リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

大学・研究所にある論文を検索できる 「ラッサウイルスの感染を阻害する新たな化合物の同定」の論文概要。リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。
リケラボ

コピーが完了しました

URLをコピーしました

論文の公開元へ論文の公開元へ
書き出し

ラッサウイルスの感染を阻害する新たな化合物の同定

武長, 徹 京都大学 DOI:10.14989/doctor.k23620

2022.01.24

概要

アレナウイルス科の哺乳類アレナウイルス属に分類されるラッサウイルスは、齧歯類を自然宿主とし、ヒトにラッサ熱を引き起こす。ラッサ熱は主に西アフリカで流行を繰り返し、毎年30万人が罹患、5千人が死亡している。ラッサウイルスの取扱いはその高い病原性のため、バイオセーフティレベル4（BSL-4）施設にのみ制限される。そのため、ラッサウイルスに関する研究は不十分であり、承認された抗ラッサウイルス薬は未だ存在しない。本研究では、抗ラッサウイルス薬開発に資することを目指し、京都大学が保有する機能既知の低分子化合物ライブラリーのスクリーニングを実施した。

ラッサウイルスの糖タンパク質（LASV-GP）を組み込んだリコンビナント水疱性口内炎ウイルス（VSV-LASVGP）や哺乳類アレナウイルスのプロトタイプウイルスであるリンパ球性脈絡髄膜炎ウイルス（LCMV）をVero細胞に感染させ、細胞変性効果やウイルス力価を指標にスクリーニングを実施した。その結果、ABCトランスポーターであるP-glycoprotein（P-gp）の特異的阻害薬として知られるCP100356塩酸塩（CP100356）を同定した。CP100356はVSV-LASVGPおよびLCMVの増殖を抑制し、IC50はそれぞれ0.52、0.54 µMであった。一方で、 野生型の水疱性口内炎ウイルスの増殖抑制は限定的で、IC50は3.6 µMであった。さらにBSL-4においてラッサウイルスに対する抗ウイルス効果を確認したところ、CP100356はウイルス増殖を強く抑制し、そのIC50は0.062µMであった。これらの結果から、CP100356はラッサウイルスおよびLCMVの細胞侵入を阻害すると考えられた。

CP100356のラッサウイルス侵入阻害機構を解析したところ、CP100356はVSV-LASVGPやLCMVの細胞への吸着は阻害しなかったが、LASV-GPおよびLCMVの糖タンパク質GPが示す低pH依存的な膜融合能を阻害した。一方で、RNAサイレンシングによるP-gpの発現抑制および他のP-gp阻害剤であるTariquidarがVSV-LASVGPおよびLCMVの増殖を抑制しなかったことから、P-gpの機能は哺乳類アレナウイルスの細胞侵入に関与しないと考えられた。

最後に、CP100356が哺乳類アレナウイルスに対して幅広い抗ウイルス効果を示すか明らかにするため、南米出血熱の原因ウイルスであるフニンウイルス、マチュポウイルスおよびサビアウイルス、哺乳類アレナウイルスにおいては例外的にコウモリを自然宿主とするタカリベウイルスの糖タンパク質GPを持つシュードタイプウイルスを作製し、それぞれに対する細胞侵入阻害効果を確認した。その結果、CP100356はこれらのシュードタイプウイルスに対して強い侵入阻害効果を示した。以上の結果から、CP100356はさまざまな哺乳類アレナウイルスに対して有効な、汎抗アレナウイルス薬開発の候補化合物になると考えられた。

論文の公開元へ

関連論文

関連論文をもっと見る

参考文献

1. Buckley, S.M.; Casals, J.; Downs, W.G. Isolation and Antigenic Characterization of Lassa Virus. Nature 1970, 227, 174–174, doi:10.1038/227174a0.

2. Bonthius, D.J. Lymphocytic Choriomeningitis Virus: An Underrecognized Cause of Neurologic Disease in the Fetus, Child, and Adult. Semin Pediatr Neurol 2012, 19, 89–95, doi:10.1016/j.spen.2012.02.002.

3. Al-Zein, N.; Boyce, T.G.; Correa, A.G.; Rodriguez, V. Meningitis Caused by Lymphocytic Choriomeningitis Virus in a Patient with Leukemia. J Pediatr Hematol Oncol 2008, 30, 781–784, doi:10.1097/MPH.0b013e318182e72b.

