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大学・研究所にある論文を検索できる 「シソ科ハーブ類バジル(Ocimum basilicum L.)の耐塩性機構に関する研究―養分吸収, 抗酸化応答および光合成の観点から―」の論文概要。リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

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シソ科ハーブ類バジル(Ocimum basilicum L.)の耐塩性機構に関する研究―養分吸収, 抗酸化応答および光合成の観点から―

田中 秀樹 鳥取大学

2020.03.13

概要

(様式第13号)

学 位 論 文 要 旨

氏名: 田中 秀樹

題目: シソ科ハーブ類バジル(Ocimum basilicum L.)の耐塩性機構に関する研究
―養分吸収, 抗酸化応答および光合成の観点から―
(Study of Salt Tolerance Mechanisms in Basil (Ocimum basilicum L.), Labiatae Herb
- From the Viewpoint of Nutrient Uptake, Antioxidative Response and Photosynthesis -)
塩害は作物生産において深刻な収量低下を引き起こしており, 不適切な灌漑や土壌管理に
より塩類化が進むと, 今後さらなる影響が懸念される. よって塩ストレス(塩性およびアル
カリストレス)に対する各種植物の応答および生育への影響の把握と, 耐塩性に優れる植物
の各々の耐塩性機構の解明が急務である. 一般的に, 耐塩性が高い植物は塩誘導性酸化スト
レスに対する抗酸化応答に優れ, シソ科ハーブ類は優れた抗酸化能を有することが知られて
いる. また食用, 園芸, 医療など様々な分野において利用価値が高く, 世界中で広く栽培さ
れているが, どのような特徴を有するシソ科ハーブ類が耐塩性に優れているのかを調査した
種間比較研究はあまり報告されていない.
本論文の第2章おいて, 塩処理(Na50)下でシソ科ハーブ類を種間比較し, 耐塩性の高かっ
た種の耐塩性機構を明らかにした. この実験ではバジル, セージ, タイムおよびオレガノを
代表的なシソ科ハーブ類として調査し, 最も高い耐塩性を示したバジル(品種;スイート)
は栄養面(茎根Na保持および葉身K輸送)と抗酸化面(CAT活性化)の両面から耐塩性を発
揮していた.
第3章では, 第2章で明らかとなったバジルの耐塩性機構を耐塩性の異なるバジル品種(感
受性品種;スイート, 耐塩性品種;ナポレタノ)間で比較調査し, 耐塩性バジル品種が持つ
特徴を明瞭化した. 耐塩性品種はNa50処理下で顕著に耐塩性を発揮し, 第2章で明らかとな
っていた葉身K輸送がより優れていた. また根Na蓄積がより顕著であり, 葉身含水率の維持
に大きく貢献していたと考えられた. 一方, 乾物生産を担う光合成について, 感受性品種で
乾物重と光合成速度の傾向が一致しておらず, 光合成速度が維持されても乾物重は減少して
いた. 考えられる要因としては光合成同化産物を浸透圧調節物質の合成などに利用し, 結果
として乾物生産は低下した可能性が挙げられる. また耐塩性品種の方で, 塩ストレスの有無
に関わらず電子伝達速度, MDA含有率(脂質過酸化の指標)が低く, 処理下のCAT活性は感
受性品種と同等以上であった. このことから耐塩性品種の方で優れた抗酸化応答が耐塩性を
高めていた可能性が示唆された.
第4章では, 第3章で明らかにしたバジルの耐塩性機構が高pHおよび高EC下でどのような
影響を受けるのかについて調査した. この実験では耐塩性に優れる品種(タイ)を加えた3

