn G., Cama V.A. 2010. Giardiasis in dogs and cats: update on epidemiology and public health significance. Trends Parasitol. 26: 180-189.

Barigye R., Dyer N.W., Newell T.K., Khaitsa M.L., Trout J.M., Santin M., Fayer R. 2008. Molecular and immunohistochemical detection of assemblage E, Giardia duodenalis in scouring North Dakota calves. Vet Parasitol. 157: 196-202.

Bruckner DA. 1992. Amebiasis. Clin Microbiol Rev. 5: 356-69.

Cacciò S.M., De Giacomo M., Pozio E. 2002. Sequence analysis of the beta-giardin gene and development of a polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism assay to genotype Giardia duodenalis cysts from human faecal samples. Int J Parasitol. 32: 1023-1030

Carranza P.G., Lujan H.D. 2010. New insights regarding the biology of Giardia lamblia. Microbes Infect. 12: 71-80.

Carrero J.C., Reyes-López M., Serrano-Luna J., Shibayama M., Unzueta J., LeónSicairos N., de la Garza M. 2020. Intestinal amoebiasis: 160 years of its first detection and still remains as a health problem in developing countries. Int J Med Microbiol. 310: 151358

Charlier J., Höglund J., von Samson-Himmelstjerna G., Dorny P., Vercruysse J. 2009. Gastrointestinal nematode infections in adult dairy cattle: Impact on production, diagnosis and control. Vet Parasitol. 164: 70-79.

Chauret C.P., Radziminski C.Z., Lepuil M., Creason R., Andrews R.C. 2001. Chlorine dioxide inactivation of Cryptosporidium parvum oocysts and bacterial spore indicators. Appl environ microbiol. 67: 2993-3001.

Cho Y.I., Han J.I., Wang C., Cooper V., Schwartz K., Engelken T., Yoon K.J. 2013. Case–control study of microbiological etiology associated with calf diarrhea. Vet Microbiol. 166: 375-385.

Cho Y.I., Yoon K.J. 2014. An overview of calf diarrhea - infectious etiology, diagnosis, and intervention. J Vet Sci. 15: 1-17.

De Cesaro M.P., Pierezan F., Heins B.D., Brown C.C. 2014. Pathology in practice. Bovine cryptosporidiosis. J Am Vet Med Assoc. 244: 53-55.

DNA Data Bank of Japan (DDBJ) http://clustalw.ddbj.njg.ac. jp/top-j.html.

FASTA プログラム http://www.ddbj.nig.ac.jp/search/fasta-j.html.

Frank N.A., Kaneene J.B. 1993. Management risk factors associated with calf diarrhea in michigan dairy herds. J Dairy Sci. 76: 1313-1323.

Fujino T., Matsui T., Kobayashi F., Haruki K., Yoshino Y., Kajima J., Tsuji M. 2002. The effect of heating against Cryptosporidium oocysts. J Vet Med Sci. 64. 199-200.

Fukuda M., Kuga K., Miyazaki A., Suzuki T., Tasei K., Aita T., Mase M., Sugiyama M., Tsunemitsu H. 2012. Development and application of one-step multiplex reverse transcription PCR for simultaneous detection of five diarrheal viruses in adult cattle. Arch. Virol. 157: 1063-1069.

Gillhuber J., Rügamer D., Pfister K., Scheuerle M.C. 2014. Giardiosis and other enteropathogenic infections: a study on diarrhoeic calves in Southern Germany. BMC Res Notes. 7: 112.

Graczyk T.K., Kacprzak M., Neczaj E., Tamang L., Graczyk H., Lucy F.E., Girouard A.S. 2008. Occurrence of Cryptosporidium and Giardia in sewage sludge and solid waste landfill leachate and quantitative comparative analysis of sanitization treatments on pathogen inactivation. Environ Res. 106: 27-33.

Heyworth M.F. 2016. Giardia duodenalis genetic assemblages and hosts. Parasite. 23: 13.

堀井洋一郎. 2016. 牛の消化管寄生虫病の現状と課題. 家畜感染症学会誌. 5: 1-8.

Ichikawa-Seki M., Aita J., Masatani T., Suzuki M., Nitta Y., Tamayose G., Iso T., Suganuma K., Fujiwara T., Matsuyama K., Niikura T., Yokoyama N., Suzuki H., Yamakawa K., Inokuma H., Itagaki T., Zakimi S., Nishikawa Y. 2015. Molecular characterization of Cryptosporidium parvum from two different Japanese prefectures, Okinawa and Hokkaido. Parasitol Int. 64: 161-166.

Ismail H.A., Jeon H.K., YM Y., Do C., Lee Y.H. 2010. Intestinal parasite infections in pigs and beef cattle in rural areas of Chungcheongnamdo, Korea. Korean J Parasitol. 48: 347-349.

Itagaki T., Kinoshita S., Aoki M., Itoh N., Saeki H., Sato N., Uetsuki J., Izumiyama S., Yagita K., Endo T. 2005. Genotyping of Giardia intestinalis from domestic and wild animals in Japan using glutamete dehydrogenase gene sequencing. Vet Parasitol. 133: 283-287.