4. Sarute, N.; Ross, S.R. New World Arenavirus Biology. Annu. Rev. Virol. 2017, 4, 141–158, doi:10.1146/annurev-virology-101416-042001.

5. Khan, S.H.; Goba, A.; Chu, M.; Roth, C.; Healing, T.; Marx, A.; Fair, J.; Guttieri, M.C.; Ferro, P.; Imes, T.; et al. New Opportunities for Field Research on the Pathogenesis and Treatment of Lassa Fever. Antiviral Research 2008, 78, 103– 115, doi:10.1016/j.antiviral.2007.11.003.

6. Kofman, A.; Choi, M.J.; Rollin, P.E. Lassa Fever in Travelers from West Africa, 1969–2016. Emerg Infect Dis 2019, 25, 236–239, doi:10.3201/eid2502.180836.

7. Fisher-Hoch, S.P.; Tomori, O.; Nasidi, A.; Perez-Oronoz, G.I.; Fakile, Y.; Hutwagner, L.; McCormick, J.B. Review of Cases of Nosocomial Lassa Fever in Nigeria: The High Price of Poor Medical Practice. BMJ 1995, 311, 857–859, doi:10.1136/bmj.311.7009.857.

8. Walls, B. Lassa Fever and Pregnancy. Midwives Chron 1985, 1168, 136–138.

9. ウイルス性出血熱への行政対応の手引き第二版平成 29 年 6 月 厚生労働 省健康局結核感染症課.

10. Virus Metadata Repository: Version May 18, 2021; MSL36 Available online: https://talk.ictvonline.org/taxonomy/vmr/m/vmr-file-repository/12323 (accessed on 28 October 2021).

11. Tamura, K.; Stecher, G.; Kumar, S. MEGA11: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 11. Molecular Biology and Evolution 2021, 38, 3022–3027, doi:10.1093/molbev/msab120.

12. Bowen, M.D.; Peters, C.J.; Nichol, S.T. Phylogenetic Analysis of TheArenaviridae:Patterns of Virus Evolution and Evidence for Cospeciation between Arenaviruses and Their Rodent Hosts. Molecular Phylogenetics and Evolution 1997, 8, 301–316, doi:10.1006/mpev.1997.0436.

13. Downs, W.G.; Anderson, C.R.; Spence, L.; Aitken, T.H.G.; Greenhall, A.H. Tacaribe Virus, a New Agent Isolated from Artibeus Bats and Mosquitoes in Trinidad, West Indies. Am J Trop Med Hyg 1963, 12, 640–646, doi:10.4269/ajtmh.1963.12.640.

14. Sayler, K.A.; Barbet, A.F.; Chamberlain, C.; Clapp, W.L.; Alleman, R.; Loeb, J.C.; Lednicky, J.A. Isolation of Tacaribe Virus, a Caribbean Arenavirus, from HostSeeking Amblyomma Americanum Ticks in Florida. PLoS One 2014, 9, e115769, doi:10.1371/journal.pone.0115769.

15. Carballal, G.; Calello, M.A.; Laguens, R.P.; Weissenbacher, M.C. Tacaribe Virus: A New Alternative for Argentine Hemorrhagic Fever Vaccine. J Med Virol 1987, 23, 257–263, doi:10.1002/jmv.1890230308.

16. Ye, C.; de la Torre, J.C.; Martínez-Sobrido, L. Development of Reverse Genetics for the Prototype New World Mammarenavirus Tacaribe Virus. J Virol 2020, 94, e01014-20, doi:10.1128/JVI.01014-20.

17. Andersen, K.G.; Shapiro, B.J.; Matranga, C.B.; Sealfon, R.; Lin, A.E.; Moses, L.M.; Folarin, O.A.; Goba, A.; Odia, I.; Ehiane, P.E.; et al. Clinical Sequencing Uncovers Origins and Evolution of Lassa Virus. Cell 2015, 162, 738–750, doi:10.1016/j.cell.2015.07.020.

