リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

大学・研究所にある論文を検索できる 「ラクトフェリンが脂質代謝に与える影響の多面的検討」の論文概要。リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

コピーが完了しました

URLをコピーしました

論文の公開元へ論文の公開元へ
書き出し

ラクトフェリンが脂質代謝に与える影響の多面的検討

森下, 聡 東京大学 DOI:10.15083/0002006135

2023.03.20

概要
















森下



動脈硬化性疾患等のリスクファクターとなる「メタボリックシンドローム」
(Mets)の罹
患者は世界中で増加しており、大きな社会問題となっている。国民の健康維持及び高騰する
医療費の抑制には、Mets の罹患につながる内臓脂肪の蓄積を予防することが非常に重要で
ある。本課題を解決すべく、申請者らのグループはその摂取によって内臓脂肪蓄積予防を実
現する食品素材を探索し、先行知見としてヒト試験により腸溶性ラクトフェリン(LF)摂
取による内臓脂肪低減作用を報告していた。しかしながら、LF の内臓脂肪低減機序につい
ての全貌は明らかにできておらず、動物モデルの確立が重要課題であった。また、内臓脂肪
以外における MetS 症状に対する効果も未検討であった。
本研究は、まず ICR マウスに対する LF 投与により内臓脂肪が減少することを確認し、
作用機序解析に供することができる動物モデルを確立した。次に遊離脂肪酸添加による in

vitro 脂肪肝モデルを用いて、LF の脂肪毒性を緩和する効果を示している。さらに、LF の
高コレステロール血症・動脈硬化症の発症予防効果を、モデル動物であるマイクロミニピッ
グを用いて確認している。論文は、序章と 3 章からなる本編、総合討論・将来展望よりな
る。
序章では、本研究の背景ならびに意義を概説し、目的ならびに構成について述べている。
第1章では、LF の内臓脂肪低減効果の作用機序解明に向けたモデル動物の確立について
述べている。LF による MetS の諸症状及び内臓脂肪蓄積の抑制効果を検証するモデルとし
ては、ICR マウスをカロリー制限の無い条件で飼育する条件が適切と考えられた。血中脂
質パラメーターの改善が認められた報告を参考にし、食餌としては、高脂肪食ではなく通常
食摂取を選定した。一方、LF が分解されずに腸に届くことも重要であることから、これま
での検討で、より多くのラクトフェリンが腸に到達することが判明している投与方法(強制
胃内投与)を選定し、内臓脂肪低減効果を検証した。その結果、腸間膜脂肪重量と肝臓中の
中性脂肪(TG)が有意に減少することを確認している。本投与条件において、小腸内にイ
ンタクトな LF が到達していること、および、腸間膜脂肪組織に免疫反応性 LF が到達して
いることを確認しており、これらの結果から、LF の内臓脂肪低減作用を検出可能なモデル
動物を確立したと結論付けている。
第2章では、MetS の肝臓での症状である脂肪肝について、そのモデル細胞に対する LF
の直接効果の検討について述べている。遊離脂肪酸添加をトリガーとする非アルコール性

脂肪肝は、肥満およびインスリン抵抗性と密接に関連することから、本研究における脂肪肝
モデルとして適切であると考え選択している。HepG2 細胞への遊離脂肪酸添加によって、
TG 蓄積が誘導され、レサズリン還元活性(細胞生存性の指標)が低下し、Caspase-3/7 活
性および LDH 活性が増加することを確認した。次に、遊離脂肪酸とともに LF を添加し、
LF の効果を検証した結果、TG 蓄積量には変化が認められない一方、遊離脂肪酸添加によ
る上記 3 指標の変化を抑制することを明らかにした。その作用機序仮説として、LF による
Akt シグナル経路の活性化を設定し、Akt 阻害剤を用いて検証を行い、阻害剤添加によって
LF の効果が減弱することを確認した。これら結果を受け、脂肪肝モデル細胞に対して、LF
は Akt シグナル経路を介して脂肪毒性を減弱すると結論付けている。
第3章では、高コレステロール血症・動脈硬化症に対する LF の効果を in vivo で明らかに
するため、ヒトと食事・睡眠習慣や脂質代謝機構が近い実験動物であり、かつ、短期間(8
週間)でアテローム性動脈硬化症を誘導可能なマイクロミニピッグを用いて検証をおこな
っている。また、本検討では、腸溶性 LF としての有効性を評価するため、LF 粉末を腸溶
性カプセルに充填したものを用いている。高脂肪・高コレステロール(Cho)食を給餌して
8 週間評価した結果、腸溶性 LF 投与群では、LF 非投与群と比較して、血清中総 Cho 濃度
および LDL Cho 濃度が低値を示すと共に、全身の動脈において観察されたアテローム性動
脈硬化層が明らかに少なかった。DNA マイクロアレイ解析による肝臓中の遺伝子発現プロ
ファイルの比較により、コレステロール代謝系に関わる遺伝子の多くの発現が、腸溶性 LF
投与群で増加していた。肝臓における Cho 合成は、恒常性を保つため血中 Cho 濃度の上昇
で抑制されることが良く知られており、本結果は、腸溶性 LF により血中 Cho 濃度の上昇
が抑制されたことで肝機能が正常に保たれたことを示唆すると述べている。
総合討論・将来展望では、本研究の成果をまとめるとともに、ラクトフェリンの作用機序
解明および応用展開に向け、残された課題と展望に関して論議している。
これらの研究成果は、学術上応用上寄与するところが少なくない。よって、審査委員一同
は本論文が博士(農学)の学位論文として価値あるものと認めた。

この論文で使われている画像

参考文献

1.

平成20年国民健康・栄養調査報告

第7部

メタボリックシンドロームの状況. 2008:

p. 80-81.

2.

Anan, F., Masaki, T., Umeno, Y., Iwao, T., Yonemochi, H., Eshima, N., Saikawa, T.,

and Yoshimatsu, H., Correlations of visceral fat accumulation and atherosclerosis in

Japanese patients with type 2 diabetes mellitus. Metabolism, 2008. 57(2): p. 280-4.

3.

