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Nrf2/Keap1経路の活性化による酸化ストレスの減少が卵巣の抗加齢に及ぼす影響の検討

秋野, なな 東京大学 DOI:10.15083/0002002450

2021.10.15

概要

近年本邦において、女性の社会進出に伴い晩婚化が進行しており、今後もさらに晩婚化、少子化、出生年時齢の上昇は進行すると考えられ、これに伴い不妊に悩むカップルは増加している。
 女性は35歳を境に妊孕性が急激に低下することが知られているが、その大きな要因として酸化ストレスなどの蓄積による卵巣の加齢が挙げられる。卵巣の加齢の大きな原因となる酸化ストレスを減じることで、卵巣の加齢を遅らせることが妊孕性の温存に有用であると考え、重要な抗酸化経路であるNuclear factor-E2-related factor 2(Nrf2)/Kelch-like ECH-associated protein 1(Keap1)-antioxidant response element(ARE)に着目した。Nrf2/Keap1経路が適切に機能することで生体は酸化ストレスから防御されており、発癌や糖尿病、神経疾患との関連も近年わかってきた。
 過剰な酸化ストレスは卵巣を加齢させることで不妊に繋がる一方で、適切な量の酸化ストレスは卵胞の発育や排卵に不可欠であると考えられており、酸化ストレスのレベルを適切にマネージメントすることは有用であると考えられる。そこでNrf2/Keap1経路の活性化が酸化ストレスを減弱させ、加齢による不妊を遅らせることにつながるかを、ヒト卵巣顆粒膜細胞とマウス卵巣において以下の方法で検討した。

1. ヒト黄体化顆粒膜細胞
 体外受精の採卵時に回収した卵胞液からヒト黄体化顆粒膜細胞(GC)を単離培養し、過酸化水素またはNrf2/Keap1経路を活性化させる試薬Dimethylfumarate(DMF)により刺激した。またNrf2特異的siRNAを用いて内在性Nrf2をノックダウンした。その後、定量的RT−PCR法またはWestern blottingに供した。

2. ヒト卵巣組織免疫染色法
 免疫組織化学染色用として、子宮頸癌もしくは子宮内膜癌のため摘出された、病理学的に正常なヒト卵巣組織切片を用いた。パラフィン切片を作成し、一次抗体として抗-Nrf2抗体と抗-Keap1抗体を用いて染色した。

3. マウス採卵、卵巣、血清採取
 20週齢のBALB/c雌マウスを32週まで飼育し、DMFの卵巣への効果を調べるためにDMF群とControl群(各15匹)の2群に分け、DMF群には20㎎/kgのDMFを0.1ml、Control群には0.1%メチルセルロースを0.1ml、それぞれ32週から48週まで16週間連日経口投与した後に排卵誘発を行い、採卵、両側卵巣摘出と心臓採血を施行した。

4. マウス卵巣組織免疫染色とTUNEL染色
 3.で摘出した卵巣組織をパラフィン包埋し、組織免疫染色を行った。HE染色連続標本を用いて卵胞数を計測し、残りの切片を用いて一次抗体として抗-Nrf2抗体と抗-Human8-hydroxy-2'-desoxyguanosine(8-OHdG)抗体を用いて染色した。またアポトーシスの過程で生じる断片化DNAをTUNEL染色により検出した。

5. RNA抽出及び定量的PCR
 1. で得られたGC、及び3.で摘出したマウス卵巣からRNAを抽出し、定量的PCRを行った。ヒトNrf2、ヒトCatalase、ヒトSOD1、ヒト8-oxoguanineDNA-glycosylase1(OGG1)、マウスNrf2、マウスCatalase、マウスSOD1、マウスNAD(P)Hquinonedehydrogenase1(NQO1)の発現を評価した。

