リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

大学・研究所にある論文を検索できる 「B系統細胞におけるDNAM-1の発現と機能」の論文概要。リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。
リケラボ

コピーが完了しました

URLをコピーしました

論文の公開元へ論文の公開元へ
書き出し

B系統細胞におけるDNAM-1の発現と機能

永山（長谷川）, 裕子 筑波大学 DOI:10.15068/00162568

2021.02.04

概要

1-1 B細胞と分化
リンパ球はT細胞、B細胞、NK細胞に大別され、その中でB細胞は抗体産生を担う細胞であると認識されている。骨髄において血液幹細胞からPro-B細胞、Pre-B細胞を経て分化したnaïveB細胞は二次リンパ組織の濾胞に移動する[1,2]。二次リンパ組織においてnaïveB細胞は細胞表面に発現するB細胞レセプターと外来抗原が結合すると活性化し、さらに濾胞T細胞由来のCD40の共刺激により増殖する[1,2]。増殖した細胞の一部は速やかに分化し、memory細胞（胚中心非依存性memory細胞）や短寿命のplasma細胞へと分化する[1-4]。また、増殖した他のB細胞は濾胞T細胞と共に胚中心を形成する。暗領域と明領域で構成される胚中心において、B細胞は暗領域で著しく増殖し、その際にIgV領域の体細胞突然変異が起こり、結果として親和性が高いB細胞が出現する[3,4]。その後胚中心の明領域に移動したB細胞は濾胞樹状細胞や濾胞T細胞との相互作用によって選択され、最終的に長寿命plasma細胞や胚中心依存的なmemory細胞へと分化する[3,4]。

1-2 Plasma blast/plasma細胞のホーミングとケモカイン
plasma blastやplasma細胞は細胞表面にCXCR4を発現し、骨髄の間質細胞が多く発現するCXCR4のリガンドであるCXCL12に反応して骨髄へと移動する（ホーミング）[5,6]。これは、CXCR4欠損マウスの胎児肝造血細胞を放射線照射した正常マウスに移植したキメラマウスをNP-CGGで免疫すると，誘導されたplasma細胞が血液中には増加するが、骨髄でのplasma細胞の蓄積が認められなかったことにより明らかになった[6]。末梢血中のplasma blastやplasma細胞はCXCR4の他にCXCR6（リガンド：CXCL16）、CCR10（リガンド：CCL28）、CCR3（リガンド：CCL28）を発現しており、骨髄はこれらのリガンドの発現が高いことが報告されている[7]。

一方で、CXCL12はplasma blastやplasma細胞の移動に関与するだけでなく、B細胞前駆体の骨髄での分化や保持に重要な役割を持つことが報告されている[5,6]。

1-3 DNAM-1のT細胞、NK細胞における機能
白血球接着分子であるDNAXaccessory molecule-1(DNAM-1、CD226)はイムノグロブリンスーパーファミリーのⅠ型膜貫通蛋白である。ヒトとマウスにおいてNK細胞、CD8+T細胞、CD4+T細胞、単球、血小板の大多数に定常的に発現することが報告された[8,9]。ポリオウイルスレセプター（PVR）であるCD155とネクチン-2（CD112、ポリオウイルスレセプター関連ファミリー2）はDNAM-1のリガンドであることが報告されている[10,11]。これらのリガンドは多くの組織の造血系細胞、上皮細胞、内皮細胞に広く発現しており、特定の癌ではその発現が上昇することが知られている[12-20]。NK細胞、CD8+T細胞上のDNAM-1と標的細胞上のリガンドの相互作用が細胞誘導性の細胞毒性やIFNγ等のサイトカイン産生を促進する[8,10,21]。DNAM-1はまたNK細胞やCD8+T細胞による腫瘍の排除や白血球機能関連抗原-1（LFA-1）と関連したnaïveCD4+T細胞からTh1細胞への増殖・分化に関与することが報告されている[15,21,22]。

1-4 B細胞とDNAM-1に関する知見
ヒト及びマウスにおいて一部のB系統細胞にDNAM-1が発現していることが報告されている[8,23-25]。しかしながら、B系統細胞における発現パターンやDNAM-1の機能についてはいまだ不明である。過去にはEpstein-Barr(EB)ウイルスの感染が初代培養のB細胞上のDNAM-1発現を増加させることが報告されている[23]。このEBウイルスを感染させたin vitroの実験系においてDNAM-1の機能を明らかにするための実験が行われたが、増殖、生存、凝集、活性化内皮細胞への接着においてDNAM-1の明らかな関与はなかった[23]。また、CD40L/IL-21の刺激がin vitroで誘導されたplasma blast上のDNAM-1発現を増加させるという報告はあるものの、その詳細は不明である[24]。さらに、DNAM-1の細胞質領域の307残基の突然変異が様々な自己免疫疾患の病態と関連することが報告されている[25]が、一方で、健常人と多発性硬化症の患者を比較した際にB細胞上のDNAM-1発現には変化が見られなかったとも報告されている[26]。