18. Bowen, M.D.; Rollin, P.E.; Ksiazek, T.G.; Hustad, H.L.; Bausch, D.G.; Demby, A.H.; Bajani, M.D.; Peters, C.J.; Nichol, S.T. Genetic Diversity among Lassa Virus Strains. Journal of Virology 2000, 74, 6992–7004, doi:10.1128/JVI.74.15.6992-7004.2000.

19. Ehichioya, D.U.; Hass, M.; Becker-Ziaja, B.; Ehimuan, J.; Asogun, D.A.; FichetCalvet, E.; Kleinsteuber, K.; Lelke, M.; ter Meulen, J.; Akpede, G.O.; et al. Current Molecular Epidemiology of Lassa Virus in Nigeria▿. J Clin Microbiol 2011, 49, 1157–1161, doi:10.1128/JCM.01891-10.

20. Garnett, L.E.; Strong, J.E. Lassa Fever: With 50 Years of Study, Hundreds of Thousands of Patients and an Extremely High Disease Burden, What Have We Learned? Current Opinion in Virology 2019, 37, 123–131, doi:10.1016/j.coviro.2019.07.009.

21. Whitmer, S.L.M.; Strecker, T.; Cadar, D.; Dienes, H.-P.; Faber, K.; Patel, K.; Brown, S.M.; Davis, W.G.; Klena, J.D.; Rollin, P.E.; et al. New Lineage of Lassa Virus, Togo, 2016. Emerg Infect Dis 2018, 24, 599–602, doi:10.3201/eid2403.171905.

22. Olayemi, A.; Cadar, D.; Magassouba, N.; Obadare, A.; Kourouma, F.; Oyeyiola, A.; Fasogbon, S.; Igbokwe, J.; Rieger, T.; Bockholt, S.; et al. New Hosts of The Lassa Virus. Scientific Reports 2016, 6, 25280, doi:10.1038/srep25280.

23. Fernandes, J.; Guterres, A.; de Oliveira, R.C.; Chamberlain, J.; Lewandowski, K.; Teixeira, B.R.; Coelho, T.A.; Crisóstomo, C.F.; Bonvicino, C.R.; D’Andrea, P.S.; et al. Xapuri Virus, a Novel Mammarenavirus: Natural Reassortment and Increased Diversity between New World Viruses. Emerg Microbes Infect 2018, 7, 120, doi:10.1038/s41426-018-0119-9.

24. Fernandes, J.; Guterres, A.; de Oliveira, R.C.; Jardim, R.; Dávila, A.M.R.; Hewson, R.; de Lemos, E.R.S. Aporé Virus, a Novel Mammarenavirus (Bunyavirales: Arenaviridae) Related to Highly Pathogenic Virus from South America. Mem Inst Oswaldo Cruz 2019, 114, e180586, doi:10.1590/0074- 02760180586.

25. Moreno, H.; Rastrojo, A.; Pryce, R.; Fedeli, C.; Zimmer, G.; Bowden, T.A.; Gerold, G.; Kunz, S. A Novel Circulating Tamiami Mammarenavirus Shows Potential for Zoonotic Spillover. PLoS Negl Trop Dis 2020, 14, e0009004, doi:10.1371/journal.pntd.0009004.

26. Rowe, W.P.; Murphy, F.A.; Bergold, G.H.; Casals, J.; Hotchin, J.; Johnson, K.M.; Lehmann-Grube, F.; Mims, C.A.; Traub, E.; Webb, P.A. Arenoviruses: Proposed Name for a Newly Defined Virus Group. J Virol 1970, 5, 651–652, doi:10.1128/JVI.5.5.651-652.1970.

27. Cao, W.; Henry, M.D.; Borrow, P.; Yamada, H.; Elder, J.H.; Ravkov, E.V.; Nichol, S.T.; Compans, R.W.; Campbell, K.P.; Oldstone, M.B. Identification of Alpha-Dystroglycan as a Receptor for Lymphocytic Choriomeningitis Virus and Lassa Fever Virus. Science 1998, 282, 2079–2081, doi:10.1126/science.282.5396.2079.

28. Spiropoulou, C.F.; Kunz, S.; Rollin, P.E.; Campbell, K.P.; Oldstone, M.B.A. New World Arenavirus Clade C, but Not Clade A and B Viruses, Utilizes AlphaDystroglycan as Its Major Receptor. J Virol 2002, 76, 5140–5146, doi:10.1128/jvi.76.10.5140-5146.2002.