6. Western blotting
 1. で得られたGC、及び3.で摘出したマウス卵巣からタンパクを抽出し、一次抗体として抗-Nrf2、抗-Keap1、抗-Catalase、抗-SOD1、抗-OGG1、抗-NQO1、と抗-telomerase reverse transcriptase(TERT)を用いて各タンパク量を検出した。

7. 細胞蛍光免疫染色法と細胞内ROSの計測
 1. で得られたGCに対して、抗-Nrf2抗体、抗-8-OHdG抗体で反応させ、蛍光標識二次抗体で染色し共焦点顕微鏡で観察した。また、細胞内ROSをfluoroprobe carboxymethyl-H2-dichlorofluorescein diacetate(CM-H2DCFDA; Invitrogen)染色を用いて、共焦点顕微鏡で観察し蛍光強度を計測した。

8. ELISA法
 ELISA法を用いて、3.で得られたマウス血清の抗ミュラー管ホルモン(anti-mullerian hormone;AMH)とNrf2の濃度を測定した。

9. 統計学的解析
 統計学的解析はJMP Pro 11 softwareを用いて行った。データは最低限3回の実験結果の平均値及び標準誤差値で記載し、2群比較はStudent t testで、多重比較はTukey-Kramer HSD testにて解析を行い、P<0.05を有意とした。
 上記の方法により下記の結果を得られた。

1. ヒト卵巣におけるNrf2及びKeap1タンパクの発現
 組織免疫染色法を用いて様々な発育段階の卵胞を抗-Nrf2抗体と抗⁻Keap1抗体で染色した結果、各発育段階の卵胞においてGCの細胞質を中心にNrf2とKeap1タンパクの発現が確認された。

2. 酸化ストレス刺激はヒト顆粒膜細胞においてNrf2及び抗酸化物質の発現を上昇させる
 GCにおいて酸化ストレスがNrf2及び抗酸化物質の発現に及ぼす影響を検討するために、培養GC細胞に酸化ストレス刺激を与えた。過酸化水素(200µm、400µm、600µm)をそれぞれ培養液に添加して培養刺激し、定量的RT−PCR法またはWestern blottingに供した。その結果、定量的RT−PCR法において過酸化水素刺激は濃度依存性にNrf2、Catalase、SOD1、OGG1のmRNA発現を上昇させ、600µmの過酸化水素刺激では有意な上昇がみられた。Western blottingによる解析でも濃度依存性にNrf2,Catalase、SOD1、OGG1のタンパク発現量を上昇させ、Keap1はタンパク発現量の低下が観察された。

3. 内因性Nrf2のノックダウンはヒト顆粒膜細胞での抗酸化物質の発現を低下させる
 SiRNAを用いてヒトGCの内因性Nrf2をノックダウンし、定量的RT−PCR法またはWestern blottingによりNrf2、及び抗酸化物質の発現量を検討した結果、Catalase、SOD1、OGG1のmRNA発現量は有意に減少することが観察された。また、Western blottingによる解析でも内因性Nrf2のノックダウンはCatalase、SOD1、OGG1のタンパク発現量を低下させ、Keap1タンパクは発現量が上昇した。

4. Nrf2活性化剤DMFによるヒト顆粒膜細胞刺激は抗酸化物質の発現を上昇させる
 GCにDMF(50µm、100µm)を添加し、定量的RT−PCR法またはWestern blottingによりNrf2、及び抗酸化物質の発現量を検討した結果、100µmのDMF刺激はNrf2、Catalase、SOD1、OGG1のmRNA発現量を有意に上昇させ、Nrf2、Catalase、SOD1、OGG1のタンパク発現量も増加した。DMF刺激によりKeap1タンパクの発現量は低下した