Nakamura, T., Kobayashi, H., Yanagi, K., Nakagawa, T., Nishida, M., Kihara, S.,

Hiraoka, H., Nozaki, S., Funahashi, T., Yamashita, S., Kameda-Takemura, K., and

Matsuzawa, Y., Importance of intra-abdominal visceral fat accumulation to coronary

atherosclerosis in heterozygous familial hypercholesterolaemia. Int J Obes Relat

Metab Disord, 1997. 21(7): p. 580-6.

4.

Kwon, H. and Pessin, J.E. Adipokines mediate inflammation and insulin resistance .

Front Endocrinol (Lausanne), 2013. 4, 71 DOI: 10.3389/fendo.2013.00071.

5.

Anderson, B.F., Baker, H.M., Dodson, E.J., Norris, G.E., Rumball, S.V., Waters, J.M.,

and Baker, E.N., Structure of human lactoferrin at 3.2-A resolution. Proc Natl Acad

Sci U S A, 1987. 84(7): p. 1769-73.

6.

島崎敬一, ミルクのラクトフェリン, 乳業技術. 2001. p. 1-21.

7.

Elass-Rochard, E., Roseanu, A., Legrand, D., Trif, M., Salmon, V., Motas, C.,

Montreuil, J., and Spik, G., Lactoferrin-lipopolysaccharide interaction: involvement

of the 28-34 loop region of human lactoferrin in the high-affinity binding to

Escherichia coli 055B5 lipopolysaccharide. Biochem J, 1995. 312 ( Pt 3): p. 839-45.

8.

Shimazaki, K., Kawaguchi, A., Sato, T., Ueda, Y., Tomimura, T., and Shimamura, S.,

Analysis of human and bovine milk lactoferrins by Rotofor and chromatofocusing. Int

110

J Biochem, 1993. 25(11): p. 1653-8.

9.

Oram, J.D. and Reiter, B., Inhibition of bacteria by lactoferrin and other iron-

chelating agents. Biochim Biophys Acta, 1968. 170(2): p. 351-65.

10.

Tomita, M., Bellamy, W., Takase, M., Yamauchi, K., Wakabayashi, H., and Kawase,

K., Potent antibacterial peptides generated by pepsin digestion of bovine lactoferrin.

J Dairy Sci, 1991. 74(12): p. 4137-42.

11.

Iwasa, M., Kaito, M., Ikoma, J., Takeo, M., Imoto, I., Adachi, Y., Yamauchi, K.,

Koizumi, R., and Teraguchi, S., Lactoferrin inhibits hepatitis C virus viremia in

chronic hepatitis C patients with high viral loads and HCV genotype 1b. Am J

Gastroenterol, 2002. 97(3): p. 766-7.

12.

Superti, F., Agamennone, M., Pietrantoni, A., and Ammendolia, M.G. Bovine

Lactoferrin Prevents Influenza A Virus Infection by Interfering with the Fusogenic

Function of Viral Hemagglutinin. Viruses, 2019. 11, DOI: 10.3390/v11010051.

13.

Wakabayashi, H., Oda, H., Yamauchi, K., and Abe, F., Lactoferrin for prevention of

common viral infections. J Infect Chemother, 2014. 20(11): p. 666-71.

14.

Zou, J., Dong, J., and Yu, X.F., Meta-analysis: the effect of supplementation with

lactoferrin on eradication rates and adverse events during Helicobacter pylori

eradication therapy. Helicobacter, 2009. 14(2): p. 119-27.

15.

Razak, A. and Hussain, A. Lactoferrin Supplementation to Prevent Late-Onset

Sepsis in Preterm Infants: A Meta-Analysis. Am J Perinatol, 2019. DOI: 10.1055/s0039-1696676.

16.

Kozu, T., Iinuma, G., Ohashi, Y., Saito, Y., Akasu, T., Saito, D., Alexander, D.B., Iigo,

M., Kakizoe, T., and Tsuda, H., Effect of orally administered bovine lactoferrin on the

growth of adenomatous colorectal polyps in a randomized, placebo-controlled clinical

111

trial. Cancer Prev Res (Phila), 2009. 2(11): p. 975-83.

17.

Tsuda, H., Kozu, T., Iinuma, G., Ohashi, Y., Saito, Y., Saito, D., Akasu, T., Alexander,

D.B., Futakuchi, M., Fukamachi, K., Xu, J., Kakizoe, T., and Iigo, M., Cancer

prevention by bovine lactoferrin: from animal studies to human trial. Biometals, 2010.

23(3): p. 399-409.

18.

Paesano, R., Pietropaoli, M., Gessani, S., and Valenti, P., The influence of lactoferrin,

orally administered, on systemic iron homeostasis in pregnant women suffering of

iron deficiency and iron deficiency anaemia. Biochimie, 2009. 91(1): p. 44-51.

19.

Miyauchi, H., Kaino, A., Shinoda, I., Fukuwatari, Y., and Hayasawa, H.,

Immunomodulatory effect of bovine lactoferrin pepsin hydrolysate on murine

splenocytes and Peyer's patch cells. J Dairy Sci, 1997. 80(10): p. 2330-9.

20.

Ono, T., Murakoshi, M., Suzuki, N., Iida, N., Ohdera, M., Iigo, M., Yoshida, T.,

Sugiyama, K., and Nishino, H., Potent anti-obesity effect of enteric-coated lactoferrin:

decrease in visceral fat accumulation in Japanese men and women with abdominal

obesity after 8-week administration of enteric-coated lactoferrin tablets. Br J Nutr,

2010. 104(11): p. 1688-95.

21.

Takeuchi, T., Shimizu, H., Ando, K., and Harada, E., Bovine lactoferrin reduces

plasma triacylglycerol and NEFA accompanied by decreased hepatic cholesterol and

triacylglycerol contents in rodents. Br J Nutr, 2004. 91(4): p. 533-8.

22.

Yagi, M., Suzuki, N., Takayama, T., Arisue, M., Kodama, T., Yoda, Y., Numasaki, H.,

Otsuka, K., and Ito, K., Lactoferrin suppress the adipogenic differentiation of

MC3T3-G2/PA6 cells. J Oral Sci, 2008. 50(4): p. 419-25.

23.

Ono, T., Morishita, S., Fujisaki, C., Ohdera, M., Murakoshi, M., Iida, N., Kato, H.,

Miyashita, K., Iigo, M., Yoshida, T., Sugiyama, K., and Nishino, H., Effects of pepsin

112

and trypsin on the anti-adipogenic action of lactoferrin against pre-adipocytes

derived from rat mesenteric fat. Br J Nutr, 2011. 105(2): p. 200-11.