29. Barresi, R.; Campbell, K.P. Dystroglycan: From Biosynthesis to Pathogenesis of Human Disease. J Cell Sci 2006, 119, 199–207, doi:10.1242/jcs.02814.

30. Ibraghimov-Beskrovnaya, O.; Ervasti, J.M.; Leveille, C.J.; Slaughter, C.A.; Sernett, S.W.; Campbell, K.P. Primary Structure of Dystrophin-Associated Glycoproteins Linking Dystrophin to the Extracellular Matrix. Nature 1992, 355, 696–702, doi:10.1038/355696a0.

31. Kanagawa, M.; Saito, F.; Kunz, S.; Yoshida-Moriguchi, T.; Barresi, R.; Kobayashi, Y.M.; Muschler, J.; Dumanski, J.P.; Michele, D.E.; Oldstone, M.B.A.; et al. Molecular Recognition by LARGE Is Essential for Expression of Functional Dystroglycan. Cell 2004, 117, 953–964, doi:10.1016/j.cell.2004.06.003.

32. Kunz, S.; Rojek, J.M.; Kanagawa, M.; Spiropoulou, C.F.; Barresi, R.; Campbell, K.P.; Oldstone, M.B.A. Posttranslational Modification of Alpha-Dystroglycan, the Cellular Receptor for Arenaviruses, by the Glycosyltransferase LARGE Is Critical for Virus Binding. J Virol 2005, 79, 14282–14296, doi:10.1128/JVI.79.22.14282- 14296.2005.

33. Rojek, J.M.; Spiropoulou, C.F.; Campbell, K.P.; Kunz, S. Old World and Clade C New World Arenaviruses Mimic the Molecular Mechanism of Receptor Recognition Used by Alpha-Dystroglycan’s Host-Derived Ligands. J Virol 2007, 81, 5685–5695, doi:10.1128/JVI.02574-06.

34. Sabeti, P.C.; Varilly, P.; Fry, B.; Lohmueller, J.; Hostetter, E.; Cotsapas, C.; Xie, X.; Byrne, E.H.; McCarroll, S.A.; Gaudet, R.; et al. Genome-Wide Detection and Characterization of Positive Selection in Human Populations. Nature 2007, 449, 913–918, doi:10.1038/nature06250.

35. Shimojima, M.; Ströher, U.; Ebihara, H.; Feldmann, H.; Kawaoka, Y. Identification of Cell Surface Molecules Involved in Dystroglycan-Independent Lassa Virus Cell Entry. J Virol 2012, 86, 2067–2078, doi:10.1128/JVI.06451-11.

36. Shimojima, M.; Kawaoka, Y. Cell Surface Molecules Involved in Infection Mediated by Lymphocytic Choriomeningitis Virus Glycoprotein. J Vet Med Sci 2012, 74, 1363–1366, doi:10.1292/jvms.12-0176.

37. Goncalves, A.-R.; Moraz, M.-L.; Pasquato, A.; Helenius, A.; Lozach, P.-Y.; Kunz, S. Role of DC-SIGN in Lassa Virus Entry into Human Dendritic Cells. J Virol 2013, 87, 11504–11515, doi:10.1128/JVI.01893-13.

38. Flanagan, M.L.; Oldenburg, J.; Reignier, T.; Holt, N.; Hamilton, G.A.; Martin, V.K.; Cannon, P.M. New World Clade B Arenaviruses Can Use Transferrin Receptor 1 (TfR1)-Dependent and -Independent Entry Pathways, and Glycoproteins from Human Pathogenic Strains Are Associated with the Use of TfR1. J Virol 2008, 82, 938–948, doi:10.1128/JVI.01397-07.

39. Oppliger, J.; Torriani, G.; Herrador, A.; Kunz, S. Lassa Virus Cell Entry via Dystroglycan Involves an Unusual Pathway of Macropinocytosis. J Virol 2016, 90, 6412–6429, doi:10.1128/JVI.00257-16.

40. Li, S.; Sun, Z.; Pryce, R.; Parsy, M.-L.; Fehling, S.K.; Schlie, K.; Siebert, C.A.; Garten, W.; Bowden, T.A.; Strecker, T.; et al. Acidic PH-Induced Conformations and LAMP1 Binding of the Lassa Virus Glycoprotein Spike. PLoS Pathog 2016, 12, e1005418, doi:10.1371/journal.ppat.1005418.

