リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

大学・研究所にある論文を検索できる 「腎癌の進展におけるELOVL5による脂肪酸伸長の生物学的意義に関する研究」の論文概要。リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

コピーが完了しました

URLをコピーしました

論文の公開元へ論文の公開元へ
書き出し

腎癌の進展におけるELOVL5による脂肪酸伸長の生物学的意義に関する研究

新田, 聡 筑波大学 DOI:10.15068/0002008044

2023.09.04

概要

筑 波 大 学

博士(医学)学位論文

腎癌の進展における ELOVL5 による脂肪酸伸長の
生物学的意義に関する研究

2022
筑波大学大学院博士課程人間総合科学研究科
新田



この学位論文は、ELOVL5-mediated fatty acid elongation promotes cellular
proliferation and invasion in renal cell carcinoma (Satoshi Nitta, Shuya Kandori, Ken
Tanaka, Shotaro Sakka, Masanobu Siga, Yoshiyuki Nagumo, Hiromitsu Negoro,
Takahiro Kojima, Bryan J. Mathis, Toru Shimazui, Takafumi Miyamoto, Takashi
Matsuzaka, Hitoshi Shimano, and Hiroyuki Nishiyama. Cancer Science, 2022, Aug;
113(8):2738-2752. doi: 10. 1111/cas.15454)の内容を Wiley 社の規定に従って再利
用している。【原典論文】

内容
1

背景............................................................................................................................ 1

1.1

腎癌の現状と課題 ......................................................................................... 1

1.2

生体内における脂質と脂肪酸の機能 .............................................................. 2

1.3

がんにおける脂質代謝と ELOVLs の役割...................................................... 4

2

目的............................................................................................................................ 7

3

方法............................................................................................................................ 8

3.1

患者背景と使用検体 ...................................................................................... 8

3.2

免疫組織化学染色 ......................................................................................... 8

3.3

細胞と細胞培養 ............................................................................................. 9

3.4

細胞増殖アッセイ ....................................................................................... 10

3.5

細胞浸潤アッセイ ....................................................................................... 10

3.6

脂肪酸の調整 .............................................................................................. 11

3.7

ウエスタンブロット解析 ............................................................................. 11

3.8

CRISPR/Cas9 システムによる ELOVL5 ノックアウト株の作成 .................. 13

3.9

ヌードマウス異種移植 ................................................................................ 14

3.10 RNA シークエンス解析における遺伝子発現の評価 ...................................... 14

3.11 RNA の抽出と quantitative reverse transcription-polymerase chain reaction
(qRT-PCR) .......................................................................................................... 15

3.12 siRNA による CCL2 遺伝子発現抑制 ........................................................... 16

3.13 培養上清における CCL2 タンパクの検出 .................................................... 17

3.14 アポトーシスの評価 .................................................................................... 17

3.15 脂肪滴の染色 .............................................................................................. 17

3.16 RNA シークエンス ...................................................................................... 18

3.17 RNA シークエンス解析 ............................................................................... 18

3.18 脂肪酸解析 .................................................................................................. 19

3.19 統計解析 ..................................................................................................... 20

4

結果.......................................................................................................................... 22

4.1

腎癌患者における ELOVL5 の発現と予後との関連 ..................................... 22

4.2

ヒト腎癌細胞の増殖・浸潤における ELOVL5 の役割 .................................. 23

4.3

ELOVL5 による脂肪酸伸長とヒト腎癌細胞の増殖・浸潤との関連 .............. 24

4.4

ELOVL5 を介したヒト腎癌細胞の増殖の機序 ............................................. 25

4.5

ELOVL5 を介したヒト腎癌細胞の浸潤の機序 ............................................. 28

5

考察.......................................................................................................................... 32

6

結語.......................................................................................................................... 39

7

要約図 ...................................................................................................................... 40

8

参考文献 .................................................................................................................. 41

9

謝辞.......................................................................................................................... 51

10

略語 ...................................................................................................................... 52

11

図表 ...................................................................................................................... 56

1 背景
1.1 腎癌の現状と課題
腎癌は、成人における悪性腫瘍の 2-3%を占め、
増加傾向にある 1,2。
欧米諸国では 2020 年に人口 10 万人あたり、
19.3 人が腎癌と診断され、
6.3 人が死亡している 3。欧米諸国と同様、本邦でも近年増加傾向にあ
り、2020 年には人口 10 万人あたり、19.9 人が腎癌と診断され、6.8 人
が死亡している 3。腎癌のリスク因子として肥満や高血圧、喫煙などが
知られており、特に肥満はその相対リスクが高いことが報告されてい
る 4。
腎癌の組織型として、淡明型腎細胞癌の頻度が最も高く(約 75%)、
次いで乳頭状腎細胞癌(約 15%)、嫌色素性腎細胞癌(約 5%)と続く
1

。淡明型腎細胞癌は近位尿細管上皮細胞を発生母地とし、細胞内は脂

質およびグリコーゲンに富み、組織学的に淡明な細胞質を有すること
が特徴であるが、その豊富な脂質の役割については明らかにされてい
ない。
腎癌に対する治療法として、限局性の腎癌(Ⅰ-Ⅲ期)の症例に対し
ては、腎部分切除術や根治的腎摘除術といった手術療法が施行され、5
年全生存率 70-90%の良好な予後が期待される 2。一方、約 3 分の 1 の