24.

Ono, T., Fujisaki, C., Ishihara, Y., Ikoma, K., Morishita, S., Murakoshi, M., Sugiyama,

K., Kato, H., Miyashita, K., Yoshida, T., and Nishino, H., Potent lipolytic activity of

lactoferrin in mature adipocytes. Biosci Biotechnol Biochem, 2013. 77(3): p. 566-71.

25.

Shin, K., Wakabayashi, H., Yamauchi, K., Yaeshima, T., and Iwatsuki, K.,

Recombinant human intelectin binds bovine lactoferrin and its peptides. Biol Pharm

Bull, 2008. 31(8): p. 1605-8.

26.

Akiyama, Y., Oshima, K., Kuhara, T., Shin, K., Abe, F., Iwatsuki, K., Nadano, D., and

Matsuda, T., A lactoferrin-receptor, intelectin 1, affects uptake, sub-cellular

localization and release of immunochemically detectable lactoferrin by intestinal

epithelial Caco-2 cells. J Biochem, 2013. 154(5): p. 437-48.

27.

Crawford, S.E. and Borensztajn, J., Plasma clearance and liver uptake of chylomicron

remnants generated by hepatic lipase lipolysis: evidence for a lactoferrin-sensitive

and apolipoprotein E-independent pathway. J Lipid Res, 1999. 40(5): p. 797-805.

28.

Ikoma-Seki, K., Nakamura, K., Morishita, S., Ono, T., Sugiyama, K., Nishino, H.,

Hirano, H., and Murakoshi, M., Role of LRP1 and ERK and cAMP Signaling

Pathways in Lactoferrin-Induced Lipolysis in Mature Rat Adipocytes. PLoS One,

2015. 10(10): p. e0141378.

29.

Shi, J., Finckenberg, P., Martonen, E., Ahlroos-Lehmus, A., Pilvi, T.K., Korpela, R.,

and Mervaala, E.M., Metabolic effects of lactoferrin during energy restriction and

weight regain in diet-induced obese mice. J Funct Foods, 2012. 4(1): p. 66-78.

30.

小野知二, 東京大学博士論文

序に関する研究

第2章

腸溶性ラクトフェリンの内臓脂肪低減効果とその作用機

第一節

113

31.

Kawashima, M., Kawakita, T., Inaba, T., Okada, N., Ito, M., Shimmura, S., Watanabe,

M., Shinmura, K., and Tsubota, K. Dietary lactoferrin alleviates age-related lacrimal

gland

dysfunction

in

mice.

PLoS

One,

2012.

7,

e33148

DOI:

10.1371/journal.pone.0033148.

32.

Fischer, R., Debbabi, H., Blais, A., Dubarry, M., Rautureau, M., Boyaka, P.N., and

Tome, D., Uptake of ingested bovine lactoferrin and its accumulation in adult mouse

tissues. Int Immunopharmacol, 2007. 7(10): p. 1387-93.

33.

Retegui, L.A., Moguilevsky, N., Castracane, C.F., and Masson, P.L., Uptake of

lactoferrin by the liver. I. Role of the reticuloendothelial system as indicated by

blockade experiments. Lab Invest, 1984. 50(3): p. 323-8.

34.

Hofmann, S.M., Zhou, L., Perez-Tilve, D., Greer, T., Grant, E., Wancata, L., Thomas,

A., Pfluger, P.T., Basford, J.E., Gilham, D., Herz, J., Tschöp, M.H., and Hui, D.Y.,

Adipocyte LDL receptor-related protein-1 expression modulates postprandial lipid

transport and glucose homeostasis in mice. J Clin Invest, 2007. 117(11): p. 3271-82.

35.

Grey, A., Zhu, Q., Watson, M., Callon, K., and Cornish, J., Lactoferrin potently

inhibits osteoblast apoptosis, via an LRP1-independent pathway. Mol Cell Endocrinol,

2006. 251(1-2): p. 96-102.

36.

Eguchi, Y., Eguchi, T., Mizuta, T., Ide, Y., Yasutake, T., Iwakiri, R., Hisatomi, A.,

Ozaki, I., Yamamoto, K., Kitajima, Y., Kawaguchi, Y., Kuroki, S., and Ono, N.,

Visceral fat accumulation and insulin resistance are important factors in

nonalcoholic fatty liver disease. J Gastroenterol, 2006. 41(5): p. 462-9.

37.

Nehra, V., Angulo, P., Buchman, A.L., and Lindor, K.D., Nutritional and metabolic

considerations in the etiology of nonalcoholic steatohepatitis. Dig Dis Sci, 2001.

46(11): p. 2347-52.

114

38.

Tilg, H. and Moschen, A.R., Evolution of inflammation in nonalcoholic fatty liver

disease: the multiple parallel hits hypothesis. Hepatology, 2010. 52(5): p. 1836-46.

39.

Marra, F. and Svegliati-Baroni, G., Lipotoxicity and the gut-liver axis in NASH

pathogenesis. J Hepatol, 2018. 68(2): p. 280-295.

40.

Zhang, J., Zhao, Y., Xu, C., Hong, Y., Lu, H., Wu, J., and Chen, Y. Association between

serum free fatty acid levels and nonalcoholic fatty liver disease: a cross-sectional

study. Sci Rep, 2014. 4, 5832 DOI: 10.1038/srep05832.

41.

Chavez-Tapia, N.C., Rosso, N., and Tiribelli, C. Effect of intracellular lipid

accumulation in a new model of non-alcoholic fatty liver disease. BMC Gastroenterol,

2012. 12, 20 DOI: 10.1186/1471-230X-12-20.

42.

Gomez-Lechon, M.J., Donato, M.T., Martinez-Romero, A., Jimenez, N., Castell, J.V.,

and O'Connor, J.E., A human hepatocellular in vitro model to investigate steatosis.

Chem Biol Interact, 2007. 165(2): p. 106-16.

43.

Lin, C.L., Huang, H.C., and Lin, J.K., Theaflavins attenuate hepatic lipid

accumulation through activating AMPK in human HepG2 cells. J Lipid Res, 2007.

