リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

大学・研究所にある論文を検索できる 「皮膚創傷治癒過程におけるDectin-1とDectin-2の役割の相違」の論文概要。リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

コピーが完了しました

URLをコピーしました

論文の公開元へ論文の公開元へ
書き出し

皮膚創傷治癒過程におけるDectin-1とDectin-2の役割の相違

山口 賢次 東北大学

2020.03.25

概要

【⽬的】
⽪膚創傷治癒過程は炎症期、増殖期、再構築期から構成される。創傷治癒過程において炎症を惹起する物質に、微⽣物由来の pathogen-associated molecular patterns (PAMPs)および⾃⼰成分の damage-associated molecular patterns (DAMPs)がある。これらのうち多糖を認識する C 型レクチン受容体の中に dendritic-cell-associated C- type lectin (Dectin)-1 と Dectin-2 がある。Decitn-1 および Dectin-2 は真菌の細胞壁を構成する α-mannan(以下 Mannan)およびβ-glucan をそれぞれ認識し、感染防御に寄与する⼀⽅、創傷治癒においてはβ-glucan が治癒を促進し、Mannan が治癒を遅延させるという真逆の結果となることが明らかになってきた。しかしながら、両者の創傷治癒における役割や相違に関してはいまだに不明な点が多い。本研究では Dectin-1 および Dectin-2 の好中球性炎症反応や NETosis を中⼼に解析を⾏なった。

【⽅法】
野⽣型(WT)マウス(C57/BL6)および Dectin-1、Dectin-2 遺伝⼦⽋損(KO)マウスの背部⽪膚に⽣検パンチにて 3 mm の⽪膚全層⽋損創を作成した。WT マウスを⽤いて、Dectin-1、Dectin-2 の経時的 mRNA 発現量を定量 PCR で測定し、Dectin-1、 Dectin-2 発現細胞を免疫染⾊およびフローサイトメトリーで同定した。創部 DAMPs について、免疫染⾊および Dectin-1、Dectin-2 レポーター細胞を⽤いて解析した。Dectin-1KO マウスおよび Dectin-2KO マウスについて、マクロ所⾒により創閉鎖率を、ミクロ所⾒により再上⽪化率を、免疫染⾊により増殖期および再構築期マーカー(PCNA, CD31, α-SMA)および好中球数を解析し、WT マウスと⽐較した。創閉鎖率 に 関して は 、caspase recrutement domain-containing protein 9 knockout (CARD9KO)マウスおよび IL-17AKO マウスについても解析した。WT マウスの創傷に dZymosan あるいは Mannan を投与し、上記の解析に加え、サイトカインおよびケモカイン(TNF-α、IL-17A、IL-1β、KC、MIP-2、MCP-1)産⽣を測定し、vehicle投与と⽐較した。dZymosan あるいは Mannan 投与の NETosis への影響や Dectin- 1KO マウス、Dectin-2KO マウスにおける NETosis をシトルリン化ヒストン(Cit H3)の免疫蛍光染⾊やウエスタンブロッティングで解析した。また、NETosis により創閉鎖が遅延するかについて DNase I を⽤いて調べ、抗 Gr-1 抗体により好中球を枯渇させた WT マウスにおける創閉鎖率や NETosis を解析した。さらに Dectin-2KO マウスの再構築期マーカー(ヒドロキシプロリン量、COL3A1/COL1A1 ⽐、TGF-β、 MMP2、8)および好中球エラスターゼ量について、WT マウスと⽐較した。