1

症例は診断時に転移を有し(Ⅳ期)、また手術療法を施行された 20-
50%の症例は後に遠隔転移を生じる 2。根治切除不能または転移性の腎
癌の症例に対してはチロシンキナーゼ阻害剤や mammalian target of
rapamycin (mTOR) 阻害剤といった分子標的治療薬、免疫チェックポイ
ント阻害薬などの薬物療法を主体とした治療が施行される。近年、免
疫チェックポイント阻害薬を中心とした腎癌に対する薬物併用療法が
進歩しており、従来の分子標的治療薬と比べて、奏効率や全生存期間
の飛躍的な向上を示している一方で、依然として根治に至る症例は非
常に稀である

5,6

。そのため、これまでの分子標的治療や抗腫瘍免疫の

活性化といった従来の機序とは異なる新たな治療法の開発が求められ
ている。

1.2

生体内における脂質と脂肪酸の機能
脂質は生体内でエネルギー源、生体膜成分、シグナル伝達分子とし
ての生物学的機能をもつ

7,8

。中性脂質は細胞内で脂肪滴として貯蔵さ

れ、必要に応じて分解されてエネルギーを産生する 9。リン脂質やスフ
ィンゴ脂質は生体膜における二重構造を構成し、生体膜の流動性、受
容体や膜チャネルの機能に影響を及ぼすほか、protein kinase B (AKT)経

2

路などのシグナル伝達に関与する 8,10。また、プロスタグランジンやロ
イコトリエンなどの脂質メディエーターに合成され、シグナル分子と
して機能する 11。
脂肪酸は脂質の基本骨格であり、多彩な生理機能を有する。脂肪酸
は炭化水素基とカルボキシル基で構成されており、炭化水素基の二重
結合の有無によって、飽和脂肪酸と不飽和脂肪酸に分類される 7。不飽
和脂肪酸は二重結合の数や位置によって一価不飽和脂肪酸と多価不飽
和脂肪酸に分類される 7。また、炭化水素基の炭素鎖の長さによって、
短鎖脂肪酸(2-4 個)、中鎖脂肪酸(6-10 個)、長鎖脂肪酸(12 個以
上)に分類されるが、哺乳類の組織では長鎖脂肪酸が大部分を占める
12

。生体内で合成された、あるいは食事由来の脂肪酸は、小胞体膜上に

存在する酵素によって不飽和化や炭素鎖の伸長といった反応を受ける
7

。不飽和化に関与する酵素には stearoyl-coA desaturases (SCDs)と fatty

acid desaturases (FADS)、炭素鎖の伸長に関与する酵素には elongation of
very-long-chain fatty acids (ELOVLs)がある 7。脂質の基本骨格となる脂
肪酸の不飽和度や炭素鎖長の違いが脂質の機能的多様性に影響する。
長鎖脂肪酸は縮合、還元、脱水、還元の四段階の反応を受けて合成さ
れる。ELOVLs はその中で縮合反応を触媒する酵素であり、哺乳類で

3

は 7 種類のアイソフォーム(ELOVL1-7)が報告されている 7。また、
ELOVLs のアイソフォームによって基質とする脂肪酸や発現組織が異
なっている。ELOVL1、ELOVL3、ELOVL6、ELOVL7 は飽和脂肪酸あ
るいは一価不飽和脂肪酸を基質とし、ELOVL2、ELOVL4、ELOVL5 は
多価不飽和脂肪酸を基質としている 7 。また、ELOVL1、ELOVL5、
ELOVL6 の遺伝子発現は組織普遍性が高い一方、ELOVL2、ELOVL3、
ELOVL4、ELOVL7 は組織特異性が高く、ELOVL2 は肝臓と精巣、
ELOVL3 は褐色脂肪組織、ELOVL4 は網膜や脳、皮膚、精巣、ELOVL7
は腎臓や膵臓、副腎、前立腺で多く発現している 7。

1.3 がんにおける脂質代謝と ELOVLs の役割
がん細胞では過酷ながん微小環境下での細胞増殖や生存のため、脂
質代謝を含めた細胞内代謝を変化させている。CD36 や fatty acid-binding
protein (FABP)、fatty acid transport protein (FATP)を介した細胞外からの
脂肪酸の取り込みや、グルコース代謝やグルタミン代謝を介した細胞
内での脂肪酸合成が亢進しており、脂肪酸を β 酸化によるエネルギー
産生に利用しているほか、脂肪滴として貯蔵しており、腎癌細胞をは
じめとするさまざまながん細胞で脂肪滴の形成が亢進している

4

13,14



また、脂肪酸合成に関わる転写因子 sterol regulatory element-binding
proteins (SREBPs) や、その下流の分子である acetyl-CoA carboxylase
(ACC)や fatty acid synthase (FASN)などの発現が亢進している 13,14。
上述のようにがん細胞では脂肪酸の合成が亢進し、がん細胞の生存
に寄与することが証明されている。一方、脂肪酸の組成の違いががん
細胞へ与える影響について、脂肪酸の不飽和化の点では、腎癌を含む
さまざまな癌種において SCD1 によってがん細胞の増殖・浸潤が促進
されることが報告されている 15-17。脂肪酸の伸長の点では、癌種によっ
て ELOVLs の異なる役割が報告されている。乳癌では ELOVL1 はがん
細胞の増殖を促進するが、ELOVL2 はがん細胞の遊走とコロニー形成
を抑制する 18,19。前立腺癌では ELOVL5 や ELOVL7 はがん細胞の増殖
や生存を促進するが、ELOVL2 はがん細胞の増殖や遊走、浸潤を抑制
する

