リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

大学・研究所にある論文を検索できる 「Long non-coding RNA lnc-CHAF1B-3 promotes renal interstitial fibrosis by regulating EMT-related genes in renal proximal tubular cells」の論文概要。リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

コピーが完了しました

URLをコピーしました

論文の公開元へ論文の公開元へ
書き出し

Long non-coding RNA lnc-CHAF1B-3 promotes renal interstitial fibrosis by regulating EMT-related genes in renal proximal tubular cells

今井, 健太郎 名古屋大学

2023.09.07

概要

主論文の要旨

Long non-coding RNA lnc-CHAF1B-3 promotes renal
interstitial fibrosis by regulating EMT-related genes in
renal proximal tubular cells
Long non-coding RNA lnc-CHAF1B-3は
腎近位尿細管細胞のEMT関連遺伝子調節を
介して腎線維化を促進する

名古屋大学大学院医学系研究科
病態内科学講座

総合医学専攻

腎臓内科学分野

(指導:丸山 彰一
今井 健太郎

教授)

【緒言】
慢性腎臓病は世界中で深刻な健康問題となっている。男性、女性の慢性腎臓病の世
界的な発生率はそれぞれ 10.4%、11.8%と高く、腎臓専門医が直面している重要な課題
である。慢性腎臓病に至る疾患は多様であるが、いずれにおいても腎間質の線維化は
共通する病理学的経路である。腎線維化は、炎症細胞浸潤、線維芽細胞の蓄積、尿細
管の萎縮、間質毛細血管の希薄化、および正常な腎構造を置き換える細胞外マトリッ
クスの過剰な蓄積によって特徴付けられ、腎機能障害を引き起こす。腎線維化の正確
な分子メカニズムは未だ不明であるが、尿細管上皮細胞の上皮間葉転換(EMT)は、腎
線維化の主な原因の一つと考えられている。しかし、その治療法はまだ確立されてい
ない。Long non-coding RNA(lnc RNA)は 200 以上のヌクレオチドで構成される非タン
パク質コード RNA で、エピジェネティックな修飾、転写調節、および転写後修飾を通
じて多くの生理病理学的プロセスで役割を果たしていると考えられている。近年多様
な役割が明らかになってきているが、腎線維化との関連は未解明である。そこで、本
研究では腎線維化の進展に関連する lncRNA を探索し、その働きについて解析を行った。
【対象及び方法】
近位尿細管細胞株の HK-2 と近位尿細管細胞の初代培養である RPTEC の 2 種類の
細胞を用い、TGF-β1 刺激と低酸素刺激により共通して発現が増加する lncRNA をマイ
クロアレイで探索し、lnc-CHAF1B-3 を抽出した。その役割を複数の siRNA、ASO を
用いて評価した。また、IgA 腎症および minor glomerular abnormality(MGA)患者の腎生
検組織を用いて qPCR、in situ hybridization(ISH)を行い、疾患重症度と腎組織内の lncCHAF1B-3 発現の相関や、その局在を評価した。
【結果】
TGF-β1 刺激にて HK-2 での lnc-CHAF1B-3 発現はマイクロアレイの結果と同様、有
意に増加していた(Figure 1A)。そして複数の siRNA(#1/2)と ASO #1 を用いた lncCHAF1B-3 の抑制により、EMT 関連遺伝子(COL1A1、CDH2、PAI-1、SNAI1、SNAI2)
発現の有意な低下を認めた(Figure 1B-L)。また、RNA-seq 解析では siRNA(#1/#2)での
lnc-CHAF1B-3 の抑制により、HK-2 での EMT、TGF-β シグナル伝達、および低酸素症
に関連する遺伝子セットの発現は有意に低下することが明らかになった。さらに、各
siRNA によって発現が変動した上位 20 位以内の遺伝子セットのうち、14 セットは共
通しており lnc-CHAF1B-3 による特異的な効果であることが示唆された。RPTEC では、
複数の ASO(#1/2)を用いて検討した。RPTEC においても TGF-β1 刺激にて lnc-CHAF1B3 の発現は有意に増加し(Figure 2A)、また lnc-CHAF1B-3 の抑制による EMT 遺伝子変
化は HK-2 と同様であった(Figure 2B、2D-G、2I-L)。なお、CDH1 mRNA に変化は認
めなかったものの、CDH1 タンパクは TGF-β1 刺激によって大幅に減少し、lnc-CHAF1B3 抑制後に回復が見られた(Figure 2C、2H、2L)。これらの結果より、lnc-CHAF1B-3 が
腎近位尿細管細胞での TGF-β1 誘導 EMT プロセスに関与していることが示された。