5. ヒト顆粒膜細胞におけるNrf2の活性化は8-OHdG産生とROS産生を低下させる
 GCをそれぞれDMFまたは過酸化水素で刺激し、抗-Nrf2抗体または抗-8-OHdG抗体で反応させ、蛍光免疫染色法で検討を行った結果、DMF刺激を与えたGCはNrf2の蛍光強度が上昇し、8-OHdGの蛍光強度は低下し、過酸化水素刺激を与えたGCは8-OHdGの蛍光強度が上昇したことから、DMFによるNrf2の活性化は酸化ストレスの軽減に寄与することが示唆された。
 またGC内ROSをCM-H2DCFDA染色を用いて計測した結果、DMFによる刺激はControlに比べROS産生を1/3程度に有意に減少させ、反対に過酸化水素刺激はROS産生を増加させた。

6. マウスへのDMF投与は排卵数と貯蔵原始卵胞数を増加させた
 マウスへのDMF投与は、DMF群に対してControl群で有意な排卵数の増加が見られた。また、卵巣組織のHE染色でDMF群とControl群の原始卵胞、一次卵胞、二次卵胞、胞状卵胞の数をそれぞれ計測した結果、一次卵胞、二次卵胞、胞状では有意差は見られなかったが、原始卵胞では約60%多くの卵胞がDMF群で観察された。

7. DMF投与で血清中Nrf2とAMH濃度は上昇した
 マウスへのDMF投与により、ELISA法で血清中のNrf2とAMHの濃度は有意な上昇を認めた。

8. DMF投与によりNrf2は活性化し、抗酸化物質の産生は上昇した
 マウスへのDMF投与によりmRNA発現量はNrf2、Catalase、SOD1、NQO1とそれぞれ有意に上昇し、Western blottingによるタンパクの発現量もそれぞれ上昇がみられた。Keap1のタンパク発現量は反対に低下した。

9. DMF投与は卵巣組織での酸化ストレスを軽減した
 卵巣組織免疫染色でNrf2と、酸化ストレスマーカーである8-OHdGのタンパク発現量を検討した結果、DMF投与によりNrf2は発現の上昇を認め、反対に8-OHdGは発現が減少した。またTUNEL染色では、DMF投与によりTUNEL陽性細胞は減少した。

10. TelomereとTERT活性はDMF投与で上昇した
 DMF投与によるTelomereとTERTのmRNA発現量の変化を測定した結果、Telomere、TERTともにmRNAは有意に発現が上昇し、TERTのタンパク発現量も上昇を認めた。
 以上より下記のように考察された。
 女性不妊の原因として酸化ストレスの影響は大きいと広く考えられており、代表的な抗酸化経路であるNrf2/Keap1経路の活性化がヒト及びマウス卵巣において酸化ストレスを軽減するかを検討した。
 ヒト顆粒膜細胞において、Nrf2活性化剤DMFによる刺激はNrf2及び抗酸化物質の発現を上昇させ、8-OHdGとROS産生を低下させた。またマウスへのDMF経口投与は排卵数と貯蔵原始卵胞数を有意に増加させ、卵巣組織での酸化ストレスの軽減がみられた。以上より、DMFによるNrf2/Keap1経路の活性化は抗酸化物質の発現が上昇することにより酸化ストレスを減少させ、卵巣の加齢を遅らせる可能性が示された。現在、多発性硬化症の治療でDMFを経口投与されている東京大学医学部附属病院の生殖年齢にある女性患者の卵巣機能を追跡しており、今後は卵巣予備能の指標として血中のAMHやNrf2の値を測定する予定である。

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参考文献

1. 内閣府.平成29年版少子化社会対策白書.in少子化対策の現状,Vol.2018(2017).

2. 日本産科婦人科学会.不妊症の定義の変更について.Vol.2018(2015).

3. 国立社会保障・人口問題研究所.2015年社会保障・人口問題基本調査<結婚と出産に関する全国調査>第15回出生動向基本調査結果の概要.in不妊の心配経験や治療経験は増加傾向,Vol.2018(2015).

4. 日本産婦人科医会.2.不妊症の定義・分類・治療法.Vol.2018(2016).