品種間で調査を行い, 耐塩性アルカリ品種および感受性品種の違いがより明確になるように
した. 耐性の順序は乾物生産の観点から, ナポレタノ>タイ>スイートとなり, 耐性のある
品種ほど根の乾物重維持に優れていた. Mnは細胞壁の構成成分であるリグニンの生合成に
必要であり, 耐塩性アルカリ品種の根で高かったことから, 根の保護機能との関連性が示唆
された. また感受性品種で, より低い処理濃度からNaが葉身へ流入することから, 根Na蓄積
機能の喪失が考えられた. 一方, 3品種とも高pH下で塩性ストレスを受けてもK吸収あるい
は葉身K輸送機能は失われないことが明らかとなった. 高pH下で不可給化してしまう元素群
のうち, NO3-, P, Fe, Znは葉身で一定濃度低下するものの, 塩性ストレス強度による変化は
なく, 乾物重減少の説明要因にはならなかった. 一方CaはNaとすべての部位において負の相
関関係があり, NaとCaは明らかな競合関係にあった. しかしながら根Caは3品種で上昇して
おり, 最も厳しい塩性アルカリ条件下のナポレタノで最も高く, Caストレスシグナルによる
ストレス応答をより発現していた可能性が示唆された. またスイートの葉身でのみ, Mg含有
率が高pH下で一定濃度有意に低下し, 第3章の塩性ストレス(非アルカリ処理)下では葉身M
g含有率は維持されていたことを考えると, アルカリストレスによる影響であると考えられ
た. クロロフィル含有率もスイートでのみ有意に低下していたことから, Mg低下が光合成色
素合成に影響を及ぼし, 光合成速度の低下につながったと考えられた. 抗酸化応答について
第2章および第3章で重要性が示唆されたCAT活性はアルカリ条件下における塩性ストレス
下で著しく低下した. この原因として,アルカリによるCATの変性や触媒であるFe不足によ
る失活を考えることができる. 一方でH2O2やMDAは処理下で低下傾向を示し, 失活したCA
Tとは別の抗酸化応答システムの存在が示唆された.
以上のことから, バジルは代表的なシソ科ハーブ類の中で耐塩性に優れ, 根(あるいは茎)
でNaを蓄積させて葉身にKを積極的に輸送させる養分吸収と塩誘導性酸化ストレスに対して
CAT活性を著しく高める抗酸化応答が耐塩性を支えていた. そしてその両面の耐塩性機構は
耐塩性品種においてより顕著に機能しており, 根Na蓄積, 葉身K輸送が葉身含水率を維持さ
せ, 著しくCATを活性状態にさせることが塩ストレス下での重要な耐塩性機構であることが
明らかとなった. これらの耐塩性機構は塩性アルカリ条件にさらされると, 感受性品種ほど
根Na蓄積能が失われやすかったことから, 根への高pH傷害を抑えることが, アルカリ条件下
での高ECに対する耐性を高めることにつながると考えられる. バジルの塩性アルカリ耐性
は光合成や抗酸化応答よりも主に養分吸収の違いによって説明することができる可能性が
高い.

参考文献

Abogadallah, G. M. 2010. Insights into the significance of antioxidative defense under

salt

stress.

Plant

Signaling

Behavior

5(4):

369-374.

https://doi.org/10.4161/psb.5.4.10873

Al-Karaki, G. N., R. Hammad, and M. Rusan. 2001. Response of two tomato cultivars

differing in salt tolerance to inoculation with mycorrhizal fungi under salt stress.

Mycorrhiza 11: 43-47.

Amor, N. B., A. Jiménez, W. Megdiche, M. Lundqvist, F. Sevilla, and C. Abdelly. 2006.

Response of antioxidant systems to NaCl stress in the halophyte Cakile maritima.

Physiologia Plantarum 126: 446-457.

Andersson, I. 2008. Catalysis and regulation in Rubisco. Journal of Experimental Botany

59(7): 1555-1568. doi:10.1093/jxb/ern091

Attia, H., N. Karray, A. Ellili, N. Msilini, and M. Lachaâl. 2009. Sodium transport in basil.

Acta Physiol. 31: 1045-1051.

Azevedo Neto, A. D., J. T. Prisco, J. Enéas-Filho, J. V. R. Medeiros, and E. Gomes-Filho.

2005. Hydrogen peroxide pre-treatment induces salt- stress acclimation in maize plants.

Journal of Plant Physiology 162: 1114-1122.

Bhattacharjee, S. 2005. Reactive oxygen species and oxidative burst: Roles in stress,

senescence and signal transduction in plants. Current Science 89 (7): 1113-1121.

- 85 -

Bradford, M. M. 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram

quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Annu. Biochem. 72:

248-254.