-1-

ヒト腎疾患における lnc-CHAF1B-3 の役割を検討するために、IgA 腎症患者の腎生
検検体を遡及的に解析した。2014 年から 2016 年にかけて、名古屋大学関連病院にて
腎生検により IgA 腎症と診断された合計 611 人の患者のうち、選択基準に従って 20 人
(軽症例 7 例、重症例 13 例)を抽出した。薄切した腎生検組織より RNA を抽出し、
qPCR にて解析を行った。軽症例および正常腎の代替として選択した MGA 症例(3 例)
との比較にて、重症例の腎 lnc-CHAF1B-3 発現は有意に増加していた(Figure 3A)。ま
た、臨床パラメータとの相関を解析したところ、腎 lnc-CHAF1B-3 発現と血清 Cre 値、
eGFR、尿蛋白、腎病理における interstitial fibrosis and tubular atrophy( IF/TA)率と
の間に有意な相関を認めた(Figure 3B-F)。また、慢性腎臓病の定義に基づき、eGFR の
カットオフ値を 60mL/min/1.73m2 として IgA 腎症症例を eGFR 保持群と障害群に分け
たところ、腎 lnc-CHAF1B-3 発現は障害群において有意に高かった(Figure 3G)。
ヒト腎生検組織を用い、lnc-CHAF1B-3 の ISH(green)と CD10(red、近位尿細管)、EMA
(blue、遠位尿細管)、DAPI(blue、細胞核)の多重染色を行ったところ(Figure 4A-C)、
lnc-CHAF1B-3 は近位尿細管細胞質に発現していることが判明した。
【考察】
本研究の 1 つ目の主要な知見は、新規 lncRNA である lnc-CHAF1B-3 が、腎近位尿
細管細胞における TGF-β1 および低酸素誘導 EMT プロセスに関与していることであ
る。lnc-CHAF1B-3 の抑制は、HK-2 における TGF-β1 誘導 COL1A1、CDH2、PAI-1、
SNAI1、および SNAI2 の mRNA および蛋白発現を大幅に低下させた(Figure 1B-L)。こ
れらの効果は、2 つの異なる siRNA と ASO #1 でも確認された。同様の結果が RPTEC
でも観察され、lnc-CHAF1B-3 が EMT プロセスに関連した重要な役割を果たすことが
示唆された(Figure 2)。
本研究の 2 つ目の主要な知見は、慢性腎不全の原因の中で頻度の高い疾患である IgA
腎症と lnc-CHAF1B-3 発現との臨床的関連性である。IgA 腎症患者の腎組織において、
lnc-CHAF1B-3 発現は、軽症例および MGA 症例と比較して、重症例において有意に増
加していた(Figure 3A)。さらに、腎 lnc-CHAF1B-3 発現は、IgA 腎症患者の尿蛋白およ
び腎機能障害の進行と相関しており(Figure 3B-G)、蛋白尿誘発性腎機能障害に重要な
関連があることが示唆される。尿蛋白は IgA 腎症の予後不良因子であることがわかっ
ているが、lnc-CHAF1B-3 は広く慢性腎臓病で同様の役割を果たすことが予想される。
また RNA scope FISH の結果より、lnc-CHAF1B-3 は近位尿細管細胞質で発現すること
が示された(Figure 4)。lnc-CHAF1B-3 を治療対象とする際に近位尿細管を標的とでき
ることは drug delivery の観点で有利に働く可能性がある。
【結語】
腎において lnc-CHAF1B-3 は近位尿細管に発現し、腎線維化の過程においてその発
現は亢進し、その抑制により腎線維化が軽減されることが示唆された。lnc-CHAF1B-3
は腎線維化治療の新たな標的となる可能性がある。

-2-

この論文で使われている画像

参考文献

1. Mills, K.T., Xu, Y., Zhang, W., Bundy, J.D., Chen, C.S., Kelly, T.N., Chen, J., and He, J.

(2015). A systematic analysis of worldwide population-based data on the global

burden of chronic kidney disease in 2010. Kidney Int. 88, 950–957.