5. Dew, J.E., Don, R.A., Hughes, G.J., Johnson, T.C. & Steigrad, S.J. The influence of advanced age on the outcome of assisted reproduction. Journal of assisted reproduction and genetics 15, 210-214 (1998).

6. ACOG Committee Opinion. Age-related fertility decline. Obstetrics and gynecology 112, 409-411 (2008).

7. Henry, L. Some data on natural fertility. Eugenics quarterly 8, 81-91 (1961).

8. Mihalas, B.P., Redgrove, K.A., McLaughlin, E.A. & Nixon, B. Molecular Mechanisms Responsible for Increased Vulnerability of the Ageing Oocyte to Oxidative Damage. Oxidative medicine and cellular longevity 2017, 4015874 (2017).

9. Karuputhula, N.B., Chattopadhyay, R., Chakravarty, B. & Chaudhury, K. Oxidative status in granulosa cells of infertile women undergoing IVF. Systems biology in reproductive medicine 59, 91-98 (2013).

10. Pasqualotto, E.B., Agarwal A, Sharma RK, Izzo VM, Pinotti JA, Joshi NJ, Rose BI. Effect of oxidative stress in follicular fluid on the outcome of assisted reproductive procedures. Fertility and sterility 81, 973-976 (2004).

11. Martin-Romero, Ortíz-de-Galisteo JR, Lara-Laranjeira J, Domínguez- Arroyo JA, González-Carrera E, Alvarez IS. Store-operated calcium entry in human oocytes and sensitivity to oxidative stress. Biology of reproduction 78, 307-315 (2008).

12. 日本産科婦人科学会.平成28年度倫理委員会登録・調査小委員会報告(2015年分の体外受精・胚移植等の臨床実施成績および2017年7月における登録施設名). Vol. 2018 (2017).

13. Brandes, M., van der Steen JO, Bokdam SB, Hamilton CJ, de Bruin JP, Nelen WL, Kremer JA. When and why do subfertile couples discontinue their fertility care? A longitudinal cohort study in a secondary care subfertility population. Human reproduction (Oxford, England) 24, 3127-3135 (2009).

14. 厚生労働省「女性の活躍推進企業データベース」.不妊治療と仕事の両立に係る諸問題についての総合的調査研究事業調査結果報告書Vol.2018(2017).

15. NPO法人Fine.「仕事と不妊治療の両立に関するアンケートPart2」.Vol. 2018 (2017).

16. Lu, M.C., Ji, J.A., Jiang, Z.Y. & You, Q.D. The Keap1-Nrf2-ARE Pathway As a Potential Preventive and Therapeutic Target: An Update. Medicinal research reviews 36, 924-963 (2016).

17. Kaspar, J.W., Niture, S.K. & Jaiswal, A.K. Nrf2:INrf2 (Keap1) signaling in oxidative stress. Free radical biology & medicine 47, 1304-1309 (2009).

18. Chen, B., Lu, Y., Chen, Y. & Cheng, J. The role of Nrf2 in oxidative stress-induced endothelial injuries. The Journal of endocrinology 225, R83-99 (2015).

19. McMahon, M., Itoh, K., Yamamoto, M. & Hayes, J.D. Keap1-dependent proteasomal degradation of transcription factor Nrf2 contributes to the negative regulation of antioxidant response element-driven gene expression. The Journal of biological chemistry 278, 21592- 21600 (2003).

20. Singh, B., Chatterjee, A., Ronghe, A.M., Bhat, N.K. & Bhat, H.K. Antioxidant-mediated up-regulation of OGG1 via NRF2 induction is associated with inhibition of oxidative DNA damage in estrogen- induced breast cancer. BMC cancer 13, 253 (2013).

21. Fahey, J.W., Haristoy X, Dolan PM, Kensler TW, Scholtus I, Stephenson KK, Talalay P, Lozniewski A. Sulforaphane inhibits extracellular, intracellular, and antibiotic-resistant strains of Helicobacter pylori and prevents benzo[a]pyrene-induced stomach tumors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 99, 7610-7615 (2002).