論文の公開元へ

この論文で使われている画像

関連論文

関連論文をもっと見る

参考文献

1. Shapiro-Shelef M, Calame Kathryn. Regulation of plasm-cell development. Nat Rev Immunol. 2005;5: 230-242. doi:10.1038/nri1572

2. Nutt SL, Hodgkin PD, Tarlinton DM, Corcoran LM, The generation of antibody-secreting plasma cells. Nat Rev Immunol. 2015;15: 160-171. doi:10.1038/nri3795

3. Suan D, Sundling C, Brink R. Plasma cell and memory B cell differentiation from the germinal center. Current Opinion in Immunology. 2017;45: 97–102. doi:10.1016/j.coi.2017.03.006

4. Shinnakasu R, Kurosaki T. Regulation of memory B and plasma cell differentiation. Current Opinion in Immunology. 2017;45: 126–131. doi:10.1016/j.coi.2017.03.003

5. Kunkel EJ, Butcher EC. Plasma-cell homing. Nat Rev Immunol. 2003;3: 822-829. doi:10.1038/nri1203

6. Hargreaves DC, Hyman PL, Lu TT, Ngo VN, Bidgol A, Suzuki G, et al. A coordinated change in chemokine responsiveness guides plasma cell movements. J Exp Med. 2001;194: 45-56. doi:10.1084/jem.194.1.45

7. Nakayama T, Hieshima K, Izawa D, Tatsumi Y, Kanamaru A, Yoshie O. Cutting edge: profile of chemokine rexeptor expression on human plasma cells accounts for their efficient recruitment to target tissues. J Immunol. 2003;170: 1136-1140. doi:10.4049/jimmunol.170.3.1136

8. Shibuya A, Campbell D, Hannum C, Yssel H, Franz-Bacon K, MeClanahan T, et al. DNAM-1, a novel adhesion molecule involved in the cytolytic function of T lymphocytes. Immunity. 1996;4: 573-581. doi:10.1016/S1074-7613(00)70060-4

9. Tahara-Hanaoka S, Miyamoto A, Hara A, Honda S, Shibuya K, Shibuya A. Identification and characterization of murine DNAM-1 (CD226) and its poliovirus receptor family ligands. Biochem Biophys Res Commun. 2005;239: 996-1000. doi:10.1016/j.bbrc.2005.02.067

10. Bottino C, Castriconi R, Pende D, Rivera P, Nanni M, Carnemolla B, Cantoni C, et al. Identification of PVR (CD155) and Nectin-2 (CD112) as cell surface ligands for the human DNAM-1 (CD226) activating molecule. J Exp Med. 2003;198: 557-567. doi:10.1084/jem.20030788

11. Tahara-Hanaoka S. Functional characterization of DNAM-1 (CD226) interaction with its ligands PVR (CD155) and nectin-2 (PRR-2/CD112). Int Immnol. 2004;16: 533-538. doi:10.1093/intimm/dxh059

12. Aoki J, Koike S, Asou H, Ise I, Suwa H, Tanaka T, et al. Mouse homolog of poliovirus receptor-related gene 2 product, mPRR2, mediates hemophilic cell aggregation. Exp Cell Res. 1997;235: 374-384. doi:10.1006/excr.1997.3685.

13. Maier MK, Seth S, Czeloth N, Qui Q, Ravens I, Kremmer E, et al. The adhesion receptor CD155 determines the magnitude of humoral immune responses against orally ingested antigens. Eur J Immunol. 2007;37: 2214-2225. doi:10.1002/eji.200737072

14. Lopez M, Aoubala M, Jordier F, Isnardon D, Gomez S, Dubreuil P. The human poliovirus receptor related 2 protein is a new hematopoietic/endothelial hemophilic adhesion molecule. Blood. 1998;92: 4602-4611. http://www.bloodjournal.org/content/92/12/4602

15. Tahara-Hanaoka S, Shibuya K., Kai H, Miyamoto A, Morikawa Y, Ohkochi N, et al. Tumor rejection by the poliovirus receptor family ligands of the DNAM-1 (CD226) receptor. Blood. 2006;107: 1491-1496. doi:10.1182/blood-2005-04-1684.