41. Jae, L.T.; Raaben, M.; Herbert, A.S.; Kuehne, A.I.; Wirchnianski, A.S.; Soh, T.K.; Stubbs, S.H.; Janssen, H.; Damme, M.; Saftig, P.; et al. Virus Entry. Lassa Virus Entry Requires a Trigger-Induced Receptor Switch. Science 2014, 344, 1506– 1510, doi:10.1126/science.1252480.

42. Cohen-Dvashi, H.; Cohen, N.; Israeli, H.; Diskin, R. Molecular Mechanism for LAMP1 Recognition by Lassa Virus. J Virol 2015, 89, 7584–7592, doi:10.1128/JVI.00651-15.

43. Hulseberg, C.E.; Fénéant, L.; Szymańska, K.M.; White, J.M. Lamp1 Increases the Efficiency of Lassa Virus Infection by Promoting Fusion in Less Acidic Endosomal Compartments. mBio 2018, doi:10.1128/mBio.01818-17.

44. Markosyan, R.M.; Marin, M.; Zhang, Y.; Cohen, F.S.; Melikyan, G.B. The Late Endosome-Resident Lipid Bis(Monoacylglycero)Phosphate Is a Cofactor for Lassa Virus Fusion. PLoS Pathog 2021, 17, e1009488, doi:10.1371/journal.ppat.1009488.

45. Nunberg, J.H.; York, J. The Curious Case of Arenavirus Entry, and Its Inhibition. Viruses 2012, 4, 83–101, doi:10.3390/v4010083.

46. Eschli, B.; Quirin, K.; Wepf, A.; Weber, J.; Zinkernagel, R.; Hengartner, H. Identification of an N-Terminal Trimeric Coiled-Coil Core within Arenavirus Glycoprotein 2 Permits Assignment to Class I Viral Fusion Proteins. J Virol 2006, 80, 5897–5907, doi:10.1128/JVI.00008-06.

47. Igonet, S.; Vaney, M.-C.; Vonrhein, C.; Vonhrein, C.; Bricogne, G.; Stura, E.A.; Hengartner, H.; Eschli, B.; Rey, F.A. X-Ray Structure of the Arenavirus Glycoprotein GP2 in Its Postfusion Hairpin Conformation. Proc Natl Acad Sci U S A 2011, 108, 19967–19972, doi:10.1073/pnas.1108910108.

48. Shulman, A.; Katz, M.; Cohen-Dvashi, H.; Greenblatt, H.M.; Levy, Y.; Diskin, R. Variations in Core Packing of GP2 from Old World Mammarenaviruses in Their Post-Fusion Conformations Affect Membrane-Fusion Efficiencies. J Mol Biol 2019, 431, 2095–2111, doi:10.1016/j.jmb.2019.04.012.

49. Harrison, S.C. Viral Membrane Fusion. Nat Struct Mol Biol 2008, 15, 690–698, doi:10.1038/nsmb.1456.

50. McCormick, J.B.; King, I.J.; Webb, P.A.; Scribner, C.L.; Craven, R.B.; Johnson, K.M.; Elliott, L.H.; Belmont-Williams, R. Lassa Fever. Effective Therapy with Ribavirin. N Engl J Med 1986, 314, 20–26, doi:10.1056/NEJM198601023140104.

51. Salam, A.P.; Cheng, V.; Edwards, T.; Olliaro, P.; Sterne, J.; Horby, P. Time to Reconsider the Role of Ribavirin in Lassa Fever. PLoS Negl Trop Dis 2021, 15, e0009522, doi:10.1371/journal.pntd.0009522.

52. Eberhardt, K.A.; Mischlinger, J.; Jordan, S.; Groger, M.; Günther, S.; Ramharter, M. Ribavirin for the Treatment of Lassa Fever: A Systematic Review and MetaAnalysis. Int J Infect Dis 2019, 87, 15–20, doi:10.1016/j.ijid.2019.07.015.

53. Oral Ribavirin Treatment of Influenza A and B. | Antimicrobial Agents and Chemotherapy Available online: https://aac.asm.org/content/31/8/1285 (accessed on 1 April 2021).