22. Uruno, A., Furusawa Y, Yagishita Y, Fukutomi T, Muramatsu H, Negishi T, Sugawara A, Kensler TW, Yamamoto M. The Keap1-Nrf2 system prevents onset of diabetes mellitus. Molecular and cellular biology 33, 2996-3010 (2013).

23. Chen, P.C., Vargas MR, Pani AK, Smeyne RJ, Johnson DA, Kan YW, Johnson JA. Nrf2-mediated neuroprotection in the MPTP mouse model of Parkinson's disease: Critical role for the astrocyte. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 106, 2933-2938 (2009).

24. W., S. Heilung von Psoriasis. Med. Monatsschr 13, 103-104 (1959).

25. Atwan, A., Ingram JR, Abbott R, Kelson MJ, Pickles T, Bauer A, Piguet V. Oral fumaric acid esters for psoriasis. The Cochrane database of systematic reviews, Cd010497 (2015).

26. <Age-associated telomere shortening in mouse oocytes.pdf>.

27. Lee, D.H., Gold, R. & Linker, R.A. Mechanisms of oxidative damage in multiple sclerosis and neurodegenerative diseases: therapeutic modulation via fumaric acid esters. International journal of molecular sciences 13, 11783-11803 (2012).

28. Tanaka, M. & Shimizu, Y. [Dimethyl Fumarate in Multiple Sclerosis]. Brain and nerve = Shinkei kenkyu no shinpo 69, 1041-1046 (2017).

29. Shkolnik, K., Tadmor A, Ben-Dor S, Nevo N, Galiani D, Dekel N. Reactive oxygen species are indispensable in ovulation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 108, 1462-1467 (2011).

30. Yoshino, O., Osuga Y, Koga K, Hirota Y, Yano T, Tsutsumi O, Fujimoto A, Kugu K, Momoeda M, Fujiwara T, Taketani Y. Upregulation of interleukin-8 by hypoxia in human ovaries. American journal of reproductive immunology (New York, N.Y. : 1989) 50, 286-290 (2003).

31. Takahashi, N., Harada M, Hirota Y, Zhao L, Azhary JM, Yoshino O, Izumi G, Hirata T, Koga K, Wada-Hiraike O, Fujii T, Osuga Y. A potential role for endoplasmic reticulum stress in progesterone deficiency in obese women. Endocrinology, en20161511 (2016).

32. Saatcioglu, H.D., Cuevas, I. & Castrillon, D.H. Control of Oocyte Reawakening by Kit. PLoS genetics 12, e1006215 (2016).

33. Lim, J., Lawson GW, Nakamura BN, Ortiz L, Hur JA, Kavanagh TJ, Luderer U. Glutathione-deficient mice have increased sensitivity to transplacental benzo[a]pyrene-induced premature ovarian failure and ovarian tumorigenesis. Cancer research 73, 908-917 (2013).

34. Mishra, B., Ortiz, L. & Luderer, U. Charged iron particles, components of space radiation, destroy ovarian follicles. Human reproduction (Oxford, England) 31, 1816-1826 (2016).

35. Kasai, H., Hayami, H., Yamaizumi, Z., SaitoH & Nishimura, S. Detection and identification of mutagens and carcinogens as their adducts with guanosine derivatives. Nucleic acids research 12, 2127-2136 (1984).

36. Isono, W., Wada-Hiraike O, Kawamura Y, Fujii T, Osuga Y, Kurihara H. Administration of Oral Contraceptives Could Alleviate Age- Related Fertility Decline Possibly by Preventing Ovarian Damage in a Mouse Model. Reproductive sciences (Thousand Oaks, Calif.), 1933719117746758 (2017).