16. EI-Sherbiny YM, Meade JL, Holmes TD, McGonagle D, Mackie SL, Morgan AW, et al. The requirement for DNAM-1, NKG2D, and NKp46 in the natural killer cell-mediated killing of myeloma cells. Cancer Res. 2007;67: 8444-8449. doi:10.1158/0008-5472.CAN-06-4230

17. Verhoeven DH, de Hooge AS, Mooiman EC, Santos SJ, tem Dam MM Gelderblom H, et al. NK cells recognize and lyse Ewing sarcoma cells through NKG2D and DNAM-1 receptor dependent pathways. Mol Immunol. 2008; 45: 3917-3925. doi:10.1016/j.molimm.2008.06.016

18. Ravens I, Seth S, Forster R, Bernhardt G. Characterization and identification of Tage4 as the murine orthologue of human poliovirus receptor/CD155. Biochem Biophys Res Commun. 2003;312: 1364-1371. doi:10.1016/j.bbrc.2003.11.067

19. Chadeneau C, LeCabellec M, LeMoullac B, Meflah K, Denis, MG. Overexpression of a novel member of the immunoglobulin superfamily in Min mouse intestinal adenomas. Int J Cancer. 1996;68: 817-821, doi:10.1002/(SICI)1097-0215(19961211)68:63.0.CO;2- W

20. Morrison ME, Racaniello VR. Molecular cloning and expression of a murine homolog of the human poliovirus receptor gene. J Virol. 1992; 66: 2807-2813. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC241037/

21. Iguchi-Manaka A, Kai H, Yamashita Y, Shibata K, Tahara-Hanaoka S, Honda S, et al. Accelerated tumor growth in mice deficient in DNAM-1 receptor. J Exp Med. 2008;205: 2959-2964. doi:10.1084/jem.20081611.

22. Shibuya K, Shirakawa J, Kameyama T, Honda S, Tahara-Hanaoka S, Miyamoto A, et al. CD226 (DNAM-1) is involved in lymphocyte functionassociated antigen 1 costimulatory signal for naïve T cell differentiation and proliferation. J Exp Med. 2003;198: 1829-1839. doi:10.1084/jem.20030958

23. Grossman L, Chand C, Dai J, Nikitin PA, Jima DD, Dave SS, et al. Epstein-barr virus indices adhesion receptor CD226 (DNAM-1) expression during primar B cell transformation into lymphoblastoid cell lines. mSphere. 2017;2: 1-11. doi:10.1128/mSphere.00305-17

24. Berglund LJ, Avery DT, Ma CS, Moens L, Deenick EK, Bustamante J, et al. IL-21 signaling via STAT3 primes human naïve B cells to respond to IL-2 to enhanve their differentiation into plasmablasts. Blood. 2013;122: 3940-50. doi:10.1182/blood-2013-06-506865

25. Du Y, Tian L, Shen LX, Wang F, Yu LK, Song Y et al. Association of the CD226 single nucleotide polymorphism with systemic lupus eruthematosus in the Chinese Han Population. Tissue Antigen. 2011;77: 65-67. doi:10.1111/j.1399-0039.2010.01568.x

26. Ayano M, Tsukamoto H, Kohno K, Ueda N, Tanaka A, Mitoma H, et al. Increased CD226 expression on CD8+ T cells is associated with upregulated cytokine production and endothelial cell injury in patients with systemic sclerosis. J Imunol. 2015;195: 892-900. doi:10. 4049/jimmunol.1403046.

27. Yu X, Harden K, Gonzalez LC, Francesco M, Chiang E, Irving B, et al. The surface protein TIGIT suppresses T cell activation by promoting the generation of mature immunoregulatory dendritic cells. Nat Immunol. 2009;10: 48-57. doi:10.1038/ni.1674.