【結果】
WT マウスでは、創作成後 6 時間をピークに Dectin-1 が発現し、Dectin-2 は 12 時間をピークに発現することが明らかになった。Dectin-1 および Dectin 2 は創部に集積する好中球やマクロファージ、線維芽細胞で発現していた。創部には Dectin-1 の DAMPs として報告がある Vimentin、β-glucronidase(Dectin-2)が発現しており、 DAMPs として作⽤する可能性が⽰唆されたが、実際に創部ホモジネート上清により、 Dectin-1、Dectin-2 レポーター細胞の GFP 活性が誘導された。Dectin-1KO マウスでは WT マウスに⽐べて創閉鎖が遅延し、Dectin-2KO マウスでは促進した。創作成後 5 ⽇⽬の表⽪内の PCNA 陽性細胞数、⾁芽組織内の CD31 陽性⾎管内⽪細胞数は Dectin-1KO マウスで低下したが、⾁芽組織内の CD31 陽性⾎管内⽪細胞数、αSMA陽性細胞数は Dectin-2KO マウスでいずれも上昇した。Dectin-1KO マウスでは WTマウスと⽐較し、6 時間で好中球集積が低下したが、Dectin-2KO マウスでは 6 時間で上昇し、5 ⽇⽬に低下することを観察した。Dectin-1 を刺激する dZymosan の創傷への投与は創閉鎖を促進させ、Dectin-2 を刺激する Mannan の投与は創閉鎖を遅延させた。Dectin-1 および Dectin-2 共通のシグナル伝達アダプター分⼦であるCARD9の KO マウスでは WT マウスと⽐較し、dZymosan による創閉鎖促進と Mannan 投与による創閉鎖遅延が消失し、IL-17AKO マウスでは WT マウスと⽐較し、Mannanによる創閉鎖遅延のみが消失した。 創作成後 5 ⽇⽬の PCNA 陽性細胞数、CD31 陽性⾎管内⽪細胞数、αSMA 陽性細胞数はいずれも溶媒投与に⽐較し、dZymosan 投与で有意に上昇したが、CD31 陽性⾎管内⽪細胞数、αSMA 陽性細胞数は溶媒投与に⽐較し、Mannan 投与で有意に低下した。炎症の指標となる好中球数の推移を追ったところ、dZymosan 投与では溶媒投与に⽐較し、6 時間から 12 時間で有意に好中球の上昇を認めた。⼀⽅、Mannan 投与での好中球は溶媒投与に⽐較し、24 時間以降、有意に上昇し、5⽇⽬にピークを迎えた。この好中球集積に対応して、dZymosan 投与においては溶媒投与に⽐較し、6 時間で KC、MIP-2 が多く産⽣され、Manann 投与においては溶媒投与に⽐較し、3 ⽇⽬に KC、MIP-2、MCP-1 に加え、TNF-α、IL- 17A の産⽣が増加していた。創部 NETosis は Mannan 投与後 5 ⽇⽬において溶媒投与、dZymosan 投与に⽐較し、亢進していた。⼀⽅、Mannan を投与しない状態での⽣理的 NETosis は、創作成後 3 ⽇⽬をピークに亢進していた。この3⽇⽬の NETosisは Dectin-2KO マウスでは WT マウスに⽐較して低下を認めたが、Dectin-1KO では認めなかった。DNaseⅠを創作成前⽇から解析前⽇まで投与したところ、Mannan 投与による5⽇⽬の創閉鎖遅延がキャンセルされた。また、抗 Gr-1 抗体により好中球を枯渇した WT マウスでは、3 ⽇⽬の NETs 形成が低下し、創傷治癒が改善したことから、NETs によって治癒が遅延することが⽰唆された。創作成後 10 ⽇⽬の Dectin- 2KO マウスでは、WT マウスと⽐較してハイドロキシプロリンが増加し、 COL3A1/COL1A1 ⽐の低下から再構築の促進が起こっていることが⽰唆され、これらの誘導につながる TGF-βの上昇、MMP-2、8、エラスターゼ活性の減少を確認した。

