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Treatment with hepatocyte transplantation in a novel mouse model of persistent liver failure

玉置, 優貴 名古屋大学

2023.05.17

概要

学位報告4

別紙4
報告番号



















論 文 題 目 Treatment with hepatocyte transplantation in a novel
mouse model of persistent liver failure
(新規持続性肝不全マウスモデルにおける肝細胞移植治療)



名 玉置 優貴

論 文 内 容 の 要 旨
【緒言】

急性および慢性肝不全、肝細胞癌などの難治性肝疾患に対する同所性肝移植(OLT)
は、患者の予後を改善するために効果的な治療法である。しかし、ドナーの不足、移植
片拒絶のリスク、免疫抑制剤への副作用など、様々な問題を抱えている。そのため、OLT
の代替として間葉系幹細胞や iPS 細胞より誘導された肝様細胞による細胞移植治療やオ
ルガノイド移植による治療の検討が進められている。
成熟肝細胞を移植に使用する戦略は、肝不全の治療において検討されており、その有
効性を証明するための臨床試験が 20 年以上にわたって続けられている。その安全性お
よび短期的な有効性は証明されているが、細胞の生着率が低く、効果が持続しないなど
未解決の問題を抱えている。このような問題を解決し、次世代の細胞移植やオルガノイ
ド移植の可能性を保証するためには、細胞移植治療法を研究するのに役立つ適切なモデ
ルの確立が非常に重要である。
近年、ヒト化マウスの一種であるヒト肝細胞キメラマウス作製系が構築され、肝炎ウ
イルの複製系、薬剤スクリーニング系などに利用されている。その一つが、重度の免疫
不全形質をもつ NOG マウスのアルブミンプロモーター下に単純ヘルペスウイルスのチ
ミジンキナーゼ遺伝子を導入したトランスジェニックマウス、TK-NOG である。ガンシ
クロビル(GCV)はチミジンキナーゼによって毒性物質に変換されるため、TK-NOG は
GCV の投与によって肝細胞が死滅し、移植肝細胞の生着・増殖が可能となる。しかし、
同時にこれらのマウスは重度の免疫不全のため、免疫による肝障害の病態を再現できな
いという問題を抱えている。

学位関係

本研究では、肝細胞または肝細胞様細胞移植に適したモデルを開発するために、
TK-NOG を正常な免疫能を有するマウスに改変し、移植細胞の生着および免疫拒
絶のメカニズムが可能となるモデルを作製した。すなわち、TK-NOG を C57BL/6
または BALB/c マウスに戻し交配することで、肝細胞に TK を発現し、正常免疫能
を有するマウス(HSVtk)を作製した。これらの HSVtk マウスに、GCV を投与し
た後、同系または同種異系の肝細胞を移植した。その後、移植された肝細胞による
置換率と、移植によって引き起こされた肝臓の組織学的および免疫学的変化を経時
的に観察した。 さらに、同種異系移植において免疫拒絶反応を回避するため、タク
ロリムス(FK506)および脂肪組織由来幹細胞(ASC)の有効性を検証した。
【材料と方法】

HSVtk(C57/BL/6, Balb/c)マウスへ GCV を投与 1〜3 週間後に、緑色蛍光タン
パク質(GFP)トランスジェニックマウス(GFP-tg, BL/6 バックグラウンド)から
単離した 1×106 個の肝細胞を脾注移植した。同種同系(GFP-tg→HSVtk/BL6:

Auto モデル)または同種異系(GFP-tg→HSVtk/Balb: Allo モデル)の組み合わ
せで移植を行い HSVtk マウスに GCV 投与後、PBS のみを投与したマウスを対照
(Sham モデル)とした。経時的な変化を確認するため、各モデルで 0 日(処置な
し)、0 週(GCV 投与後)、移植後 1, 2, 4, 8 週において、移植細胞の生着率、肝内
環境の変化、移植細胞の生着や拒絶に関わる因子などについての解析を行なった。
また、Allo モデルにおける拒絶回避のための治療法として、タクロリムス(FK506)
あるいは脂肪由来幹細胞(ASC)投与の有用性について検討を行った。どちらの治
療群についても移植後 2weeks で移植細胞の生着率を評価した。
【結果】