Brown, P. H., R. D. Graham, and D. J. D. Nicholas. 1984. The effects of manganese and

nitrate supply on the levels of phenolics and lignin in young wheat plants. Plant and

Soil. 81: 437-440.

Çamlica, M., and G. Yaldiz. 2017. Effect of Salt Stress on Seed Germination, Shoot and

Root Length in Basil (Ocimum basilicum). International Journal of Secondary

Metabolite 4(3): 69-76. https://doi.org/10.21448/ijsm.356250

Cataldo, D.A., M. Haroon, L. E. Schrader, and V. L. Youngs. 1975. Rapid, colorimetric

determination of nitrate in plant tissue by nitration of salicylic acid. Communications

in Soil Science and Plant Analysis 6(1): 71-80. DOI: 10.1080/00103627509366547

Chan, E. W. C., L. Q. Kong, K. Y. Yee, W. Y. Chua, and T. Y. Loo. 2012. Antioxidant and

antibacterial properties of some fresh and dried Labiatae herbs. Free Radicals and

Antioxidants 2(3): 20-27. DOI: 10.5530/ax.2012.3.3

Cheeseman, J. M. 1988. Mechanisms of Salinity Tolerance in Plants. Plant Physiology

87: 547-550. https://doi.org/10.1104/pp.87.3.547

Chen, A., S. Husted, D. E. Salt, J. K. Schjoerring, and J. P. Persson. 2019. The Intensity

of Manganese Deficiency Strongly Affects Root Endodermal Suberization and Ion

Homeostasis. Plant Physiology 181: 729-742. https://doi.org/10.1104/pp.19.00507

Chen, W. J., S. Yang, Y. Zhang, Y. Y. Wang, T. Q. Yuan, and R. C. Sun. 2017. Effect of

- 86 -

alkaline preswelling on the structure of lignins from Eucalyptus. Scientific Reports

7(45752): 1-10. DOI: 10.1038/srep45752

Cuvelier, M. E., H. Richard, and C. Berset. 1996. Antioxidative activity and phenolic

composition of pilot-plant and commercial extracts of sage and rosemary. Journal of

the American Oil Chemists' Society 73(5): 645-652.

Enomoto, Y., and F. Goto. 2008. Long-distance signaling of iron deficiency in plants.

Plant Signaling & Behavior 3(6): 396-397. DOI: 10.1007/s00425- 007-0596-x.

Facchinelli, F., and A. P. M. Weber. 2011. The metabolite transporters of the plastid

envelope:

an

update.

Frontiers

in

Plant

Science

2(50):

1-18.

doi:

10.3389/fpls.2011.00050

Farhat, N., A. Elkhouni, W. Zorrig, A. Smaoui, C. Abdelly, and M. Rabhi. 2016. Effects

of magnesium deficiency on photosynthesis and carbohydrate partitioning. Acta

Physiol Plant 38: 145. https://doi.org/10.1007/s11738-016-2165-z

Farooq, M., T. Aziz, S. M. A. Basra, M. A. Cheema, and H. Rehman. 2008. Chilling

Tolerance in Hybrid Maize Induced by Seed Priming with Salicylic Acid. J. Agronomy

& Crop Science 194: 161-168. doi:10.1111/j.1439-037X.2008.00300.x

Ghanem, M. E., A. Albacete, C. Martines-Andujar, M. Acosta, R. Romero-Aranda, I. C.

Dodd, S. Lutts, and F. Perez-Alfocea. 2008. Hormonal changes during salinity-induced

leaf senescence in tomato (Salanum lycopersicum L.). J. Exp.Bot. 59: 3039-3050.

Gomes, M. A. C., M. S. Suzuki, M. Cunha, and C. F. Tullii. 2011. Effect of salt stress on

nutrient concentration, photosynthetic pigments, proline and foliar morphology of

- 87 -

Salvinia auriculata. Acta Limnologica 23 (2): 164-176.

Hafeez, B., Y. M. Khanif, and M. Saleem. 2013. Role of Zinc in Plant Nutrition- A Review.

American Journal of Experimental Agriculture 3(2): 374-391.

Hernández, J. A., and M. S. Almansa. 2002. Short-term effects of salt stress on antioxidant

systems and leaf water relations of pea leaves. Physiologia Plantarum 115: 251-257.