【結論】
⽪膚創傷治癒の過程で重要な働きをする炎症反応において、炎症のトリガーとなる Dectin-1 と Dectin-2 の役割の違いを検証した。Dectin-1 ⽋損下においては好中球の 創傷への集積が早期に少なく、組織形成を低下させることで増殖や再構築が阻害され、治癒が遅れる。dZymosan で Dectin-1 を刺激すると、Dectin-2 ⽋損下と同様に早期 の好中球性炎症反応が起こり、治癒が促進した。⼀⽅、Dectin-2 ⽋損下において好中 球は早期に創傷へ集積し、速やかに消退することで、治癒が促進された。Mannan で Dectin-2 を刺激すると、好中球が遷延し、NETs 形成が促進され、治癒が遅延するこ とが明らかになった。このように、Dectin-1 および Dectin-2 は、⽪膚創傷治癒の炎 症期から増殖期において重要な調節因⼦として作⽤することが⽰された。Dectin-2 は 創傷治癒を低下させることから、過剰な瘢痕やケロイド形成のブレーキの役割を担う 可能性が⽰唆された。

この論文で使われている画像

参考文献

1. Werdin F, Tenenhaus M, Rennekampff H-O. Chronic wound care. The Lancet. 2008;372:1860–2.

2. Dovi JV, Szpaderska AM, DiPietro LA. Neutrophil function in the healing wound: adding insult to injury? Thromb Haemost. 2004;92:275–80.

3. Delavary BM, van der Veer WM, van Egmond M, Niessen FB, Beelen RHJ. Macrophages in skin injury and repair. Immunobiology. 2011;216:753–62.

4. Pasparakis M, Haase I, Nestle FO. Mechanisms regulating skin immunity and inflammation. Nat Rev Immunol. 2014;14:289–301.

5. Giandoni MB, Grabski WJ. Cutaneous candidiasis as a cause of delayed surgical wound healing. J Am Acad Dermatol. 1994;30:981–4.

6. Kalan L, Loesche M, Hodkinson BP, Heilmann K, Ruthel G, Gardner SE, et al. Redefining the chronic-wound microbiome: fungal communities are prevalent, dynamic, and associated with delayed healing. mBio. 2016;7:01058-16.

7. Ballard J, Edelman L, Saffle J, Sheridan R, Kagan R, Bracco D, et al. Positive fungal cultures in burn patients: a multicenter review. J Burn Care Res Off Publ Am Burn Assoc. 2008;29:213–21.

8. Chellan G, Shivaprakash S, Karimassery Ramaiyar S, Varma AK, Varma N, Thekkeparambil Sukumaran M, et al. Spectrum and prevalence of fungi infecting deep tissues of lower-limb wounds in patients with type 2 diabetes. J Clin Microbiol. 2010;48:2097–102.

9. Horvath EE, Murray CK, Vaughan GM, Chung KK, Hospenthal DR, Wade CE, et al. Fungal wound infection (not colonization) is independently associated with mortality in burn patients. Ann Surg. 2007;245:978–85.

10. Moore EC, Padiglione AA, Wasiak J, Paul E, Cleland H. Candida in burns: risk factors and outcomes. J Burn Care Res Off Publ Am Burn Assoc. 2010;31:257–63.

11. Girardin SE, Sansonetti PJ, Philpott DJ. Intracellular vs extracellular recognition of pathogens – common concepts in mammals and flies. Trends Microbiol. 2002 ;10:193–9.

12. Yan Xiaoxiang, Zhang Hang, Fan Qin, Hu Jian, Tao Rong, Chen Qiujing, et al. Dectin-2 deficiency modulates Th1 differentiation and improves wound healing after myocardial infarction. Circ Res. 2017;120:1116–29.

13. Saijo S, Iwakura Y. Dectin-1 and Dectin-2 in innate immunity against fungi. Int Immunol. 2011;23:467–72.

14. Gow NA, Hube B. Importance of the Candida albicans cell wall during commensalism and infection. Curr Opin Microbiol. 2012;15:406–12.