37. Seifer, D.B., MacLaughlin, D.T., Christian, B.P., Feng, B. & Shelden, R.M. Early follicular serum mullerian-inhibiting substance levels are associated with ovarian response during assisted reproductive technology cycles. Fertility and sterility 77, 468-471 (2002).

38. Ha, C.M., Park S, Choi YK, Jeong JY, Oh CJ, Bae KH, Lee SJ, Kim JH, Park KG, Jun do Y, Lee IK. Activation of Nrf2 by dimethyl fumarate improves vascular calcification. Vascular pharmacology 63, 29-36 (2014).

39. Liu, Y., Qiu J, Wang Z, You W, Wu L, Ji C, Chen G. Dimethylfumarate alleviates early brain injury and secondary cognitive deficits after experimental subarachnoid hemorrhage via activation of Keap1-Nrf2-ARE system. Journal of neurosurgery 123, 915-923 (2015).

40. Lastres-Becker, I., García-Yagüe AJ, Scannevin RH, Casarejos MJ, Kügler S, Rábano A, Cuadrado A. Repurposing the NRF2 Activator Dimethyl Fumarate as Therapy Against Synucleinopathy in Parkinson's Disease. Antioxidants & redox signaling 25, 61-77 (2016).

41. バイオジェンジャパン. 多発性硬化症治療薬テクフィデラ医薬品インタビューフォーム. Vol. 2018 (2017).

42. Itoh, K., Wakabayashi N, Katoh Y, Ishii T, Igarashi K, Engel JD, Yamamoto M. Keap1 represses nuclear activation of antioxidant responsive elements by Nrf2 through binding to the amino-terminal Neh2 domain. Genes & development 13, 76-86 (1999).

43. van der Wijst, M.G., Brown, R. & Rots, M.G. Nrf2, the master redox switch: the Achilles' heel of ovarian cancer? Biochimica et biophysica acta 1846, 494-509 (2014).

44. Wang, X.J., Hayes, J.D. & Wolf, C.R. Generation of a stable antioxidant response element-driven reporter gene cell line and its use to show redox-dependent activation of nrf2 by cancer chemotherapeutic agents. Cancer research 66, 10983-10994 (2006).

45. Cho, J.M., Manandhar, S., Lee, H.R., Park, H.M. & Kwak, M.K. Role of the Nrf2-antioxidant system in cytotoxicity mediated by anticancer cisplatin: implication to cancer cell resistance. Cancer letters 260, 96-108 (2008).

46. Grossman, R. & Ram, Z. The dark side of Nrf2. World neurosurgery 80, 284-286 (2013).

47. Marchan, R. & Bolt, H.M. The cytoprotective and the dark side of Nrf2. Archives of toxicology 87, 2047-2050 (2013).

48. Wang, X.J., Sun Z, Villeneuve NF, Zhang S, Zhao F, Li Y, Chen W, Yi X, Zheng W, Wondrak GT, Wong PK, Zhang DD. Nrf2 enhances resistance of cancer cells to chemotherapeutic drugs, the dark side of Nrf2. Carcinogenesis 29, 1235-1243 (2008).

49. Habib, S.L., Yadav, A., Kidane, D., Weiss, R.H. & Liang, S. Novel protective mechanism of reducing renal cell damage in diabetes: Activation AMPK by AICAR increased NRF2/OGG1 proteins and reduced oxidative DNA damage. Cell cycle (Georgetown, Tex.) 15, 3048-3059 (2016).

50. Liu, M., Yin Y, Ye X, Zeng M, Zhao Q, Keefe DL, Liu L. Resveratrol protects against age-associated infertility in mice. Human reproduction (Oxford, England) 28, 707-717 (2013).

51. Baerwald, A.R., Adams, G.P. & Pierson, R.A. Ovarian antral folliculogenesis during the human menstrual cycle: a review. Human reproduction update 18, 73-91 (2012).

52. Oktem, O. & Urman, B. Understanding follicle growth in vivo. Human reproduction (Oxford, England) 25, 2944-2954 (2010).