Auto モデルでは、肝組織の GFP 免疫染色および肝内遺伝子発現解析の結果から、
移植された肝細胞が生着し、経時的に増殖していた。また、Sham モデルと比較し、
GCV 投与によって減少した体重は移植後に上昇していた。移植後 8 週で、血清 ALT
レベルと肝臓組織像はほぼ正常化したが、肝細胞置換率は 19.8 から 73.8%までと
マウス間で変動を認めた。肝細胞移植前、すなわち GCV 投与後の肝再生不の状態
は移植後 8 週では解消されており、肝細胞置換率の程度に関わらず、肝臓は組織学
的に正常形態に復していた。これは、移植肝細胞の増殖だけでなく、レシピエント
肝細胞も再生不全状態から回復し、増殖したためであると考えられた。Auto モデル
では、p16 の肝内 mRNA レベルが大幅に低下したため、肝障害に関連する肝細胞
の老化が解消されたと考えられた。
一方、Allo モデルでは、移植肝細胞は早期に排除され、移植後 1 週から肝細胞置
換率は全てのマウスで 0%であった。GCV 投与によって惹起された肝不全状態は改

善されず、
移植後 8 週時点での肝組織像でも変性肝細胞や炎症細胞浸潤を多く認め、

Sham モデルと比較して有意に肝線維化が進展していた。また、p16 の肝内 mRNA
レベルが移植後 8 週で有意に上昇し、肝細胞老化の増悪が示唆された。
最後に、Allo モデルにおける移植細胞の免疫拒絶回避のため、FK506 および ASC
を用いた治療を試みた。FK506 モデルでは生着肝細胞を認めたものの、移植肝細胞
による置換率は移植後 2 週で 1 割程度と Auto モデルの置換率より低かった。また、

Allo モデルと比較しても ALT 値の低下はみられず、体重は減少傾向を認めた。ASC
モデルでは移植肝細胞の生着は確認できなかったものの、
Allo モデルと比較し、ALT
値の低下や体重の増加を認めた。
【考察】

本研究で用いた Sham モデルは、8 週という長期にわたり、肝障害、肝細胞の形態
変化が持続、増悪する慢性肝再生不全モデルである。これまで肝再生の研究に用い
られてきた肝切除、CCl4 肝障害などのモデルが急性肝障害の後に自然経過で肝再生
が起こることを考えれば、このモデルは肝移植あるいは細胞移植治療を必要とする
臨床的病態により近く、肝再生不全に対する治療法の効果を評価するために適切な
モデルであると考えられた。このモデルにおいて、少量の肝細胞(Auto)の移植に
より肝不全からの回復がもたらされたことは、大変意義深い結果と考えている。
さらに移植した同系肝細胞が生着、増殖するのみでなく、再生不全に陥ったレシピ
エント肝細胞の形態の正常化、増殖を認めたことも、肝再生不全に対する肝細胞移
植治療の高い有用性を示唆するものであり、治療応用に向けた肝再生メカニズム解
明に向けてさらに詳細な解析が必要であると考えた。
肝再生不全の治療における肝細胞移植の有用性の機序について、本実験では主に
肝内の遺伝子発現について検討を行った。Auto モデルでは、炎症性サイトカイン/
ケモカインや細胞系列マーカーの一過性の発現上昇が、生存シグナルとなり肝再生
をもたらしたと考えられたが、その詳細な機序についてはさらに検討が必要である。

Allo モデルでは、FK506 が移植肝細胞の拒絶回避に有用であることが示されたが、
体重減少が生じるなど、副作用の観点からは問題点も認められた。炎症抑制作用の
みられた ASC との併用、免疫チェックポイント阻害剤の併用など、副作用の少な
い拒絶回避のための治療法の開発が必要と考えられた。
【結論】