20-23

。神経膠腫では ELOVL2 は epidermal growth factor receptor

(EGFR)シグナルを介して幹細胞の増殖や生存を促進する
ELOVL6 はがん細胞のコロニー形成を促進する

24

。肺癌では

25

。したがって、癌種

によって ELOVLs、さらに長鎖脂肪酸の役割が異なると考えられる。
ELOVL5 は食事由来のω6 脂肪酸(メチル基から 6 番目の炭素に最
初の二重結合を有する)であるリノール酸およびω3 脂肪酸(メチル基

5

から 3 番目の炭素に最初の二重結合を有する)であるリノレン酸を基
質として、それぞれアラキドン酸およびエイコサペンタエン酸への伸
長に関与する酵素である(図 1)7。ELOVL2 はエイコサペンタエン酸
を基質として、ドコサヘキサエン酸への伸長に関与する酵素である(図
1)7。腎癌では ELOVL5 と ELOVL2 の発現が亢進し、多価不飽和脂肪
酸が豊富に含まれていることが報告されているが、その生物学的意義
については解明されていない

26

。我々のグループでは、先行研究にお

いてヒト腎癌細胞における ELOVL2 の役割について報告した 27。この
研究では、ELOVL2 がヒト腎癌細胞における腫瘍増殖を促進し、予後
不良と関連することを示した。一方で、ヒト腎癌細胞における ELOVL5
の役割については解明されていない。
先述したように、脂質の主成分である脂肪酸は炭素鎖長や不飽和度
の違いによりその組成が変化し、脂質の生理活性に影響を及ぼす。
ELOVL5 を介した脂肪酸の組成変化がヒト腎癌の進展に重要な役割を
果たしているという仮説のもとで研究を進め、ヒト腎癌における
ELOVL5 の生物学的意義を明らかにすることを目的とした。

6

2 目的
本研究では、腎癌の進展メカニズムにおける ELOVL5 の生物学的意義
を明らかにすることを目的とする。

7

3 方法
3.1

患者背景と使用検体
筑波大学附属病院臨床研究倫理審査委員会の承認の下で行った(承
認番号 H28-104)。2006 年から 2021 年までに腎癌と診断され、筑波大
学附属病院にて根治的腎摘除術または腎部分切除術を施行された 70
例(淡明型腎細胞癌 40 例、乳頭状腎細胞癌 20 例、嫌色素性腎細胞癌
10 例)を対象とした。全対象患者から書面による同意を得た。
全 70 例の原発巣におけるホルマリン固定パラフィン包理(formalinfixed paraffin-embedded ; FFPE)を使用した。がんの進展度は国際対が
ん連合(Union for International Cancer Control ; UICC)の TNM 臨床病
期分類に基づいて評価した

28

。淡明型腎細胞癌の病理学的悪性度は

Fuhrman 分類に基づいて評価した 29。

3.2

免疫組織化学染色
免疫組織化学染色は過去の報告に従って実施した 30。使用した一次
抗体とその希釈濃度は下記の通りである。HIstofine Simple Stain MAX
PO® (Nichirei Bioscience 社)を二次抗体として使用し、ジアミノベン
ジジンにより発色した。

8

腎癌患者における ELOVL5 と CCL2 のタンパク発現を評価するた
め、癌部と非癌部における ELOVL5 と CCL2 の染色強度を比較し、癌
部の方が強く染色された場合を高発現症例とし、それ以外を低発現症
例と定義した。Ki-67 スコアリングは光学顕微鏡下倍率 400 倍で観察
し、無作為に選んだ 10 視野について全細胞数あたりの陽性核の割合
を算出し、その平均値を Ki-67 スコアとした。

3.3

提供元

商品コード

希釈濃度

anti-ELOVL5

Sigma-Aldrich

HPA047752

1:2500

anti-Ki67

Dako

M7240

1:200

anti-CCL2

Proteintech

25542-1-AP

1:200

細胞と細胞培養
ACHN と 786-O ( ヒ ト 腎 癌 ) 細 胞 株 は American Type Culture
Collection より購入し、OS-RC-2(ヒト腎癌)細胞株は理化学研究所バ
イオリソースセンターより購入した。SKRC52(ヒト腎癌)細胞株は
Ludwig Institute for Cancer Research の LG Old 博士より分与していただ
いた。RPTEC(ヒト近位尿細管上皮細胞)細胞株は Colnetics より購入
した。これらの細胞株は 10% ウシ胎児血清(fetal bovine serum : FBS)

9

を添加した RPMI(Roswell Park Memorial Institute)培地を使用し、37℃、
CO2 濃度 5%の条件下で培養した。ELOVL5 ノックアウト株の培養は、
G418 硫酸塩を添加した RPMI 培地で行った。

3.4

細胞増殖アッセイ
Cell Counting Kit-8(Dojindo 社)を使用して生細胞数を計測した。96
ウェルマイクロプレートの各ウェルへ細胞懸濁液(細胞濃度 1×104
cells/ml)を 100 µL ずつ入れて一定時間培養後に、Cell Counting Kit-8
溶液を 10 µL ずつ加え、1 時間後にマイクロプレートリーダーで 450
nm の吸光度を測定し、生細胞数を計測した。各細胞において細胞増殖
アッセイは 2 回以上行い、再現性を確認した。 ...