15. Thiagarajan PS, Yakubenko VP, Elsori DH, Yadav SP, Willard B, Tan CD, et al. Vimentin is an endogenous ligand for the pattern recognition receptor Dectin-1. Cardiovasc Res. 2013;99:494–504.

16. Mori D, Shibata K, Yamasaki S. C-Type Lectin Receptor Dectin-2 Binds to an Endogenous Protein β-Glucuronidase on Dendritic Cells. PLoS ONE. 2017;12:e0169562.

17. Yuan K, Zhao G, Che C, Li C, Lin J, Zhu G, et al. Dectin-1 is essential for IL-1β production through JNK activation and apoptosis in Aspergillus fumigatus keratitis. Int Immunopharmacol. 2017;52:168–75.

18. Tang J, Lin G, Langdon WY, Tao L, Zhang J. Regulation of C-Type lectin receptor- mediated antifungal immunity. Front Immunol. 2018;9:123.

19. Majtan J, Jesenak M. β-Glucans: Multi-functional modulator of wound healing. Mol Basel Switz. 2018;23:806.

20. Yasuda K, Ogushi M, Nakashima A, Nakano Y, Suzuki K. Accelerated wound healing on the skin using a film dressing with β-Glucan paramylon. In Vivo. 2018;32:799–805.

21. Roy S, Dickerson R, Khanna S, Collard E, Gnyawali U, Gordillo GM, et al. Particulate β-glucan induces TNFα production in wound macrophages via a redox-sensitive NFκB- dependent pathway. Wound Repair Regen. 2011;19:411–9.

22. Abel G, Czop JK. Stimulation of human monocyte β-glucan receptors by glucan particles induces production of TNF-α and IL-1β. Int J Immunopharmacol. 1992;14:1363–73.

23. Miura T, Kawakami K, Kanno E, Tanno H, Tada H, Sato N, et al. Dectin-2–mediated signaling leads to delayed skin wound healing through enhanced neutrophilic inflammatory response and neutrophil extracellular trap formation. J Invest Dermatol. 2019;139:702–11.

24. Kanno E, Kawakami K, Tanno H, Suzuki A, Sato N, Masaki A, et al. Contribution of CARD9-mediated signalling to wound healing in skin. Exp Dermatol. 2017;26:1097–104.

25. Nathan C. Neutrophils and immunity: challenges and opportunities. Nat Rev Immunol. 2006;6:173–82.

26. Kolaczkowska E, Kubes P. Neutrophil recruitment and function in health and inflammation. Nat Rev Immunol. 2013;13:159–75.

27. de Oliveira S, Rosowski EE, Huttenlocher A. Neutrophil migration in infection and wound repair: going forward in reverse. Nat Rev Immunol. 201627;16:378–91.

28. Brinkmann V, Reichard U, Goosmann C, Fauler B, Uhlemann Y, Weiss DS, et al. Neutrophil extracellular traps kill bacteria. Science. 20045;303:1532–5.

29. Papayannopoulos V, Metzler KD, Hakkim A, Zychlinsky A. Neutrophil elastase and myeloperoxidase regulate the formation of neutrophil extracellular traps. J Cell Biol. 2010;191:677–91.

30. Wong SL, Demers M, Martinod K, Gallant M, Wang Y, Goldfine AB, et al. Diabetes primes neutrophils to undergo NETosis, which impairs wound healing. Nat Med. 2015 ;21:815–9.

31. Clark SR, Ma AC, Tavener SA, McDonald B, Goodarzi Z, Kelly MM, et al. Platelet TLR4 activates neutrophil extracellular traps to ensnare bacteria in septic blood. Nat Med. 2007;13:463–9.

32. Bianchi ME. DAMPs, PAMPs and alarmins: All we need to know about danger. J Leukoc Biol. 2007;81:1–5.

33. Krysko DV, Agostinis P, Krysko O, Garg AD, Bachert C, Lambrecht BN, et al. Emerging role of damage-associated molecular patterns derived from mitochondria in inflammation. Trends Immunol. 2011;32:157–64.