Izzo M.M., Kirkland P.D., Mohler V.L., Perkins N.R., Gunn A.A., House J.K. 2011. Prevalence of major enteric pathogens in Australian dairy calves with diarrhea. Aust Vet J. 89: 167-173.

Jiménez A.E., Montenegro V.M., Hernández J., Dolz G., Maranda L., Galindo J., Epe C., Schnieder T. 2007. Dynamics of infections with gastrointestinal parasites and Dictyocaulus viviparus in dairy and beef cattle from Costa Rica. Vet Parasitol. 148: 262-271.

Kantor M., Abrantes A., Estevez A., Schiller A., Torrent J., Gascon J., Hernandez R., Ochner C. 2018. Entamoeba Histolytica: Updates in Clinical Manifestation, Pathogenesis, and Vaccine Development. Can J Gastroenterol Hepatol. 2018: 4601420

Karanis P., Eiji T., Palomino L., Boonrod K., Plutzer J., Ongerth J., Igarashi I. 2010. First description of Cryptosporidium bovis in Japan and diagnosis and genotyping of Cryptosporidium spp. in diarrheic pre-weaned calves in Hokkaido. Vet Parasitol. 169: 387-390.

Kojimoto A, Uchida K, Horii Y, Okumura S, Yamaguch R, Tateyama S. 2001. Amebiasis in four ball pythons, Python reginus. J Vet Med Sci. 63: 1365-1368.

Koompapong K., Sutthikornchai C., Sukthana Y. 2009. Cryptosporidium oocyst detection in water samples: floatation technique enhanced with immunofluorescence is as effective as immunomagnetic separation method. Korean J Parasitol. 47: 353- 357.

Liu A., Zhang X., Zhang L., Wang R., Li X., Shu J., Zhang X., Shen Y., Zhang W., Ling H. 2012. Occurrence of bovine giardiasis and endemic genetic characterization of Giardia duodenalis isolates in Heilongjiang Province, in the Northeast of China. Parasitol Res. 111: 655-661.

Lorenz I., Fagan J., More S.J. 2011. Calf health from birth to weaning. II. Management of diarrhoea in pre-weaned calves. Ir Vet J. 64: 9.

Matsubayashi M., Kimata I., Abe N. 2005. Identification of genotypes of Giardia intestinalis isolates from a human and calf in Japan. J Vet Med Sci. 67: 337-340.

Matsubayashi M., Teramoto-Kimata I., Uni S., Lillehoj H.S., Matsuda H., Furuya M., Tani H., Sasai K. 2013. Elongation factor-1α is a novel protein associated with host cell invasion and a potential protective antigen of Cryptosporidium parvum. J Biol Chem. 288: 34111-34120.

Matsubayashi M., Suzuta F., Terayama Y., Shimojo K., Yui T., Haritani M., Shibahara T. 2014. Ultrastructural characteristics and molecular identification of Entamoeba suis isolated from pigs with hemorrhagic colitis: implications for pathogenicity. Parasitol Res. 113: 3023-3028

Matsubayashi M., Kanamori K., Sadahiro M., Tokoro M., Abe N., Haritani M., Shibahara T. 2015a. First molecular identification of Entamoeba polecki in a piglet in Japan and implications for aggravation of ileitis by coinfection with Lawsonia intracellularis. Parasitol Res. 114: 3069-3073.

Matsubayashi M., Murakoshi N., Komatsu T., Tokoro M., Haritani M., Shibahara T. 2015b. Genetic identification of Entamoeba polecki subtype 3 from pigs in Japan and characterisation of its pathogenic role in ulcerative colitis. Infect Genet Evol. 36: 8- 14.

Meganck V., Hoflack G., Opsomer G. 2014. Advances in prevention and therapy of neonatal dairy calf diarrhoea: a systematical review with emphasis on colostrum management and fluid therapy. Acta Vet Scand. 56: 75

Nagano S., Matsubayashi M., Kita T., Narushima T., Kimata I., Iseki M., Hajiri T., Tani H., Sasai K., Baba E. 2007. Detection of a mixed infection of a novel Cryptosporidium andersoni and its subgenotype in Japanese cattle. Vet Parasitol. 149: 213-218.

Noble G.A., Noble E.R. 1952. Entamoebae in farm mammals. J Parasitol. 38:571-595.

Noble G.A. 1954 Entamoeba dilimani sp. nov. from Philippine goats. Phil J Sci. 83: 113-121.

Noble G.A. 1955. Entamoeba bubalus, n. sp., from Carabao. J Protozool. 2: 19-20.

Nolan M.J., Unger M., Yeap Y.T., Rogers E., Millet I., Harman K., Fox M., KalemaZikusoka G., Blake D.P. 2017. Molecular characterisation of protist parasites in human-habituated mountain gorillas (Gorilla beringei beringei), humans and livestock, from Bwindi impenetrable National Park, Uganda. Parasit Vectors. 10: 340.