この論文で使われている画像

参考文献

1) Hsieh, J. J., Purdue, M. P., Signoretti, S., et al. Renal cell carcinoma. Nat Rev Dis

Primers. 2017; 3: 17009

2) Padala, S.A., Barsouk, A., Thandra, K. C., et al. Epidemiology of Renal Cell

Carcinoma. World J Oncol. 2020; 11(3): 79-87

3) Global cancer observatory: cancer today. Lyon, France: International Agency for

Research on Cancer. https://gco. iarc.fr/today.

4) Capitanio, U., Bensalah, K., Bex, A., et al. Epidemiology of Renal Cell Carcinoma.

Eur Urol. 2019; 75(1): 74-84

5) Quhal, F., Mori, K., Bruchbacher, A., et al. First-line Immunotherapy-based

Combinations for Metastatic Renal Cell Carcinoma: A Systematic Review and

Network Meta-analysis. Eur Urol Oncol. 2021; 4(5): 755-765

6) Moscetti, L., Hennik, P., Bolstad, B., et al. Combinations in the first-line treatment

of patients with advanced/metastatic renal cell cancer: regulatory aspects. ESMO

Open. 2020; 5(4): e000856

7) Guillou, H., Zadravec, D., Martin, P. G., Jacobsson, A. The key roles of elongases

and desaturases in mammalian fatty acid metabolism: Insights from transgenic mice.

Prog Lipid Res. 2010; 49(2): 186-199

41

8) Harayama, T, Riezman, H., Understanding the diversity of membrane lipid

composition. Nat Rev Mol Cell Biol. 2018; 19(5): 281-296

9) Olzmann, J. A., Carvalho, P. Dynamics and functions of lipid droplets. Nat Rev Mol

Cell Biol. 2019; 20(3): 137-155

10) Ebner, M., Lucic, I., Leonard, T. A., Yudushkin, I. PI(3,4,5)P 3 Engagement Restricts

Akt Activity to Cellular Membranes. Mol Cell. 2017; 65(3): 416-431

11) Alvarez, M. L., Lorenzetti, F. Role of eicosanoids in liver repair, regeneration and

cancer. Biochem Phrmacol. 2021; 192: 114732

12) Tvrzicka, E., Kremmyda, L. S., Stankova, B., Zak, A. Fatty acids as biocompounds:

their role in human metabolism, health and disease--a review. Part 1: classification,

dietary sources and biological functions. Biomed Pap Med Fac Univ Palacky

Olomouc Czech Repub. 2011; 155(2): 117-130

13) Koundouros, N., Poulogiannis, G. Reprogramming of fatty acid metabolism in cancer.

Br J Cancer. 2020; 122(1): 4-22

14) Cheng, C., Geng, F., Cheng, X., Guo, D. Lipid metabolism reprogramming and its

potential targets in cancer. Cancer Commun. 2018; 38(1): 27

15) von Roemeling, C. A., Marlow, L. A., Wei, J. J. et al. Stearoyl-CoA desaturase 1 is a

novel molecular therapeutic target for clear cell renal cell carcinoma. Clin Cancer

42

Res. 2013; 19(9): 2368-2380

16) Ascenzi, F., De Vitis, C., Maugeri-Sacca, M., Napoli, C., Ciliberto, G., Mancini, R.

SCD1, autophagy and cancer: implications for therapy. J Exp Clin Cancer Res. 2021;

40(1): 265

17) Tracz-Gaszewska, Z., Dobrzyn. P. Stearoyl-CoA Desaturase 1 as a Therapeutic

Target for the Treatment of Cancer. Cancers (Basel). 2019; 11(7): 948

18) Hilvo, M., Denkert, C., Lehtinen, L. et al. Novel theranostic opportunities offered by

characterization of altered membrane lipid metabolism in breast cancer progression.

Cancer Res. 2011; 71(9): 3236-3245

19) Kang, Y. P., Yoon, J. H., Long, N. P. et al. Spheroid-Induced Epithelial-Mesenchymal

Transition Provokes Global Alterations of Breast Cancer Lipidome: A Multi-Layered

Omics Analysis. Front Oncol. 2019; 9: 145

20) Xu, H., Li, S., Sun, Y. et al. ELOVL5-Mediated Long Chain Fatty Acid Elongation

Contributes to Enzalutamide Resistance of Prostate Cancer. Cancers. 2021; 13(16):

3957

21) Centenera, M. M., Scott, J. S., Machiels, J. et al. ELOVL5 Is a Critical and Targetable

Fatty Acid Elongase in Prostate Cancer. Cancer Res. 2021; 81(7): 1704-1718

22) Tamura, K., Makino, A., Hullin-Matsuda, F. et al. Novel lipogenic enzyme ELOVL7

43

is involved in prostate cancer growth through saturated long-chain fatty acid

metabolism. Cancer Res. 2009; 69(20): 8133-8140

23) Hu, T., Zhang, H., Luo, S. et al. ELOVL2 restrains cell proliferation, migration, and

invasion of prostate cancer via regulation of the tumor suppressor INPP4B. Cell

Signal. 2022; 96: 110373

24) Gimple, R. C., Kidwell, R. L., Kim, L. J. Y. et al. Glioma Stem Cell-Specific

Superenhancer Promotes Polyunsaturated Fatty-Acid Synthesis to Support EGFR

Signaling. Cancer Discov. 2019; 9(9): 1248-1267

25) Marien, E., Meister, M., Muley, T. et al. Phospholipid profiling identifies acyl chain

elongation as a ubiquitous trait and potential target for the treatment of lung

squamous cell carcinoma. Oncotarget. 2016; 7(11): 12582-12597

26) Lucarelli, G., Ferro, M., Loizzo, D. et al. Integration of Lipidomics and

Transcriptomics Reveals Reprogramming of the Lipid Metabolism and Composition

in Clear Cell Renal Cell Carcinoma. Metabolites. 2020; 10(12): 509

27) Tanaka, K., Kandori, S., Sakka, S. et al. ELOVL2 promotes cancer progression by

inhibiting cell apoptosis in renal cell carcinoma. Oncol Rep. 2022; 47(2): 23

28) Paner, G. P., Stadler, W. M., Hansel, D. E., Montironi, R., Lin, D. W., Amin, M. B.