53. Guzel, Y. & Oktem, O. Understanding follicle growth in vitro: Are we getting closer to obtaining mature oocytes from in vitro-grown follicles in human? Molecular reproduction and development 84, 544-559 (2017).

54. Depmann, M., Faddy MJ, van der Schouw YT, Peeters PH, Broer SL, Kelsey TW, Nelson SM, Broekmans FJ. The Relationship Between Variation in Size of the Primordial Follicle Pool and Age at Natural Menopause. The Journal of clinical endocrinology and metabolism 100, E845-851 (2015).

55. Findlay, J.K., Hutt, K.J., Hickey, M. & Anderson, R.A. How Is the Number of Primordial Follicles in the Ovarian Reserve Established? Biology of reproduction 93, 111 (2015).

56. Cate, R.L., Mattaliano RJ, Hession C, Tizard R, Farber NM, Cheung A, Ninfa EG, Frey AZ, Gash DJ, Chow EP. Isolation of the bovine and human genes for Mullerian inhibiting substance and expression of the human gene in animal cells. Cell 45, 685-698 (1986).

57. de Vet, A., Laven, J.S., de Jong, F.H., Themmen, A.P. & Fauser, B.C. Antimullerian hormone serum levels: a putative marker for ovarian aging. Fertility and sterility 77, 357-362 (2002).

58. Hayflick, L. & Moorhead, P.S. The serial cultivation of human diploid cell strains. Experimental cell research 25, 585-621 (1961).

59. Blackburn, E.H. Structure and function of telomeres. Nature 350, 569-573 (1991).

60. Olovnikov, A.M. A theory of marginotomy. The incomplete copying of template margin in enzymic synthesis of polynucleotides and biological significance of the phenomenon. Journal of theoretical biology 41, 181-190 (1973).

61. Liu, L., Blasco, M., Trimarchi, J. & Keefe, D. An essential role for functional telomeres in mouse germ cells during fertilization and early development. Developmental biology 249, 74-84 (2002).

62. Schaetzlein, S., Lucas-Hahn A, Lemme E, Kues WA, Dorsch M, Manns MP, Niemann H, Rudolph KL. Telomere length is reset during early mammalian embryogenesis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 101, 8034-8038 (2004).

63. Kalmbach, K.H., Fontes Antunes DM, Dracxler RC, Knier TW, Seth- Smith ML, Wang F, Liu L, Keefe DL. Telomeres and human reproduction. Fertility and sterility 99, 23-29 (2013).

64. Huang, J., Okuka, M., McLean, M., Keefe, D.L. & Liu, L. Telomere susceptibility to cigarette smoke-induced oxidative damage and chromosomal instability of mouse embryos in vitro. Free radical biology & medicine 48, 1663-1676 (2010).

65. Keefe, D.L. & Liu, L. Telomeres and reproductive aging. Reproduction, fertility, and development 21, 10-14 (2009).

66. Ling, X., Yang W, Zou P, Zhang G, Wang Z, Zhang X, Chen H, Peng K, Han F, Liu J, Cao J, Ao L. TERT regulates telomere-related senescence and apoptosis through DNA damage response in male germ cells exposed to BPDE in vitro and to B[a]P in vivo. Environmental pollution (Barking, Essex : 1987) 235, 836-849 (2018).

67. Sahin, E., Colla S, Liesa M, Moslehi J, Müller FL, Guo M, Cooper M, Kotton D, Fabian AJ, Walkey C, Maser RS, Tonon G, Foerster F, Xiong R, Wang YA, Shukla SA, Jaskelioff M, Martin ES, Heffernan TP, Protopopov A, Ivanova E, Mahoney JE, Kost-Alimova M, Perry SR, Bronson R, Liao R, Mulligan R, Shirihai OS, Chin L, DePinho RA. Telomere dysfunction induces metabolic and mitochondrial compromise. Nature 470, 359-365 (2011).

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