Hsieh, E. J., and B. M. Waters. 2016. Alkaline stress and iron deficiency regulate iron

uptake and riboflavin synthesis gene expression differently in root and leaf tissue:

implications for iron deficiency chlorosis. Journal of Experimental Botany 67(19):

5671-5685. doi:10.1093/jxb/erw328

Huang, R. 2018. Research progress on plant tolerance to soil salinity and alkalinity in

sorghum. Journal of Integrative Agriculture 17(4): 739-746.

Jakovljević, D. Z., M. D. Topuzović, M. S. Stanković, and B. M. Bojović. 2017. Changes

in Antioxidant Enzyme Activity in Response to Salinity-induced Oxidative Stress

during Early Growth of Sweet Basil. Horticulture, Environment, and Biotechnology

58(3): 240-246. https://doi.org/10.1007/s13580-017-0173-6

Kabir, M. E., M. A. Karim, and M. A. K. Azad. 2004. Effect of Potassium on Salinity

Tolerance of Mungbean (Vigana radiata L. Wilczek). Journal of Biological Sciences

4(2): 103-110. http://dx.doi.org/10.3923/jbs.2004.103.110

Kaiser, W. M. 1979. Reversible Inhibition of the Calvin Cycle and Activation of Oxidative

Pentose Phosphate Cycle in Isolated Intact Chloroplasts by Hydrogen Peroxide. Planta

145: 377-382.

- 88 -

Lima, A. L. S., F. M. DaMatta, H. A. Pinheiro, M. R. Totola, and M. E. Loureiro. 2002.

Photochemical responses and oxidative stress in two clones of Coffea canephora under

water deficit conditions. Environmental and Experimental Botany 47: 239-247.

Loreto, F., M. Centritto, and K. Chartzoulakis. 2003. Photosynthetic limitations in olive

cultivars with different sensitivity to salt stress. Plant, Cell and Environment 26: 595601. https://doi.org/10.1046/j.1365-3040.2003.00994.x

Lynch, J. P., and S. B. S. Clair. 2004. Mineral stress: the missing link in understanding

how global climate change will affect plants in real world soils. Field Crops Research

90: 101-115. doi:10.1016/j.fcr.2004.07.008

Maathuis, F. J. M., and A. Amtmann. 1999. K+ Nutrition and Na+ Toxicity: The Basis of

Cellular

K+/Na+

Ratios.

Annals

of

Botany

84:

123-133.

https://doi.org/10.1006/anbo.1999.0912

Makri, O., and S. Kintzios. 2007. Ocimum sp. (Basil): Botany, Cultivation,

Pharmaceutical Properties, and Biotechnology. Journal of Herbs, Spices & Medicinal

Plants 13(3): 123-150. doi:10.1300/J044v13n03_10

Manishankar, P., N. Wang, P. Köster, A. A. Alatar, and J. Kudla. 2018. Calcium signaling

during salt stress and in the regulation of ion homeostasis. Journal of Experimental

Botany 69(17): 4215-4226. doi:10.1093/jxb/ery201

McClure, P. R., L. V. Kochian, R. M. Spanswick, and J. E. Shaff. 1990. Evidence for

Cotransport of Nitrate and Protons in Maize Roots. Plant Physiology 93: 281-289.

https://doi.org/10.1104/pp.93.1.281

- 89 -

Mengel, K. 1994. Iron availability in plant tissues- iron chlorosis on calcareous soils.

Plant and Soil 165: 275-283. https://doi.org/10.1007/BF00008070

Mohamed, A. A., and A. A. Aly. 2004. Iron Deficiency Stimulated Some Enzymes

Activity, Lipid Peroxidation and Free Radicals Production in Borage officinalis

Induced in vitro. International journal of agriculture & biology 6(1): 179-184.

http://www.ijab.org

Munné-Bosch, S., and J. Peñuelas. 2003. Photo- and antioxidative protection, and a role

for salicylic acid during drought and recovery in field-grown Phillyrea angustifolia

plants. Planta 217: 758-766. DOI 10.1007/s00425-003-1037-0

Murchie, E. H., and T. Lawson. 2013. Chlorophyll fluorescence analysis: a guide to good

practice and understanding some new applications. Journal of Experimental Botany

64(13): 3983-3998. https://doi.org/10.1093/jxb/ert208

Murillo-Amador, B., J. J. Reyes-Pérez, A. Nieto-Garibay, E. Troyo-Diéguez, I. M.