48(11): p. 2334-43.

44.

Wu, X., Zhang, L., Gurley, E., Studer, E., Shang, J., Wang, T., Wang, C., Yan, M., Jiang,

Z., Hylemon, P.B., Sanyal, A.J., Pandak, W.M., Jr., and Zhou, H., Prevention of free

fatty acid-induced hepatic lipotoxicity by 18beta-glycyrrhetinic acid through

lysosomal and mitochondrial pathways. Hepatology, 2008. 47(6): p. 1905-15.

45.

Li, Y.C. and Hsieh, C.C. Lactoferrin dampens high-fructose corn syrup-induced

hepatic manifestations of the metabolic syndrome in a murine model. PLoS One, 2014.

9, e97341 DOI: 10.1371/journal.pone.0097341.

46.

Morishita, S., Ono, T., Fujisaki, C., Ishihara, Y., Murakoshi, M., Kato, H., Hosokawa,

115

M., Miyashita, K., Sugiyama, K., and Nishino, H., Bovine lactoferrin reduces visceral

fat and liver triglycerides in ICR mice. J Oleo Sci, 2013. 62(2): p. 97-103.

47.

Lee, S.H., Pyo, C.W., Hahm, D.H., Kim, J., and Choi, S.Y., Iron-saturated lactoferrin

stimulates cell cycle progression through PI3K/Akt pathway. Mol Cells, 2009. 28(1):

p. 37-42.

48.

Moreno-Navarrete, J.M., Ortega, F.J., Ricart, W., and Fernandez-Real, J.M.,

Lactoferrin

increases

(172Thr)AMPK

phosphorylation

and

insulin-induced

(p473Ser)AKT while impairing adipocyte differentiation. Int J Obes (Lond), 2009.

33(9): p. 991-1000.

49.

Huang, H.C., Lin, H., and Huang, M.C., Lactoferrin promotes hair growth in mice

and increases dermal papilla cell proliferation through Erk/Akt and Wnt signaling

pathways. Arch Dermatol Res, 2019. 311(5): p. 411-420.

50.

Jiang, R., Lopez, V., Kelleher, S.L., and Lonnerdal, B., Apo- and holo-lactoferrin are

both internalized by lactoferrin receptor via clathrin-mediated endocytosis but

differentially affect ERK-signaling and cell proliferation in Caco-2 cells. J Cell

Physiol, 2011. 226(11): p. 3022-31.

51.

Gardai, S.J., Hildeman, D.A., Frankel, S.K., Whitlock, B.B., Frasch, S.C., Borregaard,

N., Marrack, P., Bratton, D.L., and Henson, P.M., Phosphorylation of Bax Ser184 by

Akt regulates its activity and apoptosis in neutrophils. J Biol Chem, 2004. 279(20): p.

21085-95.

52.

Qi, X.J., Wildey, G.M., and Howe, P.H., Evidence that Ser87 of BimEL is

phosphorylated by Akt and regulates BimEL apoptotic function. J Biol Chem, 2006.

281(2): p. 813-23.

53.

Avramoglu, R.K., Cianflone, K., and Sniderman, A.D., Role of the neutral lipid

116

accessible pool in the regulation of secretion of apoB-100 lipoprotein particles by

HepG2 cells. J Lipid Res, 1995. 36(12): p. 2513-28.

54.

Nakamura, K., Morishita, S., Ono, T., Murakoshi, M., Sugiyama, K., Kato, H., Ikeda,

I., and Nishino, H., Lactoferrin interacts with bile acids and increases fecal

cholesterol excretion in rats. Biochem Cell Biol, 2017. 95(1): p. 142-147.

55.

Cui, W., Ma, J., Wang, X., Yang, W., Zhang, J., and Ji, Q. Free fatty acid induces

endoplasmic reticulum stress and apoptosis of beta-cells by Ca2+/calpain-2 pathways.

PLoS One, 2013. 8, e59921 DOI: 10.1371/journal.pone.0059921.

56.

Nakamura, S., Takamura, T., Matsuzawa-Nagata, N., Takayama, H., Misu, H., Noda,

H., Nabemoto, S., Kurita, S., Ota, T., Ando, H., Miyamoto, K., and Kaneko, S.,

Palmitate induces insulin resistance in H4IIEC3 hepatocytes through reactive

oxygen species produced by mitochondria. J Biol Chem, 2009. 284(22): p. 14809-18.

57.

Ogasawara, Y., Imase, M., Oda, H., Wakabayashi, H., and Ishii, K., Lactoferrin

directly scavenges hydroxyl radicals and undergoes oxidative self-degradation: a

possible role in protection against oxidative DNA damage. Int J Mol Sci, 2014. 15(1):

p. 1003-13.

58.

Eskes, R., Antonsson, B., Osen-Sand, A., Montessuit, S., Richter, C., Sadoul, R.,

Mazzei, G., Nichols, A., and Martinou, J.C., Bax-induced cytochrome C release from

mitochondria is independent of the permeability transition pore but highly dependent

on Mg2+ ions. J Cell Biol, 1998. 143(1): p. 217-24.

59.

Jin, H.O., Park, I.C., An, S., Lee, H.C., Woo, S.H., Hong, Y.J., Lee, S.J., Park, M.J.,

Yoo, D.H., Rhee, C.H., and Hong, S.I., Up-regulation of Bak and Bim via JNK

downstream pathway in the response to nitric oxide in human glioblastoma cells. J

Cell Physiol, 2006. 206(2): p. 477-86.

117

60.

Lei, K. and Davis, R.J., JNK phosphorylation of Bim-related members of the Bcl2

family induces Bax-dependent apoptosis. Proc Natl Acad Sci U S A, 2003. 100(5): p.

2432-7.

61.

Tsuruta, F., Sunayama, J., Mori, Y., Hattori, S., Shimizu, S., Tsujimoto, Y., Yoshioka,

K., Masuyama, N., and Gotoh, Y., JNK promotes Bax translocation to mitochondria

through phosphorylation of 14-3-3 proteins. EMBO J, 2004. 23(8): p. 1889-99.

62.

Li, P., Nijhawan, D., Budihardjo, I., Srinivasula, S.M., Ahmad, M., Alnemri, E.S., and

Wang, X., Cytochrome c and dATP-dependent formation of Apaf-1/caspase-9 complex

initiates an apoptotic protease cascade. Cell, 1997. 91(4): p. 479-89.