28. Fuchs A, Cella M, Giurisato E, Shaw AS, Colonna M. Cutting edge: CD96 (tactile) promotes NK cell-target cell adhesion by interacting with the poliovirus receptor (CD155). J Immunol. 2004;172: 3994-3998. doi:10.4049/jimmunol.172.7.3994

29. Stanietsky N, Simic H, Arapovic J, Toporik A, Levy O, Novik A, et al. The interaction of TIGIT with PVR and PVRL2 inhibits human NK cell cytotoxicity. Proc Natl Acad Sci. 2009;106: 17853-17863. doi:10.1073/pnas.0903474106

30. Wang PL, O’Farrell C, Clayberger C, Krensky AM. Identification and molecular cloning of tactile. A novel human T cell activation antigen that is a member of the Ig gene superfamily. J Immunol. 1992;148: 2600-2608. http://www.jimmunol.org/content/148/8/2600

31. Chan CJ, Martinet L, Gilfillan S, Souza-Fonseca-Guimaraes F, Chow MT, Town L, et al. The receptor CD96 and CD226 oppose each other in the regulation of natural killer cell functions. Nat Immunol. 2014;15: 431-438. doi:10.1038/ni.2850

32. Palumbo A, Anderson K. Multiple myeloma. N Eng J Med. 2011;364: 1046-1060. doi:10.1056/NEJMra1011442

33. Robak P, Drozdz I, Szemraj J, Robak T. Drug resistance in multiple myeloma. Cancer Treat Rev. 2018;70: 199-208. doi:10.1016/j.ctrv.2018.09.001.

34. Guillerey C, Ferrari de Andrade L, Vuckovic S, Miles K, Ngiow SF, Yong MC, et al. Immunosurveillance and therapy of multiple myeloma are CD226 dependent. J Clin Invest. 2015;125: 2904. doi:10.1172/JCI82646

35. Flonda C, Soriani A, Zingoni A, Santoni A, Cippitelli M. NKG2D and DNAM-1 ligands: molecular targets for NK cell-mediated immunotherapeutic intervention in multiple myeloma. Biomed Res Int. 2015;2015: 178698. doi:10.1155/2015/178698

36. El-Sherbiny YM, Meade JL, Holmes TD, McGonagle D, Mackie SL, Morgan AW, et al. The requirement for DNAM-1, NKG2D, and NKp46 in the natural killer cell-mediated killing of myeloma cells. Cancer Res. 2007;67: 8444-8449. doi:10.1158/0008-5472.CAN-06-4230

37. Gasser S, Orsulic S, Brown EJ, Raulet DH. The DNA damage pathway regulates innate immune system ligands of the NKG2D receptor. Nature. 2005;436: 1186-1190. doi:10.1038/nature03884

38. Soriani A, Zingoni A, Cerboni C, Iannitto ML, Roccoardo MR, Di Gialleonardo V, et al. ATM-ATR-dependent up-regulation of DNAM-1 and NKG2D ligands on multiple myeloma cells by therapeutic agents results in enganced NK-cell susceptibility and is associated with a senescent phenotype. Blood. 2009;113:3503-3511. doi:10.1182/blood2008-08-173914.

39. Sonmez O, Sonmez M. Role of platelets in immune system and inflammation. Port Biomed J. 2017;2: 311-314. doi:10.1016/j.pbj.2017.05.005

40. Lam FW, Vijavan KV, Rumbaut RE. Platelets and their interactions with other immune cells. Compr Physiol. 2015;5: 1265-1280. doi:10.1002/cphy.cl40074

41. Li N, Ji Q, Hjemdahl P. Platelet-lymphocyte conjugation differs between lymphocyte subpopulations. J Thromb Haemost. 2006;4: 874-881. doi:10.1111/j.1538-7836.2006.01817.x

42. Cognasse, F., Hamzeh-Cognasse, H., Lafarge, S., Chavarin, P., Cogne, M., Richard, Y., Garraud, O., 2007. Human platelets can activate peripheral blood B cells and increase production of immunoglobulins. Exp Hematol. 35, 1376-1387, doi:10.1016/j.exphem.2007.05.021

43. Kojima H, Kanada H, Shimizu S, Kasama E, Shibuya K, Nakauchi H, et al. CD226 mediate platelet and megakaryocytic cell adhesion to vascular endothelial cells. J Biol Chem. 2003;278: 36748-36753. doi:10.1074/jbc.M300702200

44. Maecker HT, McCoy JP, Nussenblatt R. Standardizing immunophenotyping for the human immunology project. Nat Rev Immunol. 2012;12: 191-200. doi:10.1038/nri3158

45. Avery DT, Ellyard JI, Mackay F, Corcoran LM, Hodgkin PD, Tangye SG. Increased expression of CD27 on activated human memory B cells correlates with their commitment to the plasma cell lineage. J Immunol. 2005;174: 4034-4042. doi:10.4049/jimmunol.174.4.4034

46. Rawstron AC. Immunophenotyping of plasma cells. Curr Protoc Cytom. 2006;36: 6.23.1-6.23.14. doi:10.1002/0471142956.cy0623s36.