Updates in the Eighth Edition of the Tumor-Node-Metastasis Staging Classification

44

for Urologic Cancers. Eur Urol. 2018; 73(4): 560-569

29) Fuhrman, S. A., Lasky, L. C., Limas, C. Prognostic significance of morphologic

parameters in renal cell carcinoma. Am J Surg Pathol. 1982; 6(7): 655-663

30) Kandori, S., Kojima, T., Matsuoka, T. et al. Phospholipase D2 promotes disease

progression of renal cell carcinoma through the induction of angiogenin. Cancer Sci.

2018; 109: 1865-1875

31) Watanabe, H., Hongu, T., Yamazaki, M., Kanaho, Y. Phospholipase D2 activation by

p38 MAP kinase is involved in neurite outgrowth. Biochem Biophys Res Commun.

2011; 413(2): 288-293

32) Cong, L., Ran, F. A., Cox, D. et al. Multiplex genome engineering using CRISPR/Cas

systems. Science. 2013; 339(6121): 819-823

33) Miyamoto, T., Lo, P. H. Y., Saichi, N. et al. Argininosuccinate synthase 1 is an

intrinsic Akt repressor transactivated by p53. Sci Adv. 2017; 3(5): e1603204

34) Yang, H., Minamishima, Y. A., Yan, Q. et al. pVHL acts as an adaptor to promote the

inhibitory phosphorylation of the NF-kappaB agonist Card9 by CK2. Mol Cell. 2007;

28(1): 15-27

35) Grossman, R. L., Heath, A. P., Ferretti, V. et al. Toward a Shared Vision for Cancer

Genomic Data. N Engl J Med. 2016; 375(12): 1109-1112

45

36) Isobe, Y., Arita, M., Matsueda, S. et al. Identification and structure determination of

novel anti-inflammatory mediator resolvin E3, 17,18-dihydroxyeicosapentaenoic

acid. J Biol Chem. 2012; 287(13): 10525-10534

37) Hijioka, M., Futokoro, R., Ohto-Nakanishi, T., Nakanishi, H., Katsuki, H., Kitamura,

Y. Microglia-released leukotriene B(4) promotes neutrophil infiltration and

microglial activation following intracerebral hemorrhage. Int Immunopharmacol.

2020; 85: 106678

38) Petan, T., Jarc, E., Jusović, M. Lipid Droplets in Cancer: Guardians of Fat in a

Stressful World. Molecules. 2018; 23(8): 1941

39) Li, Z., Liu, H., Luo, X. Lipid droplet and its implication in cancer progression. Am J

Cancer Res. 2020; 10(12): 4112-4122

40) Qi, X., Li, Q., Che, X., Wang, Q., Wu, G. The Uniqueness of Clear Cell Renal Cell

Carcinoma: Summary of the Process and Abnormality of Glucose Metabolism and

Lipid Metabolism in ccRCC. Front Oncol. 2021; 11: 727778

41) Qiu, B., Ackerman, D., Sanchez, D. J. et al. HIF2α-Dependent Lipid Storage

Promotes Endoplasmic Reticulum Homeostasis in Clear-Cell Renal Cell Carcinoma.

Cancer Discov. 2015; 5(6): 652-667

42) Di, Conza, G., Ho, PC. ER Stress Responses: An Emerging Modulator for Innate

46

Immunity. Cells. 2020; 9(3): 695

43) Hu, H., Tian, M., Ding, C., Yu, S. The C/EBP Homologous Protein (CHOP)

Transcription Factor Functions in Endoplasmic Reticulum Stress-Induced Apoptosis

and Microbial Infection. Front Immunol. 2019; 9: 3083

44) Malhotra, J. D., Miao, H., Zhang, K. et al. Antioxidants reduce endoplasmic

reticulum stress and improve protein secretion. Proc Natl Acad Sci U S A. 2008;

105(47): 18525-18530

45) Marciniak, S. J., Yun, C. Y., Oyadomari, S. et al. CHOP induces death by promoting

protein synthesis and oxidation in the stressed endoplasmic reticulum. Genes Dev.