Reynaldo-Escobar, E. O. Rueda-Puente, and J. L. García-Hernández. 2013. Salinity

tolerance in varieties of basil (Ocimum basilicum L.) during the stages of germination,

emergence and early growth. Tolerancia a la salinidad en albahaca 29(2): 101-112.

www.universidadyciencia.ujat.mx

Nayak, A. K., R. K. Gautam, D. K. Sharma, V. K. Mishra, C. S. Singh, and S. K. Jha.

2008. Growth, Oil Yield, and Ion Partitioning in Basil Grown on Sodic Soils.

Communications in Soil Science and Plant Analysis 39: 833-844. DOI:

10.1080/00103620701880891

日本香料協会 1989. 香りの百科. 朝倉書店. 293-295.

- 90 -

Parida, A. K., and A. B. Das. 2005. Salt tolerance and salinity effects on plants: a review.

Ecotoxicology

and

Environmental

Safety

60:

324-349.

http://dx.doi.org/10.1016/j.ecoenv.2004.06.010

Pathak, V., A. Prasad, and P. Pospíšil. 2017. Formation of singlet oxygen by

decomposition of protein hydroperoxide in photosystem II. PLoS ONE 12(7):

e0181732. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0181732

Preuss, C. P., C. Y. Huang, and S. D. Tyerman. 2011. Proton-coupled high-affinity

phosphate transport revealed from heterologous characterization in Xenopus of barleyroot plasma membrane transporter, HvPHT1;1. Plant, Cell and Environment 34: 681689. doi: 10.1111/j.1365-3040.2010.02272.x

Ramel, F., S. Bitrtic, S. Cuiné, C. Triantaphylidés, J. L. Ravanat, and M. Havaux. 2012.

Chemical Quenching of Singlet Oxygen by Carotenoids in Plants. Plant Physiology

158: 1267-1278.

Roby, M. H. H., M. A. Sarhan, K. A. H. Selim, and K. I. Khale. 2013. Evaluation of

antioxidant activity, total phenols and phenolic compounds in thyme (Thymus vulgaris

L.), sage (Salvia officinalis L.), and marjoram (Origanum majorana L.) extracts.

Industrial Crops and Products 43: 827-831.

Sahay, R., and D. D. Patra. 2014. Identification and performance of sodicity tolerant

phosphate solubilizing bacterial isolates on Ocimum basilicum in sodic soil.

Ecological Engineering 71: 639-643.

Said-Al Ahl, H. A. H., and E. A. Omer. 2011: Medicinal and aromatic plants production

under salt stress. A review. Herba Polonica 57(2): 72-87.

- 91 -

Shi, D., and Y. Sheng. 2005. Effect of various salt-alkaline mixed stress conditions on

sunflower seedlings and analysis of their stress factors. Environmental and

Experimental Botany 54: 8-21. doi:10.1016/j.envexpbot.2004.05.003

Silva, E. N., R. R. Vasconcelos, S. L. Ferreira-Silva, V. R. Almeida, and S. J. A. Gomes.

2011. Salt stress induced damages on the photosynthesis of physic nut young plants.

Scientia Agricola 68(1): 62-68. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-90162011000100010

Tanaka, H., S. Yamada, T. Masunaga, S. Yamamoto, W. Tsuji, and B. Murillo-Amador.

2018. Comparison of nutrient uptake and antioxidative response among four Labiatae

herbs species under salt stress condition. Soil Science and Plant Nutrition 64(5): 589597. https://doi.org/10.1080/00380768.2018.1492334

Tanji, K. K. (ed.) 1990. Agricultural salinity assessment and management. ASCE manuals

and reports on engineering practice 71: 3-4.

Tarchoune, I., C. Sgherri, O. Baâtour, R. Izzo, M. Lachaâl, F. Navari-Izzo, and Z. Ouerghi.