7. Inoue, T., Kozawa, E., Okada, H., Inukai, K., Watanabe, S., Kikuta, T., Watanabe, Y.,

Takenaka, T., Katayama, S., Tanaka, J., and Suzuki, H. (2011). Noninvasive evaluation

of kidney hypoxia and fibrosis using magnetic resonance imaging. J. Am. Soc.

Nephrol. 22, 1429–1434.

9. Lovisa, S., LeBleu, V.S., Tampe, B., Sugimoto, H., Vadnagara, K., Carstens, J.L., Wu,

C.C., Hagos, Y., Burckhardt, B.C., Pentcheva-Hoang, T., et al. (2015). Epithelial-tomesenchymal transition induces cell cycle arrest and parenchymal damage in renal

fibrosis. Nat. Med. 21, 998–1009.

10. Li, J., Xuan, Z., and Liu, C. (2013). Long non-coding RNAs and complex human diseases. Int. J. Mol. Sci. 14, 18790–18808.

11. Adams, B.D., Parsons, C., Walker, L., Zhang, W.C., and Slack, F.J. (2017). Targeting

noncoding RNAs in disease. J. Clin. Invest. 127, 761–771.

12. Jia, H., Ma, T., and Hao, C. (2020). Identification of candidate lncRNA biomarkers for

renal fibrosis: a systematic review. Life Sci. 262, 118566.

13. Fawzy, M.S., Abu AlSel, B.T., Al Ageeli, E., Al-Qahtani, S.A., Abdel-Daim, M.M., and

Toraih, E.A. (2020). Long non-coding RNA MALAT1 and microRNA-499a expression profiles in diabetic ESRD patients undergoing dialysis: a preliminary crosssectional analysis. Arch. Physiol. Biochem. 126, 172–182.

14. Geng, F., Liu, W., and Yu, L. (2019). Potential role of circulating long noncoding RNA

MALAT1 in predicting disease risk, severity, and patients’ survival in sepsis. J. Clin.

Lab. Anal. 33, e22968.

15. Li, Z., Yu, Z., Meng, X., and Yu, P. (2018). LncRNA LINC00968 accelerates the proliferation and fibrosis of diabetic nephropathy by epigenetically repressing p21 via recruiting EZH2. Biochem. Biophys. Res. Commun. 504, 499–504.

16. Lu, L., Liu, L.P., Zhao, Q.Q., Gui, R., and Zhao, Q.Y. (2021). Identification of a ferroptosis-related LncRNA signature as a novel prognosis model for lung adenocarcinoma.

Front. Oncol. 11, 675545.

17. Zhou, J., and Jiang, H. (2019). Livin is involved in TGF-b1-induced renal tubular

epithelial-mesenchymal transition through lncRNA-ATB. Ann. Transl. Med. 7, 463.

18. Gu, Y.Y., Dou, J.Y., Huang, X.R., Liu, X.S., and Lan, H.Y. (2021). Transforming

growth factor-b and long non-coding RNA in renal inflammation and fibrosis.

Front. Physiol. 12, 684236.

19. Liberzon, A., Birger, C., Thorvaldsdóttir, H., Ghandi, M., Mesirov, J.P., and Tamayo,

P. (2015). The Molecular Signatures Database (MSigDB) hallmark gene set collection.

Cell Syst. 1, 417–425.

20. Zhao, C., Xu, Z., Wang, Z., Suo, C., Tao, J., Han, Z., Gu, M., and Tan, R. (2018). Role

of tumor necrosis factor-a in epithelial-to-mesenchymal transition in transplanted

kidney cells in recipients with chronic allograft dysfunction. Gene 642, 483–490.

21. Reich, H.N., Landolt-Marticorena, C., Boutros, P.C., John, R., Wither, J., Fortin, P.R.,

Yang, S., Scholey, J.W., and Herzenberg, A.M. (2011). Molecular markers of injury in

kidney biopsy specimens of patients with lupus nephritis. J. Mol. Diagn. 13, 143–151.