2004; 18(24): 3066-3077

46) Song, B., Scheuner, D., Ron, D., Pennathur, S., Kaufman, R. J. Chop deletion reduces

oxidative stress, improves beta cell function, and promotes cell survival in multiple

mouse models of diabetes. J Clin Invest. 2008; 118(10): 3378-3389

47) Ricci, J. E., Muñoz-Pinedo, C., Fitzgerald, P. et al. Disruption of mitochondrial

function during apoptosis is mediated by caspase cleavage of the p75 subunit of

complex I of the electron transport chain. Cell. 2004; 117(6): 773-786

48) Li, D., Ji, H., Niu, X. et al. Tumor-associated macrophages secrete CC-chemokine

ligand 2 and induce tamoxifen resistance by activating PI3K/Akt/mTOR in breast

47

cancer. Cancer Sci. 2020; 111(1): 47-48

49) Xue, J., Ge, X., Zhao, W. et al. PIPKIγ Regulates CCL2 Expression in Colorectal

Cancer by Activating AKT-STAT3 Signaling. J Immunol Res. 2019; 2019: 3690561

50) Natsagdorj, A., Izumi, K., Hiratsuka, K. et al. CCL2 induces resistance to the

antiproliferative effect of cabazitaxel in prostate cancer cells. Cancer Sci. 2019;

110(1): 279-288

51) Azrad, M., Turgeon, C., Demark-Wahnefried, W. Current evidence linking

polyunsaturated Fatty acids with cancer risk and progression. Front Oncol. 2013; 3:

224

52) Borin, T. F., Angara, K., Rashid, M. H., Achyut, B. R., Arbab, A. S. Arachidonic Acid

Metabolite as a Novel Therapeutic Target in Breast Cancer Metastasis. Int J Mol Sci.

2017; 18(12): 2661

53) Matsuyama, M., Yoshimura, R. Relationship between arachidonic acid pathway and

human renal cell carcinoma. Onco Targets Ther. 2008; 1: 41-48

54) Wang, D., Dubois, R. N. Eicosanoids and cancer. Nat Rev Cancer. 2010; 10(3): 181193

55) D'Eliseo, D., Velotti, F. Omega-3 Fatty Acids and Cancer Cell Cytotoxicity:

Implications for Multi-Targeted Cancer Therapy. J Clin Med. 2016; 5(2): 15

48

56) Murray, M., Hraiki, A., Bebawy, M., Pazderka, C., Rawling, T. Anti-tumor activities

of lipids and lipid analogues and their development as potential anticancer drugs.

Pharmacol Ther. 2015; 150: 109-128

57) Guštin, E., Jarc, E., Kump, A., Petan, T. Lipid Droplet Formation in HeLa Cervical

Cancer Cells Depends on Cell Density and the Concentration of Exogenous

Unsaturated Fatty Acids. Acta Chim Slov. 2017; 64(3): 549-554

58) Yamamoto, T., Takabatake, Y., Minami, S. et al. Eicosapentaenoic acid attenuates

renal lipotoxicity by restoring autophagic flux. Autophagy. 2021; 17(7): 1700-1713

59) Welte, M., A., Gould, A., P. Lipid droplet functions beyond energy storage. Biochim

Biophys Acta Mol Cell Biol Lipids. 2017; 1862(10 Pt B): 1260-1272

60) Korbecki, J., Kojder, K., Simińska, D. et al. CC Chemokines in a Tumor: A Review

of Pro-Cancer and Anti-Cancer Properties of the Ligands of Receptors CCR1, CCR2,

CCR3, and CCR4. Int J Mol Sci. 2020; 21(21): 8412

61) Epand, R. M. Features of the Phosphatidylinositol Cycle and its Role in Signal

Transduction. J Membr Biol. 2017; 250(4): 353-366

62) Scaglia, N., Igal, R. A. Inhibition of Stearoyl-CoA Desaturase 1 expression in human

lung adenocarcinoma cells impairs tumorigenesis. Int J Oncol. 2008; 33(4): 839-850

63) Rueda-Rincon, N., Bloch, K., Derua, R. et al. p53 attenuates AKT signaling by

49

modulating membrane phospholipid composition. Oncotarget. 2015; 6(25): 2124021254

64) Moon, Y., A., Hammer, R., E., Horton, J., D. Deletion of ELOVL5 leads to fatty liver