HSVtk/GCV モデルでの細胞移植による肝再生のメカニズム解析、拒絶回避のため
の治療法開発は、臨床的なアンメットニーズの解決につながるものであり、今後も
同モデルを活用した研究の継続が必要と考えられた。

この論文で使われている画像

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- 16 -

Figure legends

Fig. 1. Experimental scheme.

a. The construction of HSVtk model. TK-NOG mouse is a transgenic mouse with NOG background, in

which the mouse albumin enhancer/promoter (mAlb E/P), the chimeric intron, HSVtk cDNA, and the

3’-UTR of the human growth hormone gene with a polyadenylation signal (hGH pA) are integrated in

its genome, and expresses HSV-TK only in the liver. We established an immunocompetent mice by

backcrossing TK-NOG mice to C57BL/6 or BALB/c mice 9-10 times or more (designated as

HSVtk/BL6 and HSVtk/Balb).

b. Method of hepatocytes transplantation. GCV was intraperitoneally injected to HSVtk/BL6 or

HSVtk/Balb, and primary hepatocytes (PHs) isolated from GFP-tg were transplanted after the ALT level

reached 500 U/L (Auto or Allo model). HSVtk/BL6 administered with PBS after administered of GCV

was used a control (Sham).

c. Treatment model for immune rejection against allogenic hepatocytes. HSVtk/Balb after GCV

administration was transplanted with PHs isolated from GFP-tg with BL/6 background (Allo model).

FK506 was intraperitoneally administered every day from the day before transplantation until the day of

sacrifice (FK-treated model). ASCs were intravenously administered three times on the day of

transplantation, 3 days and 6 days after transplantation (ASC-treated model). Allo model without

treatment was used as control. All the mice were sacrificed for analyses two weeks after transplantation.

Fig. 2. Changes of BW and ALT levels.

a. Sequential changes of BW ratios in Sham, Auto, Allo models. The BW ratio (the ratio of BW at each time

point to BW just before PH transplantation) was calculated for each week until 8 weeks after PH

transplantation. 0 w means the time point before PH transplantation. All the data are expressed as mean

± SD. *p < 0.05 (Auto vs Sham on same week), †p < 0.05 (Allo vs Auto on same week). n = 3 in each

group.

b. Sequential changes of ALT levels in Sham, Auto, Allo models. ALT levels were measured every week

from 0 to 8 weeks after PH transplantation. All the data are expressed as mean ± SD. *p < 0.05 (Auto vs

Sham on same week), †p < 0.05 (Allo vs Auto on same week). n = 3 in each group.

Fig. 3. Engraftment of transplanted PHs.

a. GFP-immunostaining in the liver of Auto model. Representative histological images of GFPimmunostained liver sections from the mice sacrificed at each time point (time after PH transplantation)

are presented. From left to right, the liver images of the mice 1, 2, 4, 8 weeks after transplantation,

respectively. 2 × objective’s scale bar: 200 µm, 20 × objective’s scale bar: 20 µm.

b. Average values (%) of hepatocyte replacement indecies (RIs). GFP-positive areas of the tissue samples

were calculated using ImageJ. All the data are expressed as mean ± SD. *p < 0.05. n = 3 in each group.

c. Hepatic GFP mRNA expression in Auto and Allo models. Hepatic mRNA expression levels were

- 17 -

measured by qRT-PCR. Expression levels of the respective mRNAs were normalized to that of GAPDH

and the data were presented as fold change compared with the average of Auto model at 1 week after

PH transplantation. All the data are expressed as mean ± SD. *p < 0.05 n = 3 in each group.

Fig. 4. Liver histology.

a. Histological analysis with H&E staining at day 0, 0 w (upper row) and each time point after PH

transplantation in Sham (second row), Auto (third row), and Allo (lower row) models. Arrowheads (↑)

indicate the apoptosis-like cells. Magnification of objective × 20 (scale bar: 20 µm).

b. Histological analysis stained with Azan at day0 (upper row), 0w(second row) and 8 weeks after

transplantation in Sham (third row), Auto (fourth row), and Allo (lower row) models. 4 × objective’s

scale bar: 200 µm, 20 × objective’s scale bar: 20 µm. The graph shows the Azan-positive area measured

by the Image J software. *p < 0.05. n = 3 in each group.

c. Histological analysis stained with PCNA at day0 (upper row), 0w(second row) and 8 weeks after

transplantation in Sham (third row), Auto (fourth row), and Allo (lower row) models. 4 × objective’s

scale bar: 200 µm, 20 × objective’s scale bar: 20 µm.