54. Larson, R.A.; Dai, D.; Hosack, V.T.; Tan, Y.; Bolken, T.C.; Hruby, D.E.; Amberg, S.M. Identification of a Broad-Spectrum Arenavirus Entry Inhibitor. Journal of Virology 2008, 82, 10768–10775, doi:10.1128/JVI.00941-08.

55. Madu, I.G.; Files, M.; Gharaibeh, D.N.; Moore, A.L.; Jung, K.-H.; Gowen, B.B.; Dai, D.; Jones, K.F.; Tyavanagimatt, S.R.; Burgeson, J.R.; et al. A Potent Lassa Virus Antiviral Targets an Arenavirus Virulence Determinant. PLOS Pathogens 2018, 14, e1007439, doi:10.1371/journal.ppat.1007439.

56. Oestereich, L.; Rieger, T.; Lüdtke, A.; Ruibal, P.; Wurr, S.; Pallasch, E.; Bockholt, S.; Krasemann, S.; Muñoz-Fontela, C.; Günther, S. Efficacy of Favipiravir Alone and in Combination With Ribavirin in a Lethal, Immunocompetent Mouse Model of Lassa Fever. J Infect Dis 2016, 213, 934–938, doi:10.1093/infdis/jiv522.

57. Urata, S.; Yun, N.; Pasquato, A.; Paessler, S.; Kunz, S.; Torre, J.C. de la Antiviral Activity of a Small-Molecule Inhibitor of Arenavirus Glycoprotein Processing by the Cellular Site 1 Protease. Journal of Virology 2011, 85, 795–803, doi:10.1128/JVI.02019-10.

58. Pasquato, A.; Rochat, C.; Burri, D.J.; Pasqual, G.; la Torre, J.C. de; Kunz, S. Evaluation of the Anti-Arenaviral Activity of the Subtilisin Kexin Isozyme-1/Site1 Protease Inhibitor PF-429242. Virology 2012, 423, 14–22, doi:10.1016/j.virol.2011.11.008.

59. Zhang, X.; Tang, K.; Guo, Y. The Antifungal Isavuconazole Inhibits the Entry of Lassa Virus by Targeting the Stable Signal Peptide-GP2 Subunit Interface of Lassa Virus Glycoprotein. Antiviral Res 2020, 174, 104701, doi:10.1016/j.antiviral.2019.104701.

60. Zhang, X.; Yan, F.; Tang, K.; Chen, Q.; Guo, J.; Zhu, W.; He, S.; Banadyga, L.; Qiu, X.; Guo, Y. Identification of a Clinical Compound Losmapimod That Blocks Lassa Virus Entry. Antiviral Research 2019, 167, 68–77, doi:10.1016/j.antiviral.2019.03.014.

61. Wang, P.; Liu, Y.; Zhang, G.; Wang, S.; Guo, J.; Cao, J.; Jia, X.; Zhang, L.; Xiao, G.; Wang, W. Screening and Identification of Lassa Virus Entry Inhibitors from an FDA-Approved Drug Library. Journal of Virology 2018, 92, doi:10.1128/JVI.00954-18.

62. Garbutt, M.; Liebscher, R.; Wahl-Jensen, V.; Jones, S.; Möller, P.; Wagner, R.; Volchkov, V.; Klenk, H.-D.; Feldmann, H.; Ströher, U. Properties of ReplicationCompetent Vesicular Stomatitis Virus Vectors Expressing Glycoproteins of Filoviruses and Arenaviruses. J Virol 2004, 78, 5458–5465, doi:10.1128/jvi.78.10.5458-5465.2004.

63. Wolff, S.; Schultze, T.; Fehling, S.K.; Mengel, J.P.; Kann, G.; Wolf, T.; Eickmann, M.; Becker, S.; Hain, T.; Strecker, T. Genome Sequence of Lassa Virus Isolated from the First Domestically Acquired Case in Germany. Genome Announc 2016, 4, doi:10.1128/genomeA.00938-16.

64. World Health Organization. 2002. WHO Manual on Animal Influenza Diagnosis and Surveillance. World Health Organization, Geneva, Switzerland:

65. Reed, L.J.; Muench, H. A Simple Method of Estimating Fifty per Cent Endopoints. American Journal of Epidemiology 1938, 27, 493–497, doi:10.1093/oxfordjournals.aje.a118408.