34. Gupta S, Kaplan MJ. The role of neutrophils and NETosis in autoimmune and renal diseases. Nat Rev Nephrol. 2016;12:402–13.

35. He Y, Yang F-Y, Sun E-W. Neutrophil extracellular traps in autoimmune diseases. Chin Med J (Engl). 2018;131:1513–9.

36. Kanno E, Kawakami K, Ritsu M, Ishii K, Tanno H, Toriyabe S, et al. Wound healing in skin promoted by inoculation with Pseudomonas aeruginosa PAO1: The critical role of tumor necrosis factor-α secreted from infiltrating neutrophils. Wound Repair Regen Off Publ Wound Heal Soc Eur Tissue Repair Soc. 2011;19:608–21.

37. Ohtsuka M, Arase H, Takeuchi A, Yamasaki S, Shiina R, Suenaga T, et al. NFAM1, an immunoreceptor tyrosine-based activation motif-bearing molecule that regulates B cell development and signaling. Proc Natl Acad Sci. 2004;101:8126–31.

38. Wilgus TA, Roy S, McDaniel JC. Neutrophils and wound repair: positive actions and negative reactions. Adv Wound Care. 2013;2:379–88.

39. van den Berg LM, Zijlstra-Willems EM, Richters CD, Ulrich MMW, Geijtenbeek TBH. Dectin-1 activation induces proliferation and migration of human keratinocytes enhancing wound re-epithelialization. Cell Immunol. 2014;289:49–54.

40. Taylor PR, Reid DM, Heinsbroek SEM, Brown GD, Gordon S, Wong SYC. Dectin-2 is predominantly myeloid restricted and exhibits unique activation-dependent expression on maturing inflammatory monocytes elicited in vivo. Eur J Immunol. 2005;35:2163–74.

41. Taylor PR, Tsoni SV, Willment JA, Dennehy KM, Rosas M, Findon H, et al. Dectin-1 is required for beta-glucan recognition and control of fungal infection. Nat Immunol. 2007;8:31–8.

42. Brasch J, Mörig A, Neumann B, Proksch E. Expression of antimicrobial peptides and toll-like receptors is increased in tinea and pityriasis versicolor. Mycoses. 2014;57:147– 52.

43. Gantner BN, Simmons RM, Canavera SJ, Akira S, Underhill DM. Collaborative induction of inflammatory responses by dectin-1 and Toll-like receptor 2. J Exp Med. 2003;197:1107–17.

44. McGreal EP, Rosas M, Brown GD, Zamze S, Wong SYC, Gordon S, et al. The carbohydrate-recognition domain of Dectin-2 is a C-type lectin with specificity for high mannose. Glycobiology. 2006;16:422–30.

45. Depke M, Breitbach K, Dinh Hoang Dang K, Brinkmann L, Salazar MG, Dhople VM, et al. Bone marrow-derived macrophages from BALB/c and C57BL/6 mice fundamentally differ in their respiratory chain complex proteins, lysosomal enzymes and components of antioxidant stress systems. J Proteomics. 2014;103:72–86.

46. Katia DF, Robert B, Melanie L, Nancy H. Neutrophil Chemokines KC and Macrophage- Inflammatory Protein-2 Are Newly Synthesized by Tissue Macrophages Using Distinct TLR Signaling Pathways.

47. Leal SM, Cowden S, Hsia Y-C, Ghannoum MA, Momany M, Pearlman E. Distinct roles for Dectin-1 and TLR4 in the pathogenesis of Aspergillus fumigatus keratitis. PLoS Pathog. 2010;6:e1000976.

48. Fan Q, Tao R, Zhang H, Xie H, Lu L, Wang T, et al. Dectin-1 contributes to myocardial ischemia/reperfusion injury by regulating macrophage polarization and neutrophil infiltration. Circulation. 2019;139:663–78.