Fig. 5. Hepatic mRNA expressions.

Intrahepatic mRNA expression levels were measured by qRT-PCR. Expression levels of the respective

mRNAs were normalized to that of GAPDH. The normalized data were presented as fold change

compared with HSVtk/BL6 at day 0 for Sham and Auto models, and HSVtk/Balb at day 0 for Allo

model (* p <0.05, †p<0.05 in comparison of the values between Sham and Auto models at the same

time point) . All the items were listed in the order of upper graph, that of Sham, Auto and Allo model.

All the data are expressed as mean ± SD. n = 3~5 in each group.

a-c. The mRNA expression of inflammatory cytokines(a), cell surface lineage makers (b), growth factors

(c), fibrosis makers (d).

Fig. 6. The effect of the treatment against immue rejection.

a. Liver histology in treatment models against immune rejection. H&E (upper row) and GFP

immunostaining (lower row) of representative liver sections from each group of mice. From left to right,

Allo, FK-treated, and ASC-treated models, respectively. Magnification of objective × 20 (scale bar: 20

µm).

b. Hepatic mRNA expressions in the treatment models. Hepatic mRNA expression levels were measured by

qRT-PCR. Expression levels of the respective mRNAs were normalized to that of GAPDH, and

presented as fold change compared with HSVtk/Balb day 0 for Allo model. All the data are expressed as

mean ± SD. *p < 0.05. n = 3~5 in each group.

- 18 -

Figure1

(a)

(b)

(c)

- 19 -

Figure2

(a)

(b)

Figure3

(a)

(b)

(c)

- 20 -

Figure4

(a)

(b)

(c)

- 21 -

Figure5

(a)

(b)

(c)

(d)

- 22 -

Figure6

(a)

(b)

- 23 -

Suppl. Fig. 1. Histology analysis of GFP immunostaining in Auto 8 weeks model.

a. Histology of whole liver immunostained with GFP antibody (Auto model at 8 weeks after PH

transplantation with RI of 54.7%). Scale bar: 200 µl.

b. Histological analysis with H&E staining at 8weeks after PH transplantation in Sham (upper row), Allo

(lower row).The area enclosed by lines indicate small hepatocytes. 4× objective’s scale bar: 200 µm, 20×

objective’s scale bar: 20 µm.

Suppl. Fig. 2. Analysis of the sizes of the nuclei.

a,b. The sizes of the nuclei in the liver sections with H&E staining were analyzed by using BZ-X800 and

shown as histograms. The liver sections were observed at original magnification × 20, and five random

points were analyzed. The numbers indicate each median. a; Day 0 (left column) and 0 w (right

column). b; Sham (upper row), Auto (middle row), and Allo (lower row) models. n = 3~5 in each group.

Suppl. Fig. 3. Hepatic mRNA expression in Sham, Auto, and Allo models.

Intrahepatic mRNA expression levels were measured by qRT-PCR. Expression levels of the respective

mRNAs were normalized to that of GAPDH. In Sham and Auto model, the normalized data were

presented as fold change compared with HSVtk/BL6 at day 0 for Sham and Auto models, and

HSVtk/Balb at day 0 for Allo model (* p <0.05, †p<0.05 in comparison of the values between Sham

and Auto models at the same time point) . All the items were listed in the order of upper graph, that of

Sham, Auto and Allo model. All the data are expressed as mean ± SD. n = 3~5 in each group.

a,b: The mRNA expressions of chemokines (a) and growth factors (b).