2013. Effects of oxidative stress caused by NaCl or Na2SO4 excess on lipoic acid and

tocopherols in Genovese and Fine basil (Ocimum basilicum). Annals of Applied

Biology 163: 23-32. https://doi.org/10.1111/aab.12036

Tezara, W., V. J. Mitchell, S. D. Driscoll, and D. W. Lawlor. 1999. Water stress inhibits

plant photosynthesis by decreasing coupling factor and ATP. Nature 401: 914-917.

doi:10.1038/44842

Tounekti, T., A. M. Vadel, M. Oñate, H. Khemira, and S. Munne-Bosch. 2011. Saltinduced oxidative stress in rosemary plants: Damage or protection? Environmental and

Experimental Botany 71: 298-305.

- 92 -

Wahid, A., and A. Ghazanfar. 2006. Possible involvement of some secondary metabolites

in salt tolerance of sugarcane. Journal of Plant Physiology 163: 723-730.

doi:10.1016/j.jplph.2005.07.007

Watanabe, T., M. Osaki, and T. Tadano. 1998. Effects of nitrogen source and aluminum

on growth of tropical tree seedlings adapted to low pH soils. Soil Sci. Plant Nutr. 44:

655-666.

Wilkins, K. A., E. Matthus, S. M. Swarbreck, and J. M. Davies. 2016. Calcium-Mediated

Abiotic Stress Signaling in Roots. Frontiers in Plant Science 7(1296): 1-17. doi:

10.3389/fpls.2016.01296

Wintermans, J., and A. De Mots. 1965. Spectrophotoetric charactaristics of Chlorophyll

a and b their pheophytins in ethanol. Biochim. Biophys. Acta. 109: 448-453.

Xiong, T. C., E. Ronzier, F. Sanchez, C. Corratgé-Faillie, C. Mazars, and J. B. Thibaud.

2014. Imaging long distance propagating calcium signals in intact plant leaves with

the BRET-based GFP-aequorin reporter. Frontiers in Plant Science 5(43): 1-13.

doi:10.3389/fpls.2014.00043

Yang, C., J. Chong, C. Li, C. Kim, D. Shi, and D. Wang. 2007. Osmotic adjustment and

ion balance traits of an alkali resistant halophyte Kochia sieversiana during adaptation

to salt and alkali conditions. Plant soil 294: 263-276. DOI 10.1007/s11104-007-92513

Yang, C., D. Shi, and D. Wang. 2008a. Comparative effects of salt and alkali stresses on

growth, osmotic adjustment and ionic balance of an alkali-resistant halophyte Suaeda

glauca (Bge.). Plant Growth Regul 56: 179-190. DOI 10.1007/s10725-008-9299-y

- 93 -

Yang, C. W., P. Wang, C. Y. Li, D. C. Shi, and D. L. Wang. 2008b. Comparison of effects

of salt and alkali stresses on the growth and photosynthesis of wheat. Photosynthetica

46(1): 107-114. DOI: 10.1007/s11099-008-0018-8

Zhang, J.T., and C. S. Mu. 2009. Effects of saline and alkaline stresses on the germination,

growth, photosynthesis, ionic balance and anti-oxidant system in an alkali-tolerant

leguminous forage Lathyrus quinquenervius. Soil Science and Plant Nutrition 55: 685697. doi: 10.1111/j.1747-0765.2009.00411.x

Zheng, W., and S. Y. Wang. 2001. Antioxidant Activity and Phenolic Compounds in

Selected Herbs. J. Agric. Food Chem. 49(51): 5165-5170.

- 94 -

公表論文

1.

Tanaka, H., S. Yamada, T. Masunaga, S. Yamamoto, W. Tsuji, and B. Murillo-Amador.

2018. Comparison of nutrient uptake and antioxidative response among four Labiatae

herb species under salt stress condition. Soil Science and Plant Nutrition 64(5): 589597.(第 2 章)

2.

Tanaka, H., T. Masunaga, W. Tsuji, S. Yamamoto, B. Murillo-Amador, M. Yamada,

and S. Yamada. 2019. Characteristics of nutrient uptake, photosynthesis, and

antioxidative response in a salt-tolerant basil variety - Characteristics of salt-tolerant

basil -. Sand Dune Research 67(1) (expected day of publication: April, 2020).(第 3

章)

- 95 -

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