49. Zhu L-L, Zhao X-Q, Jiang C, You Y, Chen X-P, Jiang Y-Y, et al. C-type lectin receptors Dectin-3 and Dectin-2 form a heterodimeric pattern-recognition receptor for host defense against fungal infection. Immunity. 2013;39:324–34.

50. Degterev A, Yuan J. Expansion and evolution of cell death programmes. Nat Rev Mol Cell Biol. 2008;9:378–90.

51. Maher BM, Mulcahy ME, Murphy AG, Wilk M, O’Keeffe KM, Geoghegan JA, et al. Nlrp-3-driven interleukin 17 production by γδT cells controls infection outcomes during Staphylococcus aureus surgical site infection. Infect Immun. 2013;81:4478–89.

52. Khandpur R, Carmona-Rivera C, Vivekanandan-Giri A, Gizinski A, Yalavarthi S, Knight JS, et al. NETs are a source of citrullinated autoantigens and stimulate inflammatory responses in rheumatoid arthritis. Sci Transl Med. 2013;5:178ra40.

53. Gray RD, Hardisty G, Regan KH, Smith M, Robb CT, Duffin R, et al. Delayed neutrophil apoptosis enhances NET formation in cystic fibrosis. Thorax. 2018;73:134– 44.

54. Tanno H, Kawakami K, Kanno E, Suzuki A, Takagi N, Yamamoto H, et al. Invariant NKT cells promote skin wound healing by preventing a prolonged neutrophilic inflammatory response. Wound Repair Regen Off Publ Wound Heal Soc Eur Tissue Repair Soc. 2017;25:805–15.

55. McDonald JU, Rosas M, Brown GD, Jones SA, Taylor PR. Differential dependencies of monocytes and neutrophils on dectin-1, dectin-2 and complement for the recognition of fungal particles in inflammation. PLoS One. 2012;7:e45781.

56. Erwig LP, Gow NAR. Interactions of fungal pathogens with phagocytes. Nat Rev Microbiol. 2016;14:163–76.

57. Gantner BN, Simmons RM, Underhill DM. Dectin-1 mediates macrophage recognition of Candida albicans yeast but not filaments. EMBO J. 2005;24:1277–86.

58. Gow NAR, van de Veerdonk FL, Brown AJP, Netea MG. Candida albicans morphogenesis and host defence: discriminating invasion from colonization. Nat Rev Microbiol. 2011;10:112–22.

59. Gao Z, Perez-Perez GI, Chen Y, Blaser MJ. Quantitation of major human cutaneous bacterial and fungal populations. J Clin Microbiol. 2010;48:3575–81.

60. Wevers BA, Kaptein TM, Zijlstra-Willems EM, Theelen B, Boekhout T, Geijtenbeek TBH, et al. Fungal engagement of the C-type lectin mincle suppresses dectin-1-induced antifungal immunity. Cell Host Microbe. 2014;15:494–505.

61. Dovi JV, He L-K, DiPietro LA. Accelerated wound closure in neutrophil-depleted mice. J Leukoc Biol. 2003;73:448–55.

62. Leal SM, Vareechon C, Cowden S, Cobb BA, Latgé J-P, Momany M, et al. Fungal antioxidant pathways promote survival against neutrophils during infection. J Clin Invest. 2012;122:2482–98.

63. Clark HL, Abbondante S, Minns MS, Greenberg EN, Sun Y, Pearlman E. Protein deiminase 4 and CR3 regulate aspergillus fumigatus and β-Glucan-induced neutrophil extracellular trap formation, but hyphal killing is dependent only on CR3. Front Immunol. 2018;9:1182.

64. Gauglitz GG, Korting HC, Pavicic T, Ruzicka T, Jeschke MG. Hypertrophic scarring and keloids: pathomechanisms and current and emerging treatment strategies. Mol Med Camb Mass. 2011;17:113–25.

65. Ogawa R. Keloid and Hypertrophic scars are the result of chronic inflammation in the reticular dermis. Int J Mol Sci. 2017;18(3).