Suppl. Fig. 4. The influence and effect of the treatment against immue rejection.

a. Sequential changes of BW rations in Allo, FK- and ASC-treated models. The Body weight ratio (the ratio

of BW just before PH transplantation) was calculated for each week until 2 weeks after PH

transplantation. n = 3~5 in each group.

b. Sequential changes of ALT levels in Allo, FK- and ASC-treated models. ALT levels were measured every

week from 0 to 2weeks after PH transplantation. n = 3~5 in each group.

c,d. Analysis of hepatocyte replacement rate in the treated models. GFP-positive areas of the tissue samples

were calculated using ImageJ and average values (%) of hepatocyte replacement indecies (RIs) were

presented (c); hepatic mRNA expression levels of GFP mRNA were measured by qRT-PCR, expression

levels of the mRNAs were normalized to that of GAPDH, and the values were presented as fold change

compared with the those of Auto model at 1week after transplantation (d). All the data are expressed as

mean ± SD. n = 3~5 in each group.

- 24 -

Suppl.Fig.1

(a)

(b)

Suppl.Fig.2

(a)

(b)

- 25 -

Suppl.Fig.3

(a)

(b)

(c)

- 26 -

Suppl.Fig.4

(a)

(c)

(b)

(d)

- 27 -

Suppl. Table 1. The combination of recipient and donor mice in each model.

Recipient

Donor

Sham

HSVtk/BL6

Auto

HSVtk/BL6

GFPtg (BL6)

Allo

HSVtk/Balb

GFPtg (BL6)

FK

HSVtk/Balb

GFPtg (BL6)

ASC

HSVtk/Balb

GFPtg (BL6)

FK model (FK506-treated Allo model) and ASC model (ASC-treated Allo model) used the same recipientdonor combination as Allo model.

Suppl. Table 2. Primers used for qRT-PCR analysis in the study.

Gene

Forward primer sequences (5'--3')

Reverse primer sequences (5'--3')