22. Bombelli, S., Meregalli, C., Scalia, C., Bovo, G., Torsello, B., De Marco, S., Cadamuro,

M., Viganò, P., Strada, G., Cattoretti, G., et al. (2018). Nephrosphere-derived cells are

induced to multilineage differentiation when cultured on human decellularized kidney scaffolds. Am. J. Pathol. 188, 184–195.

2. Djudjaj, S., and Boor, P. (2019). Cellular and molecular mechanisms of kidney

fibrosis. Mol. Aspect. Med. 65, 16–36.

23. Langner, C., Ratschek, M., Rehak, P., Schips, L., and Zigeuner, R. (2004). Expression

of MUC1 (EMA) and E-cadherin in renal cell carcinoma: a systematic immunohistochemical analysis of 188 cases. Mod. Pathol. 17, 180–188.

3. Liu, Y. (2011). Cellular and molecular mechanisms of renal fibrosis. Nat. Rev.

Nephrol. 7, 684–696.

24. Meng, X.M., Nikolic-Paterson, D.J., and Lan, H.Y. (2016). TGF-b: the master regulator of fibrosis. Nat. Rev. Nephrol. 12, 325–338.

4. Edeling, M., Ragi, G., Huang, S., Pavenstädt, H., and Susztak, K. (2016).

Developmental signalling pathways in renal fibrosis: the roles of Notch, Wnt and

Hedgehog. Nat. Rev. Nephrol. 12, 426–439.

25. Tang, P.C.T., Chan, A.S.W., Zhang, C.B., García Córdoba, C.A., Zhang, Y.Y., To, K.F.,

Leung, K.T., Lan, H.Y., and Tang, P.M.K. (2021). TGF-b1 signaling: immune dynamics of chronic kidney diseases. Front. Med. 8, 628519.

5. Zeisberg, M., and Kalluri, R. (2004). The role of epithelial-to-mesenchymal transition

in renal fibrosis. J. Mol. Med. (Berl.) 82, 175–181.

26. Nangaku, M. (2006). Chronic hypoxia and tubulointerstitial injury: a final common

pathway to end-stage renal failure. J. Am. Soc. Nephrol. 17, 17–25.

Molecular Therapy: Nucleic Acids Vol. 31 March 2023

149

Molecular Therapy: Nucleic Acids

27. Wei, X., Zhu, X., Jiang, L., Huang, X., Zhang, Y., Zhao, D., and Du, Y. (2020). Recent

advances in understanding the role of hypoxia-inducible factor 1a in renal fibrosis.

Int. Urol. Nephrol. 52, 1287–1295.

28. Kushida, N., Nomura, S., Mimura, I., Fujita, T., Yamamoto, S., Nangaku, M., and

Aburatani, H. (2016). Hypoxia-inducible factor-1a activates the transforming growth

factor-b/SMAD3 pathway in kidney tubular epithelial cells. Am. J. Nephrol. 44,

276–285.

29. Ma, L.J., and Fogo, A.B. (2009). PAI-1 and kidney fibrosis. Front. Biosci. 14,

2028–2041.

30. Ghosh, A.K., and Vaughan, D.E. (2012). PAI-1 in tissue fibrosis. J. Cell. Physiol. 227,

493–507.

31. Krag, S., Danielsen, C.C., Carmeliet, P., Nyengaard, J., and Wogensen, L. (2005).

Plasminogen activator inhibitor-1 gene deficiency attenuates TGF-beta1-induced

kidney disease. Kidney Int. 68, 2651–2666.

32. Hung, T.W., Tsai, J.P., Lin, S.H., Lee, C.H., Hsieh, Y.H., and Chang, H.R. (2016).

Pentraxin 3 activates JNK signaling and regulates the epithelial-to-mesenchymal

transition in renal fibrosis. Cell. Physiol. Biochem. 40, 1029–1038.

33. Lv, J., Xu, D., Perkovic, V., Ma, X., Johnson, D.W., Woodward, M., Levin, A., Zhang,

H., and Wang, H.; TESTING Study Group (2012). Corticosteroid therapy in IgA nephropathy. J. Am. Soc. Nephrol. 23, 1108–1116.