63.

Xu, X.X., Jiang, H.R., Li, H.B., Zhang, T.N., Zhou, Q., and Liu, N., Apoptosis of

stomach cancer cell SGC-7901 and regulation of Akt signaling way induced by bovine

lactoferrin. J Dairy Sci, 2010. 93(6): p. 2344-50.

64.

Oh, E., Yun, M., Kim, S.K., Seo, G., Bae, J.S., Joo, K., Chae, G.T., and Lee, S.B.,

Palmitate induces COX-2 expression via the sphingolipid pathway-mediated

activation of NF-kappaB, p38, and ERK in human dermal fibroblasts. Arch Dermatol

Res, 2014. 306(4): p. 339-45.

65.

Dekker, J.M., Girman, C., Rhodes, T., Nijpels, G., Stehouwer, C.D., Bouter, L.M., and

Heine, R.J., Metabolic syndrome and 10-year cardiovascular disease risk in the

Hoorn Study. Circulation, 2005. 112(5): p. 666-73.

66.

Hunt, K.J., Resendez, R.G., Williams, K., Haffner, S.M., and Stern, M.P., National

Cholesterol Education Program versus World Health Organization metabolic

syndrome in relation to all-cause and cardiovascular mortality in the San Antonio

Heart Study. Circulation, 2004. 110(10): p. 1251-7.

67.

Breslow, J.L., Mouse models of atherosclerosis. Science, 1996. 272(5262): p. 685-8.

118

68.

Forster, R., Ancian, P., Fredholm, M., Simianer, H., Whitelaw, B., and Project,

S.G.o.t.R., The minipig as a platform for new technologies in toxicology. J Pharmacol

Toxicol Methods, 2010. 62(3): p. 227-35.

69.

Kawaguchi, H., Miyoshi, N., Miura, N., Fujiki, M., Horiuchi, M., Izumi, Y., Miyajima,

H., Nagata, R., Misumi, K., Takeuchi, T., Tanimoto, A., and Yoshida, H., Microminipig,

a non-rodent experimental animal optimized for life science research:novel

atherosclerosis model induced by high fat and cholesterol diet. J Pharmacol Sci, 2011.

115(2): p. 115-21.

70.

Akioka, K., Kawaguchi, H., Kitajima, S., Miura, N., Noguchi, M., Horiuchi, M.,

Miyoshi, N., and Tanimoto, A., Investigation of necessity of sodium cholate and

minimal required amount of cholesterol for dietary induction of atherosclerosis in

microminipigs. In Vivo, 2014. 28(1): p. 81-90.

71.

Miyoshi, N., Horiuchi, M., Inokuchi, Y., Miyamoto, Y., Miura, N., Tokunaga, S., Fujiki,

M., Izumi, Y., Miyajima, H., Nagata, R., Misumi, K., Takeuchi, T., Tanimoto, A.,

Yasuda, N., Yoshida, H., and Kawaguchi, H., Novel microminipig model of

atherosclerosis by high fat and high cholesterol diet, established in Japan. In Vivo,

2010. 24(5): p. 671-80.

72.

Kawaguchi, H., Yamada, T., Miura, N., Ayaori, M., Uto-Kondo, H., Ikegawa, M.,

Noguchi, M., Wang, K.Y., Izumi, H., and Tanimoto, A., Rapid Development of

Atherosclerosis in the World's Smallest Microminipig Fed a High-Fat/HighCholesterol Diet. J Atheroscler Thromb, 2014. 21(3): p. 186-203.

73.

Stary, H.C., Natural history and histological classification of atherosclerotic lesions:

an update. Arterioscler Thromb Vasc Biol, 2000. 20(5): p. 1177-8.

74.

Saito, K., Ohta, Y., Sami, M., Kanda, T., and Kato, H., Effect of mild restriction of food

119

intake on gene expression profile in the liver of young rats: reference data for in vivo

nutrigenomics study. Br J Nutr, 2010. 104(7): p. 941-50.

75.

Chen, Z., McGee, M., Liu, Q., and Scheuermann, R.H., A distribution free

summarization method for Affymetrix GeneChip arrays. Bioinformatics, 2007. 23(3):

p. 321-7.

76.

Kadota, K., Nakai, Y., and Shimizu, K. Ranking differentially expressed genes from

Affymetrix gene expression data: methods with reproducibility, sensitivity, and

specificity. Algorithms Mol Biol, 2009. 4, 7 DOI: 10.1186/1748-7188-4-7.

77.

Huang da, W., Sherman, B.T., and Lempicki, R.A., Bioinformatics enrichment tools:

paths toward the comprehensive functional analysis of large gene lists. Nucleic Acids

Res, 2009. 37(1): p. 1-13.

78.

Hidaka, Y., Hotta, H., Nagata, Y., Iwasawa, Y., Horie, M., and Kamei, T., Effect of a

novel squalene epoxidase inhibitor, NB-598, on the regulation of cholesterol

metabolism in Hep G2 cells. J Biol Chem, 1991. 266(20): p. 13171-7.

79.

Ohashi, M., Mizushima, N., Kabeya, Y., and Yoshimori, T., Localization of

mammalian NAD(P)H steroid dehydrogenase-like protein on lipid droplets. J Biol

Chem, 2003. 278(38): p. 36819-29.

80.

Tuck, S.F., Patel, H., Safi, E., and Robinson, C.H., Lanosterol 14 alpha-demethylase

(P45014DM): effects of P45014DM inhibitors on sterol biosynthesis downstream of

lanosterol. J Lipid Res, 1991. 32(6): p. 893-902.

81.

Hassan, A.S. and Rampone, A.J., Intestinal absorption and lymphatic transport of

cholesterol and beta-sitostanol in the rat. J Lipid Res, 1979. 20(5): p. 646-53.

82.

Ross, R., The pathogenesis of atherosclerosis: a perspective for the 1990s. Nature,

1993. 362(6423): p. 801-9.

120

83.

Hazell, L.J. and Stocker, R., Oxidation of low-density lipoprotein with hypochlorite

causes transformation of the lipoprotein into a high-uptake form for macrophages.

Biochem J, 1993. 290 ( Pt 1): p. 165-72.

84.