Ccl1

CAGCAAGAGCATGCTTACGG

TTGAGGCGCAGCTTTCTCTA

Ccl2

GTGCTGAAGACCTTAGGGCAGA

AGCAGCAGGTGTCCCAAAGA

Ccl3

CATGACACTCTGCAACCAAGTCTTC

GAGCAAAGGCTGCTGGTTTCA

Ccl4

GGAGCTGCTCAGTTCAACTCCA

GAGACCAGCAGTCTTTGCTCCA

Ccl5

GGCTAGGACTAGAGCAAGCAATGAC

GGAGTATTTCTACACCAGCAGCAAG

Cd3

CTGGGCAACAATGCCAAAGA

AGCCGGATATGGTGCCTATGTTTA

Cd4

CAACCTGACTCTGACTCTGGACAA

AGGTAGGTCCCATCACCTCACA

Cd8

GTACTTCAGTTCTGTCGTGCCAGTC

TCGCAGCACTGGCTTGGTA

Cd11b

CCACTCATTGTGGGCAGCTC

GGGCAGCTTCATTCATCATGTC

Cd11c

AGGTCTGCTGCTGCTGGCTA

GGTCCCGTCTGAGACAAACTG

Cd19

CAACCAGTTGGCAGGATGATG

ATGACTGGGACCGGACTGAA

Cdk2

TCCGGATCTTTCGGACTCTG

ACAAGCTCCGTCCATCTTCA

Cdk4

CCAGGCAGGCTTTTCATTCA

AGGTCCTGGAAGTATGGGTG

Cx3cl1

TCATGTGCGACAAGATGACC

GTGTCGTCTCCAGGACAATG

Cxcl1

CCGAAGTCATAGCCACACTCAA

GCAGTCTGTCTTCTTTCTCCGTTA

Cxcl2

GAAGTCATAGCCACTCTCAAGG

CCTCCTTTCCAGGTCAGTTAGC

Cxcl9

TTCCTGAGCAGTCCCAAATATCC

CTTCAGACATCTTCAGCGCACA

Cxcl10

TGTCCATCCATCGCAGCAC

ATCATCCCTGCGAGCCTATCC

Cyclind

GGGGACAACTCTTAAGTCTCAC

CCAATAAAAGACCAATCTCTC

Cyclind1

AGGCGGATGAGAACAAGCAGA

CAGGCTTGACTCCAGAAGGG

Cycline

GAGCTTGAATACCCTAGGACTG

CGTCTCTCTGTGGAGCTTATAGAC

Cytoglobin

TCTGGAGGAGATCGCCGAGGAAT

CTTCTGCCCAAAGTGCTGCCAG

Egf

AGCATACTCAGCGTCACAGC

GCAGGACCGGCACAAGTC

Egfr

CTGCCAAGGCACAAGTAACA

ATTGGGACAGCTTGGATCAC

F4/80

TCACTGTCTGCTCAACCGTC

TGCCATCAACTCATGATACCCT

- 28 -

Gapdh

TGTGTCCGTCGTGGATCTGA

TTGCTGTTGAAGTCGCAGGAG

Gfp

AACTCCAGCAGGACCATGTGAT

CACATGAAGCAGCACGACTTCT

Hgf

GGCCCACTCATTTGTGAAC

CATCCACGACCAGGAAC

Ifn-γ

CGGCACAGTCATTGAAAGCCTA

GTTGCTGATGGCCTGATTGTC

Il1α

TGGTTAAATGACCTGCAACAGGAA

AGGTCGGTCTCACTACCTGTGATG

Il1β

GAACGTCACACACCAGCAGGTTA

TCCAGGATGAGGACATGAGCAC

Il6

CCACTTCACAAGTCGGAGGCTTA

CCAGTTTGGTAGCATCCATCATTTC

Il10

GCCAGAGCCACATGCTCCTA

GATAAGGCTTGGCAACCCAAGTAA

Ly6c

TGCCTGCAACCTTGTCTGAG

GCTGGGCAGGAAGTCTCAAT

Ly6g

TTGCAAAGTCCTGTGTGCTC

GTCCAGAGTAGTGGGGCAGA

Nkp46

GACTAGGGCTCACAGAGGGACA

AAGAAGTAGGGTCGGTAGGTGC

P16

CGCAGGTTCTTGGTCACTGT

TGTTCACGAAAGCCAGAGCG

P21

CCTGGTGATGTCCGACCTG

CCATGAGCGCATCGCAATC

Procollagen1

TGGTGCCAAGGGTGATACTG

CAATGGGACCAGTCAGACCA

Sma

TGGGTGACGAAGCACAGAGC

CTTCAGGGGCAACACGAAGC

Tgfα

CTCTGCTAGCGCTGGGTATC

TGGGCACTTGTTGAAGTGAG

Tgfβ

GTGTGGAGCAACATGTGGAACTCTA

CGCTGAATCGAAAGCCCTGTA

Tnfα

TATGGCCCAGACCCTCACA

GGAGTAGACAAGGTACAACCCATC

Vegf

CTGCTGTAACGATGAAGCCCTG

GCTGTAGGAAGCTCATCTCTCC

Vegfr

GGCGGTGGTGACAGTATCTT

TCTCCGGCAAGCTCAAT

Suppl. Table 3. Sequential changes of body weight (BW) ratios and ALT levels.

a. BW ratios

0w

1w

2w

4w

8w

Sham

1.0±0.0

0.97±0.03

1.02±0.04

1.04±0.06

1.02±0.07

Auto

1.0±0.0

0.96±0.05

0.95±0.08

1.00±0.12

1.18±0.06

Allo

1.0±0.0

1.01±0.02

1.07±0.05

1.06±0.05

1.05±0.06

Treat-

FK

1.0±0.0

0.75±0.07

0.69±0.05

ment

ASC

1.0±0.0

0.91±0.06

0.88±0.14

b. ALT levels

0w

1w

2w

4w

8w

Sham

494±119

208±58

321±21

268±135

425±175

Auto

456±98

160±61

192±41

216±127

82±61

Allo

869±439

246±105

344±209

402±136

507±211

Treat-

FK

918±111

760±300

365±53

ment

ASC

660±167

319±27

237±107

- 29 -

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