66. Rasmussen, T.B.; Uttenthal, Å.; Fernández, J.; Storgaard, T. Quantitative Multiplex Assay for Simultaneous Detection and Identification of Indiana and New Jersey Serotypes of Vesicular Stomatitis Virus. J Clin Microbiol 2005, 43, 356– 362, doi:10.1128/JCM.43.1.356-362.2005.

67. Kajiji, S.; Dreslin, J.A.; Grizzuti, K.; Gros, P. Structurally Distinct MDR Modulators Show Specific Patterns of Reversal against P-Glycoproteins Bearing Unique Mutations at Serine939/941. Biochemistry 1994, 33, 5041–5048, doi:10.1021/bi00183a006.

68. Zhang, null; Chung, null; Oldenburg, null A Simple Statistical Parameter for Use in Evaluation and Validation of High Throughput Screening Assays. J Biomol Screen 1999, 4, 67–73, doi:10.1177/108705719900400206.

69. Robey, R.W.; Pluchino, K.M.; Hall, M.D.; Fojo, A.T.; Bates, S.E.; Gottesman, M.M. Revisiting the Role of ABC Transporters in Multidrug-Resistant Cancer. Nat Rev Cancer 2018, 18, 452–464, doi:10.1038/s41568-018-0005-8.

70. Mollazadeh, S.; Sahebkar, A.; Hadizadeh, F.; Behravan, J.; Arabzadeh, S. Structural and Functional Aspects of P-Glycoprotein and Its Inhibitors. Life Sciences 2018, 214, 118–123, doi:10.1016/j.lfs.2018.10.048.

71. Waghray, D.; Zhang, Q. Inhibit or Evade Multidrug Resistance P-Glycoprotein in Cancer Treatment. J Med Chem 2018, 61, 5108–5121, doi:10.1021/acs.jmedchem.7b01457.

72. Hernandez, H.W.; Soeung, M.; Zorn, K.M.; Ashoura, N.; Mottin, M.; Andrade, C.H.; Caffrey, C.R.; de Siqueira-Neto, J.L.; Ekins, S. High Throughput and Computational Repurposing for Neglected Diseases. Pharm Res 2018, 36, 27, doi:10.1007/s11095-018-2558-3.

73. Bai, J.P.F. Pharmacodynamics and Systems Pharmacology Approaches to Repurposing Drugs in the Wake of Global Health Burden. J Pharm Sci 2016, 105, 3007–3012, doi:10.1016/j.xphs.2016.07.004.

74. Li, M.; de Graaf, I.A.M.; Siissalo, S.; de Jager, M.H.; van Dam, A.; Groothuis, G.M.M. The Consequence of Drug-Drug Interactions Influencing the Interplay between P-Glycoprotein and Cytochrome P450 3a: An Ex Vivo Study with Rat Precision-Cut Intestinal Slices. Drug Metab Dispos 2016, 44, 683–691, doi:10.1124/dmd.115.068684.

75. Raviv, Y.; Puri, A.; Blumenthal, R. P-Glycoprotein-Overexpressing MultidrugResistant Cells Are Resistant to Infection by Enveloped Viruses That Enter via the Plasma Membrane1. The FASEB Journal 2000, 14, 511–515, doi:10.1096/fasebj.14.3.511.

76. Larkin, M.A.; Blackshields, G.; Brown, N.P.; Chenna, R.; McGettigan, P.A.; McWilliam, H.; Valentin, F.; Wallace, I.M.; Wilm, A.; Lopez, R.; et al. Clustal W and Clustal X Version 2.0. Bioinformatics 2007, 23, 2947–2948, doi:10.1093/bioinformatics/btm404.

77. Robert, X.; Gouet, P. Deciphering Key Features in Protein Structures with the New ENDscript Server. Nucleic Acids Research 2014, 42, W320–W324, doi:10.1093/nar/gku316. 78. R&D Blueprint Available online: https://www.who.int/teams/health-product-andpolicy-standards/about/blueprint (accessed on 13 December 2021).

参考文献をもっと見る

全国の大学の
卒論・修論・学位論文
を
一発検索！

この論文の関連論文を見る