Jialal, I. and Devaraj, S., The role of oxidized low density lipoprotein in atherogenesis.

J Nutr, 1996. 126(4 Suppl): p. 1053s-7s.

85.

Ikeda, Y., Tajima, S., Izawa-Ishizawa, Y., Kihira, Y., Ishizawa, K., Yoshida, S., Aihara,

K., Tsuchiya, K., and Tamaki, T., Bovine milk-derived lactoferrin exerts

proangiogenic effects in an Src-Akt-eNOS-dependent manner in response to ischemia.

J Cardiovasc Pharmacol, 2013. 61(5): p. 423-9.

86.

Kajikawa, M., Ohta, T., Takase, M., Kawase, K., Shimamura, S., and Matsuda, I.,

Lactoferrin inhibits cholesterol accumulation in macrophages mediated by acetylated

or oxidized low-density lipoproteins. Biochim Biophys Acta, 1994. 1213(1): p. 82-90.

87.

Xiong, L., Ren, F., Lv, J., Zhang, H., and Guo, H., Lactoferrin attenuates high-fat diet-

induced hepatic steatosis and lipid metabolic dysfunctions by suppressing hepatic

lipogenesis and down-regulating inflammation in C57BL/6J mice. Food Funct, 2018.

9(8): p. 4328-4339.

88.

Morishita, S., Tomita, K., Ono, T., Murakoshi, M., Saito, K., Sugiyama, K., Nishino,

H., and Kato, H., Lactoferrin attenuates fatty acid-induced lipotoxicity via Akt

signaling in hepatocarcinoma cells. Biochem Cell Biol, 2015. 93(6): p. 566-73.

89.

Porstmann, T., Griffiths, B., Chung, Y.L., Delpuech, O., Griffiths, J.R., Downward, J.,

and Schulze, A., PKB/Akt induces transcription of enzymes involved in cholesterol

and fatty acid biosynthesis via activation of SREBP. Oncogene, 2005. 24(43): p. 646581.

90.

Ziere, G.J., van Dijk, M.C., Bijsterbosch, M.K., and van Berkel, T.J., Lactoferrin

121

uptake by the rat liver. Characterization of the recognition site and effect of selective

modification of arginine residues. J Biol Chem, 1992. 267(16): p. 11229-35.

91.

Jiang, R. and Lonnerdal, B., Apo- and holo-lactoferrin stimulate proliferation of

mouse crypt cells but through different cellular signaling pathways. Int J Biochem

Cell Biol, 2012. 44(1): p. 91-100.

92.

Frazier-Wood, A.C., Kabagambe, E.K., Borecki, I.B., Tiwari, H.K., Ordovas, J.M., and

Arnett, D.K. Preliminary evidence for an association between LRP-1 genotype and

body

mass

index

in

humans.

PLoS

One,

2012.

7,

e30732

DOI:

10.1371/journal.pone.0030732.

93.

Ley, R.E., Turnbaugh, P.J., Klein, S., and Gordon, J.I., Microbial ecology: human gut

microbes associated with obesity. Nature, 2006. 444(7122): p. 1022-3.

94.

Tsai, Y.T., Cheng, P.C., and Pan, T.M., Anti-obesity effects of gut microbiota are

associated with lactic acid bacteria. Appl Microbiol Biotechnol, 2014. 98(1): p. 1-10.

95.

Sasaki, M., Ogasawara, N., Funaki, Y., Mizuno, M., Iida, A., Goto, C., Koikeda, S.,

Kasugai, K., and Joh, T. Transglucosidase improves the gut microbiota profile of type

2 diabetes mellitus patients: a randomized double-blind, placebo-controlled study.

BMC Gastroenterol, 2013. 13, 81 DOI: 10.1186/1471-230X-13-81.

96.

Xiao, S., Fei, N., Pang, X., Shen, J., Wang, L., Zhang, B., Zhang, M., Zhang, X., Zhang,

C., Li, M., Sun, L., Xue, Z., Wang, J., Feng, J., Yan, F., Zhao, N., Liu, J., Long, W., and

Zhao, L., A gut microbiota-targeted dietary intervention for amelioration of chronic

inflammation underlying metabolic syndrome. FEMS Microbiol Ecol, 2014. 87(2): p.

357-67.

97.

Franks, I. Obesity: New light shed on obesity-associated gut microbiota. Nat Rev

Gastroenterol Hepatol, 2011. 8, 537 DOI: 10.1038/nrgastro.2011.159.

122

98.

Hu, P., Zhao, F., Zhu, W., and Wang, J., Effects of early-life lactoferrin intervention

on growth performance, small intestinal function and gut microbiota in suckling

piglets. Food Funct, 2019. 10(9): p. 5361-5373.

99.

Mastromarino, P., Capobianco, D., Campagna, G., Laforgia, N., Drimaco, P., Dileone,

A., and Baldassarre, M.E., Correlation between lactoferrin and beneficial microbiota

in breast milk and infant's feces. Biometals, 2014. 27(5): p. 1077-86.

100.

Suzuki, N., Murakoshi, M., Ono, T., Morishita, S., Koide, M., Bae, M.J., Totsuka, M.,

Shimizu, M., Sugiyama, K., Nishino, H., and Iida, N., Effects of Enteric-coated

Lactoferrin Tablets Containing Lactobacillus brevis subsp. coagulans on Fecal

Properties, Defecation Frequency and Intestinal Microbiota of Japanese Women with

a Tendency for Constipation: a Randomized Placebo-controlled Crossover Study.

Biosci Microbiota Food Health, 2013. 32(1): p. 13-21.