through activation of SREBP-1c in mice. J Lipid Res. 2009; 50(3): 412-423

50

9 謝辞

本研究は、西山博之先生(筑波大学大学院人間総合科学研究科

患制御医学専攻

腎泌尿器外科学

教授)のご指導のもと行ったもの

であり、深く感謝いたします。また、多くのご指導やご助言をいただ

いた神鳥周也先生(筑波大学大学院人間総合科学研究科

学専攻

腎泌尿器外科学

総合科学研究科

疾患制御医

講師)、根来宏光先生(筑波大学大学院人間

疾患制御医学専攻

腎泌尿器外科学

准教授)、島野

仁先生(筑波大学医学医療系

内分泌代謝・糖尿病内科

教授)、松坂

賢先生(筑波大学医学医療系

内分泌代謝・糖尿病内科

教授)およ

び宮本崇史先生(筑波大学医学医療系

内分泌代謝・糖尿病内科

教)に深く感謝いたします。

さらに、これまで多くのサポートをいただいた筑波大学腎泌尿器外

科スタッフの先生方、大学院生および研究室技官の皆様に深甚なる感

謝の意を表します。

51

10 略語

AA

arachidonic acid

ACC

acetyl-CoA carboxylase

ACTB

actin beta

BSA

bovine serum albumin

ccRCC

clear cell renal cell carcinoma

cDNA

complementary DNA

chRCC

chromophobe renal cell carcinoma

DHA

docosahexaenoic acid

DMSO

dimethyl sulfoxide

DNA

deoxyribonucleic acid

EGFR

epidermal growth factor receptor

ELISA

enzyme-linked immunosorbent assay

ELOVL

elongation of very-long-chain fatty acid

EPA

eicosapentaenoic acid

ER

endoplasmic reticulum

FA

fatty acid

52

FABP

fatty acid-binding protein

FADS

fatty acid desaturases

FASN

fatty acid synthase

FATP

fatty acid transport protein

FBS

fetal bovine serum

FDR

false discovery rate

FFPE

formalin-fixed paraffin-embedded

FPKM

fragments per kilobase per million mapped reads

GDC

Genomic Data Commons

GEO

Gene Expression Omnibus

HE

hematoxylin eosin

HPRT

hypoxanthine phosphoribosyltransferase 1

HRP

horseradish peroxidase

IPA

ingenuity pathway analysis

LD

lipid droplet

mRNA

messenger ribonucleic acid

mTOR

mammalian target of rapamycin

53

OS

overall survival

PBS

phosphate-buffered saline

PCR

polymerase chain reaction

pRCC

papillary renal cell carcinoma

PUFA

polyunsaturated fatty acid

qRT-PCR quantitative real-time polymerase chain reaction

RCC

renal cell carcinoma

RNA

ribonucleic acid

RPMI

Roswell Park Memorial Institute

SCD1

Stearyl-CoA desaturase 1

Ser

serine

sgRNA

single-guide RNA

siRNA

small interfering RNA

SREBP

sterol regulatory element-binding protein

TCGA

The Cancer Genome Atlas

Thr

threonine

UICC

Union for International Cancer Control

54

UPR

unfolded protein response

VEGF

vascular endothelial growth factor

55

11 図表

図1

多価不飽和脂肪酸の合成経路

56

ccRCC; 淡明型腎細胞癌, pRCC; 乳頭状腎細胞癌, chRCC; 嫌色素性腎細胞癌

図2

TCGA データに基づくヒト腎癌組織と正常腎組織における

ELOVL5 の mRNA 発現レベルの比較

57

*数字は Image J ソフトウェアを用いた β-アクチン(ACTB)による Normalized

図3

ウエスタンブロット解析によるヒト腎癌細胞株とヒト近位尿

細管上皮細胞株における ELOVL5 のタンパク発現レベルの比較

58

ccRCC; 淡明型腎細胞癌, pRCC; 乳頭状腎細胞癌, chRCC; 嫌色素性腎細胞癌

図4

当院の腎癌 70 症例の原発巣における ELOVL5 のタンパク発現

(1)原発巣

(2)正常腎

(3)ネガティブコントロール(原発

巣)

Scale bar, 50 µm

59

ccRCC; 淡明型腎細胞癌, pRCC; 乳頭状腎細胞癌, chRCC; 嫌色素性腎細胞癌

図5

TCGA データに基づく ELOVL5 の mRNA 発現と全生存期間

60

図6

当院の淡明型腎細胞癌 40 症例における ELOVL5 のタンパク

発現と全生存期間

61

図7

ウエスタンブロット解析による ELOVL5 ノックアウト株の

ELOVL5 タンパク発現の評価

62

図8

Cell Counting Kit-8 アッセイを用いたヒト腎癌細胞株における

ELOVL5 ノックアウトによる細胞増殖への影響の評価

(***p<0.001)

63

図9

マトリゲルインベージョンアッセイを用いたヒト腎癌細胞株

における ELOVL5 ノックアウトによる細胞浸潤への影響の評価

(***p<0.001)

64

図 10

皮下移植モデルにおける ELOVL5 ノックアウトによる腫瘍増

殖の評価(*p<0.05, **p<0.01)

65

図 11

皮下腫瘍組織における Ki-67 発現の評価(***p<0.001)

Scale bar, 50 µm

66

図 12

腎被膜下移植モデルにおける ELOVL5 ノックアウトによる腫

瘍浸潤の評価

上段:Scale bar, 200 µm、下段:Scale bar, 100 µm

N, normal kidney tissue; T, tumor

67

図 13

液体クロマトグラフィー/エレクトロスプレーイオン化タン

デム質量分析による ELOVL5 ノックアウトによる脂肪酸組成変化の

解析(*p<0.05, **p<0.01, ***p<0.001)

68

図 14

脂肪酸の添加による ELOVL5 ノックアウト株の細胞増殖への

影響(**p<0.01, ***p<0.001)

69

図 15

脂肪酸の添加による ELOVL5 ノックアウト株の細胞浸潤への

影響(*p<0.05, **p<0.01, ***p<0.001)

70

図 16

蛍光染色を用いた ELOVL5 ノックアウトによる脂肪滴形成

への影響の評価

Green: Lipi-Green, Blue: Hoechst33342, Scale bar, 50 µm

(*p<0.05, **p<0.01, ***p<0.001)

71

図 17

蛍光染色を用いた脂肪酸の添加による脂肪滴形成への影響

の評価

Green: Lipi-Green, Blue: Hoechst33342, Scale bar, 50 µm

(*p<0.05, **p<0.01, ***p<0.001)

72

図 18

ELOVL5 ノックアウトによる UPR シグナル経路の活性化

下図は Image J ソフトウェアによりバンドのシグナル強度を定量化

したグラフ

73

図 19

ELOVL5 ノックアウトによる CHOP mRNA 発現の変化

(**p<0.01, ***p<0.001)

74

図 20

ELOVL5 ノックアウトによる CHOP タンパク発現の変化

75

図 21

カスパーゼ 3/7 アッセイを用いた ELOVL5 ノックアウトに

よるカスパーゼ 3/7 活性の変化の評価

(**p<0.01, ***p<0.001)

76

図 22

JC-1 アッセイを用いた ELOVL5 ノックアウトによるミトコ

ンドリア膜電位の変化の評価

(**p<0.01, ***p<0.001)