66. Ferguson MWJ, O’Kane S. Scar-free healing: from embryonic mechanisms to adult therapeutic intervention. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 2004;359:839–50.

67. Kim KK, Sheppard D, Chapman HA. TGF-β1 signaling and tissue fibrosis. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2018;10:a022293.

68. Chiba S, Ikushima H, Ueki H, Yanai H, Kimura Y, Hangai S, et al. Recognition of tumor cells by Dectin-1 orchestrates innate immune cells for anti-tumor responses. eLife. 2014 ;3:e04177.

69. Kimura Y, Inoue A, Hangai S, Saijo S, Negishi H, Nishio J, et al. The innate immune receptor Dectin-2 mediates the phagocytosis of cancer cells by Kupffer cells for the suppression of liver metastasis. Proc Natl Acad Sci U S A. 2016;113:14097–102.

70. Lande R, Ganguly D, Facchinetti V, Frasca L, Conrad C, Gregorio J, et al. Neutrophils activate plasmacytoid dendritic cells by releasing self-DNA-peptide complexes in systemic lupus erythematosus. Sci Transl Med. 2011;3:73ra19.

71. Magna M, Pisetsky DS. The Alarmin Properties of DNA and DNA-associated nuclear proteins. Clin Ther. 2016;38:1029–41.

72. Xu J, Zhang X, Pelayo R, Monestier M, Ammollo CT, Semeraro F, et al. Extracellular histones are major mediators of death in sepsis. Nat Med. 2009;15:1318–21.

73. Hakkim A, Fürnrohr BG, Amann K, Laube B, Abed UA, Brinkmann V, et al. Impairment of neutrophil extracellular trap degradation is associated with lupus nephritis. Proc Natl Acad Sci U S A. 2010;107:9813–8.

74. Kaplan MJ. Neutrophils in the pathogenesis and manifestations of SLE. Nat Rev Rheumatol. 2011;7:691–9.

75. Thomas GM, Carbo C, Curtis BR, Martinod K, Mazo IB, Schatzberg D, et al. Extracellular DNA traps are associated with the pathogenesis of TRALI in humans and mice. Blood. 2012;119:6335–43.

76. Romagnolo AG, de Quaglia E Silva JC, Della Coletta AM, Gardizani TP, Martins ATL, Romagnoli GG et al. Role of Dectin-1 receptor on cytokine production by human monocytes challenged with Paracoccidioides brasiliensis. Mycoses. 2018; 61:222-230.

77. Xu Q, Zhao G, Lin J, Wang Q, Hu L Jiang Z. Role of Dectin-1 in the innate immune response of rat corneal epithelial cells to Aspergillus fumigatus. BMC Ophthalmology. 2015; 15:126.

78. Miyabe C, Yoshishige M, Laura BM, Jeffrey L, Kawakami T, Andrew DL, et al. Dectin-2-induced CCL2 production in tissue-resident macrophages ignites cardiac arteritis. J Clin Invest. 2019;129:3610-24.

79. Wu SY, Weng CL, Jheng MJ, Kan HW, Hsieh ST, Liu FT et al. Candida albicans triggers NADPH oxidase-independent neutrophil extracellular traps through dectin-2. PLOS Pathogens. 2019;15:e1008096.

80. Michiko Tokunaga. Structure of Fungal Wall. Electronic microscope. 1990; 25:167-173.

81. Maruyama Kenta, Yasunori Takayama, Erika Sugisawa, et al. The ATP transporter VNUT mediates induction of Dectin-1-triggerd Candida nociception. IScience. 2018;6:306-18.

82. Chaffin, W.Lajean. Candida albicans cell wall proteins. Microbiology and Molecular Biology Review 2008;72: 495-544.

参考文献をもっと見る

全国の大学の
卒論・修論・学位論文

一発検索!

この論文の関連論文を見る