34. Matsumoto, A., Matsui, I., Katsuma, Y., Yasuda, S., Shimada, K., Namba-Hamano, T.,

Sakaguchi, Y., Kaimori, J.Y., Takabatake, Y., Inoue, K., and Isaka, Y. (2021).

Quantitative analyses of foot processes, mitochondria, and basement membranes

by structured illumination microscopy using elastica-masson- and periodic-acidschiff-stained kidney sections. Kidney Int. Rep. 6, 1923–1938.

35. Urushihara, M., Seki, Y., Tayama, T., Nagai, T., Kinoshita, Y., Jamba, A., Kondo, S.,

and Kagami, S. (2013). Glomerular angiotensin-converting enzyme 2 in pediatric IgA

nephropathy. Am. J. Nephrol. 38, 355–367.

36. Tanaka, K., Sugiyama, H., Yamanari, T., Mise, K., Morinaga, H., Kitagawa, M.,

Onishi, A., Ogawa-Akiyama, A., Tanabe, K., Eguchi, J., et al. (2018). Renal expression

150

Molecular Therapy: Nucleic Acids Vol. 31 March 2023

of trefoil factor 3 mRNA in association with tubulointerstitial fibrosis in IgA nephropathy. Nephrology 23, 855–862.

37. Reich, H.N., Troyanov, S., Scholey, J.W., and Cattran, D.C.; Toronto

Glomerulonephritis Registry (2007). Remission of proteinuria improves prognosis

in IgA nephropathy. J. Am. Soc. Nephrol. 18, 3177–3183.

38. Khan, S., Cabral, P.D., Schilling, W.P., Schmidt, Z.W., Uddin, A.N., Gingras, A.,

Madhavan, S.M., Garvin, J.L., and Schelling, J.R. (2018). Kidney proximal tubule

Lipoapoptosis is regulated by fatty acid transporter-2 (FATP2). J. Am. Soc.

Nephrol. 29, 81–91.

39. Xing, L., Chang, X., Shen, L., Zhang, C., Fan, Y., Cho, C., Zhang, Z., and Jiang, H.

(2021). Progress in drug delivery system for fibrosis therapy. Asian J. Pharm. Sci.

16, 47–61.

40. Shen, M., Pan, X., Gao, Y., Ye, H., Zhang, J., Chen, Y., Pan, M., Huang, W., Xu, X.,

Zhao, Y., and Jin, L. (2022). LncRNA CRNDE exacerbates IgA nephropathy progression by promoting NLRP3 inflammasome activation in macrophages. Immunol.

Invest. 51, 1515–1527.

41. Guo, N., Zhou, Q., Huang, X., Yu, J., Han, Q., Nong, B., Xiong, Y., Liang, P., Li, J.,

Feng, M., et al. (2020). Identification of differentially expressed circulating exosomal

lncRNAs in IgA nephropathy patients. BMC Immunol. 21, 16.

42. Zuo, N., Li, Y., Liu, N., and Wang, L. (2017). Differentially expressed long non-coding

RNAs and mRNAs in patients with IgA nephropathy. Mol. Med. Rep. 16, 7724–7730.

43. Wang, P., Luo, M.L., Song, E., Zhou, Z., Ma, T., Wang, J., Jia, N., Wang, G., Nie, S.,

Liu, Y., and Hou, F. (2018). Long noncoding RNA lnc-TSI inhibits renal fibrogenesis

by negatively regulating the TGF-b/Smad3 pathway. Sci. Transl. Med. 10, eaat2039.

44. Liang, Y., Chen, X., Wu, Y., Li, J., Zhang, S., Wang, K., Guan, X., Yang, K., and Bai, Y.

(2018). LncRNA CASC9 promotes esophageal squamous cell carcinoma metastasis

through upregulating LAMC2 expression by interacting with the CREB-binding protein. Cell Death Differ. 25, 1980–1995.

45. Necsulea, A., Soumillon, M., Warnefors, M., Liechti, A., Daish, T., Zeller, U., Baker,

J.C., Grützner, F., and Kaessmann, H. (2014). The evolution of lncRNA repertoires

and expression patterns in tetrapods. Nature 505, 635–640.

...

参考文献をもっと見る

全国の大学の
卒論・修論・学位論文

一発検索!

この論文の関連論文を見る