77

図 23

ELOVL5 ノックアウトによるアポトーシス促進遺伝子の

mRNA 発現の変化

(*p<0.05, **p<0.01, ***p<0.001, ns: not significant)

78

図 24

全カスパーゼ阻害剤 Z-VAD-FMK の添加による細胞生存能

の変化(*p<0.05, **p<0.01)

79

図 25

脂肪酸の添加による CHOP の mRNA 発現の変化

(*p<0.05, **p<0.01, ***p<0.001)

80

図 26

脂肪酸の添加によるアポトーシス促進遺伝子の mRNA 発現

の変化(*p<0.05, **p<0.01, ***p<0.001, ns: not significant)

81

図 27 ACHN 細胞株における遺伝子発現プロファイルを示すヒート

マップと階層型クラスタリング

82

図 28 ACHN/sgControl 株と ACHN/sgELOVL5 株間における発現変

動遺伝子

83

図 29 ACHN/sgControl 株と比較して ACHN/sgELOVL5 株で低下が

みられた生物学的機能

84

図 30 ACHN 細胞株と 786-O 細胞株における CCL2, CXCR4,

SELPLG, TLR2 の mRNA 発現レベル

(*p<0.05, **p<0.01, ***p<0.001, ns: not significant)

85

図 31 TCGA データに基づく淡明型腎細胞癌患者における CCL2 発

現と予後との関連

86

図 32 TCGA データに基づく淡明型腎細胞癌患者における ELOVL5

と CCL2 の mRNA 発現レベルの相関

87

図 33

淡明型腎細胞癌の原発巣における CCL2 のタンパク発現

(1)原発巣

発巣)

(2)正常腎

(3)ネガティブコントロール(原

(4)ネガティブコントロール(正常腎)

Scale bar, 50 µm

88

図 34

ELOVL5 ノックアウトによる CCL2 タンパク発現の変化

89

図 35

CCL2 ELISA kit を用いた ELOVL5 ノックアウトによる培養

上清における CCL2 タンパク発現の変化の評価

(**p<0.01, ***p<0.001)

90

図 36

ヒト腎癌細胞株おける CCL2 遺伝子発現抑制による CCL2

の mRNA 発現レベルの変化(***p<0.001)

91

図 37

マトリゲルインベージョンアッセイを用いた CCL2 遺伝子

発現抑制による細胞浸潤への影響の評価(***p<0.001)

92

図 38

発現変動遺伝子を用いた上流制御因子解析の結果

93

図 39

ELOVL5 ノックアウトによる AKT, mTOR, STAT3 リン酸化レ

ベルの変化

94

図 40

脂肪酸の添加による CCL2 の mRNA 発現レベルの変化

(**p<0.01, ***p<0.001)

95

図 41

脂肪酸の添加による AKT Ser473 リン酸化レベルの変化

下図は Image J ソフトウェアによりバンドのシグナル強度を定量化

したグラフ

96

表1

淡明型腎細胞癌における ELOVL5 タンパク発現と臨床病理学

的因子

淡明型腎細胞癌 (N=40)

年齢(平均±標準偏差)

ELOVL5 高発現

ELOVL5 低発現

(N=30)

(N=10)

67.9±12.7

63.2±10.4

臨床病期

0.298

0.029

stage1/2

12

stage3/4

18

病理学的 T 分類

0.067

T1/2

14

T3/4

16

Fuhrman 分類

0.271

G1-2

15

G3-4

15

97

表2

非淡明型腎細胞癌における ELOVL5 タンパク発現と臨床病理

学的因子

非淡明型腎細胞癌 (N=30)

ELOVL5 高発現

ELOVL5 低発現

(N=16)

(N=14)

59.1±11.6

52.2±16.1

年齢(平均±標準偏差)

0.189

臨床病期

0.886

stage1/2

14

12

stage3/4

病理学的 T 分類

0.088

T1/2

13

14

T3/4

乳頭状腎細胞癌 (N=20)

嫌色素性腎細胞癌 (N=10)

ELOVL5 高発現

ELOVL5 低発現

ELOVL5 高発現

ELOVL5 低発現

(N=14)

(N=6)

(N=2)

(N=8)

60.6±11.5

47.8±13.2

48.0±5.66

55.5±18.1

stage1/2

12

stage3/4

T1/2

11

T3/4

年齢(平均±標準偏差)

臨床病期

病理学的 T 分類

98

表3

細胞運動関連遺伝子のフィルタリング

遺伝子シンボル

生存解析における

Spearman 相関係数 (r)

r の統計学的意義

判定**

log-rank test (p)*

CCL2

0.037

0.213

<0.0001

TRUE

COL4A1

0.008

0.219

<0.0001

FALSE

CTSS

0.048

0.401

<0.0001

FALSE

CXCR4

0.001

0.155

0.0004

TRUE

ENG

<0.0001

0.080

0.066

FALSE

ICAM2

0.001

0.168

<0.0001

FALSE

SELPLG

0.032

0.279

<0.0001

TRUE

TLR2

0.005

0.364

<0.0001

TRUE

*各遺伝子の発現値を高発現群と低発現群の 2 群に分けて評価した。遺伝子発現値のカットオフは、

log-rank test における P 値が最小となり、また生存において最大の差となる値を用いた。

**腎癌患者の予後不良と関連かつ ELOVL5 遺伝子の発現と正の相関を有するもの

99

...

参考文献をもっと見る

全国の大学の
卒論・修論・学位論文

一発検索!

この論文の関連論文を見る