123

要旨

「メタボリックシンドローム」

(Metabolic Syndrome; MetS)は、内臓脂肪型肥満に加え、

高血糖・高血圧・脂質異常症のうち、2つ以上を合併した状態と定義され、動脈硬化性疾患

のリスクファクターとして認知されている。近年、生活習慣病の末期である動脈硬化の発症

と内臓脂肪量が強い相関を示すことが明らかにされ、内臓脂肪の蓄積がメタボリックシン

ドローム形成の主な原因の一つであることが認知されるようになった。先進国はもとより、

発展途上国の富裕層においても、栄養過多、運動不足、ストレスの増加などの生活習慣の変

化を背景にし、世界中で MetS の患者が急増し、大きな社会問題となっている。すなわち、

国民の健康維持及び高騰する医療費の抑制には、MetS に罹患する前の内臓脂肪の蓄積を予

防することが非常に重要である。

ラクトフェリン(lactoferrin; LF)は、母乳、特に初乳中に高濃度含まれる事から、新生

児の初期免疫防御に重要な役割を示すことが考えられていたが、近年では、抗菌・抗ウイル

ス作用に加え、様々な生理作用(抗癌、抗貧血、免疫調節、脂質代謝改善等)が報告されて

おり、多機能性タンパク質として認知されている。母乳中に含まれる成分である事から安全

性も高く、ウシ由来 LF 原料に関して、アメリカでは、いわゆる一般的に安全な食品

(Generally Recognized as Safe;GRAS)として登録されている。日本でも、食品添加物

として認可されていることもあり、人の健康に寄与する成分として、様々な分野での基礎研

究及び応用研究が進められている。

我々は、LF のこれら機能のうち、脂質代謝改善作用に着目して研究を進めている。これ

まで、①LF による脂肪細胞分化抑制効果は知られていたが、ラット腸間膜脂肪由来前駆脂

肪細胞を用いた検討において、胃の消化酵素であるペプシンで分解した LF ではその効果が

認められなかったこと、②体内動態解析の結果から、経口投与した LF は腸間膜脂肪組織で

高濃度検出されたこと、以上の 2 点から、我々は、LF が内臓脂肪低減作用を発揮するには、

124

腸溶加工された LF が効果的であろうとの仮説を立てた。そこで、胃での分解を避けるため

に腸溶性 LF(entericLF;eLF)錠剤を用いて、腹部肥満傾向の日本人男女を対象とした二

重盲検群間比較試験を実施した。その結果、8 週間の eLF の摂取により、プラセボ群と比

較して腹部臍帯部の内臓脂肪面積が有意に低下することを確認し、ヒトにおける LF の内臓

脂肪低減効果を証明した。しかしながら、LF の内臓脂肪低減機序についての全貌は明らか

にできておらず、動物モデルの確立が重要課題であった。また、内臓脂肪以外の MetS 症状

に対する効果も未検討であった。そこで本論文では、LF の内臓脂肪低減機序解明を目指し

た動物モデルの確立と、

MetS 諸症状に対する LF の有効性を明らかにする事を目的とした。

まず、内臓脂肪低減効果の作用機序解明に向けたモデル動物の確立を検討した。LF 投与

による内臓脂肪低減モデルはほとんど報告されておらず、先行報告としては、食餌制限条件

において、LF 投与により、内臓脂肪を含む体脂肪率が有意に低下することが報告されてい

た。食餌制限という条件は、MetS の諸症状及び内臓脂肪蓄積を抑制するモデルとしては不

適切であると考え、カロリー制限の無い条件でのモデル確立が重要であると考えた。本条件

においては、内臓脂肪に着目した報告はされておらず、血中脂質パラメータの改善が認めら

れた条件として、通常食摂取の報告が複数されていた。一方、LF が分解されずに腸に届く

ことも重要である。これまでの検討で、混餌投与と比較し、強制胃内投与(ゾンデ投与)の

方が、インタクトな LF 及び iLF 共に小腸への到達量が顕著に多いことを確認していたこ

とから、投与方法を強制胃内投与に設定し、モデル確立を検討した。その結果、通常食の自

由摂取条件における ICR マウスに対し、4 週間 LF(100 mg/body)を強制胃内投与するこ

とにより、腸間膜脂肪重量(蒸留水群;0.43 ± 0.03 g、LF 群;0.28 ± 0.04 g、p < 0.05)

と、肝臓中の中性脂肪(Triglyceride;TG)

(蒸留水群;16.3 ± 1.8 mg/g-liver、LF 群;

6.5 ± 0.7 mg/g-liver、p < 0.01)が有意に減少することを明らかにした。また、本投与条

件において、小腸内に全長 LF が到達していること、および、腸間膜脂肪組織に免疫反応性

LF が到達していることを確認した。これらの結果から、LF の内臓脂肪低減作用を検出可

125

能なモデル動物を確立した。また、内臓脂肪重量と肝臓中の TG 濃度との間に、有意な相関

が認められたことから(R = 0.581、p < 0.05)

、LF の肝臓への作用を確認することが重要

であると考え、次に、MetS の肝臓での表現型といわれる脂肪肝のモデル細胞に対する LF

の直接効果を検討することとした。脂肪肝モデルとしては、肥満およびインスリン抵抗性と

密接に関連する非アルコール性脂肪肝(Non Alcoholic Fatty Liver Disease;NAFLD)モ

デルを選定した。本モデルは、NAFLD の重症度との関連が知られている血中脂肪酸(Fatty

Acid;FA)を脂肪肝の誘導トリガ―としている。本研究では、先行知見に基づき、ヒトの

血中に存在する代表的な FA であるパルミチン酸(C16:0)

、オレイン酸(C18:1)

、リノ

ール酸(C18:2)

、リノレン酸(C18:3)、アラキドン酸(C20:4)の FA 混合物(FA mixture;