農林水産省経営局保険課保険数理室,2018年度https://www.maff.go.jp/j/tokei/kouhyou/katiku_kyosai/.

O’Handley R.M., Cockwill C., McAllister T.A., Jelinski M., Morck D.W., Olson M.E. 1999. Duration of naturally acquired giardiosis and cryptosporidiosis in dairy calves and their association with diarrhea. J Am Vet Med Assoc. 214: 391-396.

Olson M.E., Guselle N.J., O'Handley R.M., Swift M.L., McAllister T.A., Jelinski M.D., Morck D.W. 1997. Giardia and Cryptosporidium in dairy calves in British Columbia. Can Vet J. 38: 703-706.

Peng M.M., Matos O., Gatei W., Das P., Stantic-Pavlinic M., Bern C., Sulaiman I.M., Glaberman S., Lal A.A., Xiao L. 2001. A comparison of Cryptosporidium subgenotypes from several geographic regions. J Eukaryot Microbiol. Suppl: 28S-31S.

Ryan U., Fayer R., Xiao L. 2014..Cryptosporidium species in humans and animals: current understanding and research needs. Parasitology. 141: 1667-1685.

Ralston B.J., McAllister T.A., Olson M.E. 2003. Prevalence and infection pattern of naturally acquired giardiasis and cryptosporidiosis in range beef calves and their dams. Vet Parasitol. 114: 113-122.

Rimhanen-Finne R., Vuorinen A., Marmo S., Malmberg S., Hänninen M.L. 2004. Comparative analysis of Cryptosporidium, Giardia and indicator bacteria during sewage sludge hygienization in various composting processes. Lett Appl Microbiol., 38: 301-305.

Robertson L.J., Campbell A.T., Smith H.V. 1992. Survival of Cryptosporidium parvum oocysts under various environmental pressures. Appl Environ Microbiol. 58: 3494-3500.

Smith G. 2015. Antimicrobial decision making for enteric diseases of cattle. Vet Clin North Am Food Ani. Pract.31: 47-60.

Stensvold C.R., Lebbad M., Clark C.G. 2010. Genetic characterisation of uninucleated cyst-producing Entamoeba spp. from ruminants. Int J Parasitol. 40: 775-778.

Stensvold C.R., Lebbad M., Victory E.L., Verweij J.J., Tannich E., Alfellani M., Legarraga P., Clark C.G. 2011. Increased sampling reveals novel lineages of Entamoeba: consequences of genetic diversity and host specificity for taxonomy and molecular detection. Protist. 162: 525-541.

Stensvold C.R., Nielsen M., Baraka V., Lood R., Fuursted K., Nielsen H.V. 2021. Entamoeba gingivalis: epidemiology, genetic diversity and association with oral microbiota signatures in North Eastern Tanzania. J Oral Microbiol. 13: 1924598.

Taira N., Ura S. 1991. Sudden death in calves infected with Strongyloides papillosus. Vet Parasitol. 39: 313-319.

Tamura K., Peterson D., Peterson N., Stecher G., Nei M., Kumar S. 2011. MEGA5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Mol Biol Evol. 28: 2731-2739.

Uga S., Matsuo J., Kono E., Kimura K., Inoue M., Rai S.K., Ono K. 2000. Prevalence of Cryptosporidium parvum infection and pattern of oocyst shedding in calves in Japan. Vet Parasitol. 94: 27-32.

Vilcek S. 1994. Development of PCR tests for the detection of bovine herpesvirus-1, bovine respiratory syncytial viruses and pestiviruses. Vet Med(Praha) 39: 687 -700.

Vu-Khac H., Holoda E., Pilipcinec E., Blanco M., Blanco J.E., Dahbi G., Mora A., López C., González E.A., Blanco J. 2007. Serotypes, virulence genes, intimin types and PFGE profiles of Escherichia coli isolated from piglets with diarrhoea in Slovakia. Vet J. 174: 176-187

Xiao L. 2010. Molecular epidemiology of cryptosporidiosis: an update. Exp Parasitol. 124: 80-89.

Xiao L., Morgan U.M., Limor J., Escalante A., Arrowood M., Shulaw W., Thompson R.C., Fayer R., Lal A.A. 1999. Genetic diversity within Cryptosporidium parvum and related Cryptosporidium species. Appl Environ Microbiol. 65: 3386 -3391.

Yui T., Nakajima T., Yamamoto N., Kon M., Abe N., Matsubayashi M., Shibahara T. 2014. Age-related detection and molecular characterization of Cryptosporidium suis and Cryptosporidium scrofarum in pre– and post-weaned piglets and adult pigs in Japan. Parasitol Res. 113: 359-365.

Zintl A., Keogh B., Ezzaty-Mirhashemi M., De Waal T., Scholz D., Mulcahy G. 2010. Survival of Cryptosporidium parvum oocysts in the presence of hydrated lime. Vet Rec. 166: 297-300.

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