FAm)を誘導トリガーとして使用した。FAm 誘導性 NAFLD モデルに対し、LF は 20 μg/mL

の濃度から、FAm(1 mM)によって低下する細胞生存率(レサズリン還元活性)を有意に

上昇させた。一方、細胞内への TG 蓄積には影響を与えなかった。TG の蓄積を抑制せずに、

細 胞 生 存 率 を 回 復 さ せ る こ と か ら 、 FAm に よ っ て 誘 導 さ れ る 細 胞 障 害 ( Lactic

Dehydrogenase;LDH 活性)とアポトーシス(Caspase-3/7 活性)への影響を確認した。

その結果、FAm によって増加した LDH 活性および Caspase-3/7 活性を LF は有意に低下

させたことから、LF は主にアポトーシス経路に作用している可能性が考えられた。次に、

同じく Caspase-3 の活性を誘導するツニカマイシン刺激による ER ストレスに対する作用

を検討した。その結果、LF は、ツニカマイシンによって誘導された Caspase-3/7 活性を阻

害しなかったことから、LF は、Caspase-3 への直接的な阻害効果ではなく、アポトーシス

誘導の途中のシグナル経路を阻害している可能性が考えられた。FA 誘導性のアポトーシス

は主に JNK 経路によって誘導されるという報告に基づき、LF が誘導するシグナル経路と

の交差ポイントを調べた結果、Akt シグナル経路が候補として抽出された。そこで、Akt の

リン酸化阻害剤である Akt inhibitor VIII(50 μM)を用いて、LF の効果への影響を検討し

た結果、LDH 活性に対する LF の効果を有意に減少させると共に、細胞生存率および

126

Caspase-3/7 活性については、LF の効果は完全に消失した。これらの結果から、NAFLD モ

デル細胞に対して、LF は Akt シグナル経路を介して脂肪毒性を減弱することを明らかにし

た。

最後に、高コレステロール血症および動脈硬化症に対する LF の効果を in vivo で明らか

にするため、ヒトと食事・睡眠習慣や脂質代謝機構が近い実験動物であり、かつ、短期間(8

週間)でアテローム性動脈硬化症を誘導可能なマイクロミニピッグ(Porcine)を用いて eLF

の有効性を検討した。その結果、高脂肪・高コレステロール食(HFCD)摂取群と比較して、

HFCD 摂取に加え eLF(500 mg/body/day)を投与した群では、投与第 2 週において、総

Cho および LDL-Cho 値の有意な低下が認められた(総 Cho; 42%低下、p < 0.01, LDL-Cho;

52%低下、p < 0.01)。15 箇所の動脈において、通常食群ではアテローム性動脈硬化病変は

全く観察されなかったのに対し、HFCD 群では、泡沫細胞浸潤を伴う内膜肥厚を示す動脈

が 9 カ所認められた。それに対し、eLF 投与群では、泡沫細胞浸潤が 3 カ所の動脈で認め

られるに留まった。eLF の効果を遺伝子レベルでも確認するため、DNA マイクロアレイ法

に よ り 、 HFCD お よ び HFCD + eLF 群 間 の 遺 伝 子 発 現 デ ー タ の 比 較 を 行 っ た 。

KEGGPathway において、7つのパスウエイに有意な変化が認められ、そのうち、Cho 代

謝に関わるステロイド生合成(ssc00100)パスウエイにも有意な差が認められた。そのパス

ウエイ内で変化した遺伝子を確認したところ、Cho 合成を促進する酵素である NAD(P)

dependet steroid dehydrogenase-like 、 Cytochrome P450, family 51, subfamily A,

polypeptide 1、Squalene epoxidase および Methylsterol monooxygenase 1 の遺伝子発現

が HFCD + eLF 群で有意に増加していた。これらのことから、eLF は、HFCD 誘発性の高

Cho 血症およびアテローム性動脈硬化症の発症を減弱させることを明らかにし、血中 Cho

濃度を低下させることにより、肝臓機能を保護していることが示唆された。

127

謝辞

本研究は、多くの方々のご助力のもと、東京大学大学院 農学生命科学研究科 応用生命

化学専攻 健康栄養機能学社会連携講座 特任教授 加藤久典先生(~2017 年;東京大学総

括プロジェクト機構総括寄付講座「食と生命」 特任教授)及び 同応用生命化学専攻 食

品生化学研究室 教授 佐藤隆一郎先生にご指導を賜り、博士論文として纏めることがで

きました。ここに謝意を述べさせて頂きます。

本研究を推進するにあたり、研究全体を統括して頂いた京都府立医科大学名誉教授 西

野輔翼先生に御礼申し上げます。先生には、ライオン株式会社研究顧問として、当社ライ

フサイエンス分野の研究の方向性設定に際し、親身になってご相談に乗って頂きました。

先生のご助力がなければ、当社の LF 研究のここまでの発展は実現できませんでした。心

より御礼申し上げます。

動物モデルの確立に関しては、北海道大学大学院水産科学研究院 教授 宮下和夫先生、

同教授 細川雅史先生にご指導を頂きました。先生方にご指導頂いたノウハウを元に、栄

養学の専門家である加藤久典先生のご指導の下、検討を進め、モデル確立を達成できまし

た。ここに深く感謝申し上げます。

脂肪肝モデル細胞における検討および DNA マイクロアレイ解析では、東京大学総括プ

ロジェクト機構総括寄付講座「食と生命」 特任教授

加藤久典先生、同講座特任研究員

齋藤憲司先生、中澤京子先生にご指導いただきました。また、受託研究員として、研究室

で一緒に過ごさせて頂いた1年間は、何物にも代えがたい経験となりました。ここに深く

感謝申し上げます。

マイクロミニピッグを用いた検討では、鹿児島大学大学院医歯学総合研究科 先進治療

科学専攻腫瘍学病理学分野

教授 谷本昭英先生、同衛生学・健康増進医学分野 准教授

128

川口博明先生にご指導を賜りました。動脈硬化諸症状を評価することが必須である中、当

社には実験動物として最適なモデルを保有していないことに加え、扱いのノウハウがあり

ませんでした。先生方のご助力・ご指導がなければ、LF の動脈硬化に対する予防効果を

見出すことはできませんでした。ここに深く感謝申し上げます。

更に、本研究に携わる機会を与えて下さり、本研究の遂行に際してご指導を頂きました

立命館大学客員教授(元ライオン株式会社 常務執行役員) 杉山圭吉博士、ライオン株

式会社 研究フェロー(元生命科学研究所長) 村越倫明博士、ウェルネス研究所(元生命

科学研究所 主研) 小野知二博士、また、共同研究者として、実験・解析を共に行った、

管理栄養士(元東京家政大学修士) 富田景子様、ライオン株式会社 薬品第1研究所 鈴

木則行主研、生命科学研究所 鈴木苗穂副主研、生駒(関)桂子副主研、石原康晴研究

員、藤崎(石原)央子研究員、中村啓亮研究員、中村佳菜恵研究員と、その他様々な実験

において、ご協力を頂いた皆様に深く感謝申し上げます。

最後に、私的ではございますが、本研究の遂行および論文の執筆にあたり、支え励まし

てくれた 妻 巧雲、長女

嘉帆、長男 皓世、次女 莉央に心からの感謝の意をここに

記します。

129

...

参考文献をもっと見る

全国の大学の
卒論・修論・学位論文

一発検索!

この論文の関連論文を見る