47. Barwick BG, Scharer CD, Bally APR, Boss JM. Plasma cell differentiation is coupled to division-dependent DNA hypomethylation and gene regulation. Nat Immunol. 2016;17: 1216-1225. doi:10.1038/ni.3519

48. Kim D, Park CY, Medeiros BC, Weissman IL. CD19-CD45 low/- CD38 high/CD138+ plasma cells enrich for human tumorigenic myeloma cells. Leukemia. 2012;26: 2530-2537. doi:10.1038/leu.2012.140

49. Nakano-Yokomizo T, Tahara-Hanaoka S, Nakanishi-Oda C, Nabekura T, Tchao NK, Kadosaki M, et al. The immunoreceptor adapter protein DAP12 suppresses B lymphocyte-driven adaptive immune responses. J Exp Med. 2011;208: 1661-1671. doi:10.1084/jem.20101623

50. Van Belle K, Herman J, Boon L, Waer M, Sprangers B, Louat T. Comparative in vitro immune stimulation analysis of primary human B cells and B cell lines. J Immunol Res. 2016:2016: 5281823. doi:10.1155/2016/5281823.

51. Niehage C, Steenblock C, Pursche T, Bornhauser M, Corbeil D, Hoflack B. The cell surface proteome of human mesenchymal stromal cells. PLoS One. 2011;6: e20399. doi: 10.1371/journal.pone.0020399

52. Pak HK, Gil M, Lee Y, Lee H, Lee AN, Roh J, Park CS. Regulator of G protein signaling 1 suppresses CXCL12-mediated migration and AKT activation in RPMI 8226 human plasmacytoma cells and plasmablasts. PLoS One. 2015;10: e0124793. doi:10.1371/journal.pone.0124793

53. D Payne, S Drinkwater, R Baretto, M Duddridge, MJ Browning. Expression of chemokine receptors CXCR4, CXCR5 and CCR7 on B and T lymphocytes from patients with primary antibody deficiency. Clin Exp Immunol. 2009;156: 254-262. doi:10.1111/j.1365-2249.2009.03889.x

54. Daien Cl, Gailhac S, Mura T, Audo R, Combe B, Hahne M, et al. Regulatory B10 cells are decreased in patients with rheumatoid arthritis and are inversely correlated with disease activity. Arthritis Rheumatol. 2014;66: 2037-2046. doi:10.1002/art.38666.

55. Shen P, Roch T, Lampropoulou V, O’Connor RA, Stervbo U, Hilgenberg E, et al. IL-35-producing B cells are critical regulators of immunity during autoimmune and infectious diseases. Nature. 2014;507: 366-370. Doi:10.1038/nature12979

56. Matsumoto M, Baba A, Yokota T, Nishikawa H, Ohkawa Y, Kayama H, et al. Interleukin-10-producing plasmablasts exert regulatory function in autoimmune inflammation. Immunity. 2014;41: 1040-1051. doi:10.1016/j.immuni.2014.10.016

57. Bemasconi NL, Traggiai E, Lanzavecchia A., Maintenance of serological memory by polyclonal activation of human memory B cells. Science. 2002;298: 2199-2202. doi:10.1126/science.1076071

58. Joo H, Coquery C, Xue Y, Gayet I, Dillion SR, Punaro M, et al. Serum from patients with SLE instructs monocytes to promote IgG and IgA plasmablast differentiation. J Exp Med. 2012;209: 1335-1348. doi:10.1084/jem.20111644

59. Heine G, Drozdenko G, Grun JR, Change HD, Radbruch A, Worm M. Autocrine IL-10 promotes human B-cell differentiation into IgM- or IgGsecreting plasmablasts. Eur J Immunol. 2014;44: 1615-1621. doi:10.1002/eji.201343822

60. Malisan F, Briere F, Bridon JM, Harindranath N, Mills FC, Max EE, et al. Interleukin-10 induces immunoglobulin G isotype switch recombination in human CD40-activated naïve B lymphocytes. J Exp Med. 1996;183: 937-947. doi:10.1084/jem.183.3.937

61. Moore KW, de Waal Malefyt R, Coffman RL, O’Garra A. Interleuklin-10 and the interleukin-10 receptor. Annu Rev Immunol. 2001;19: 683-765. doi:10.1146/annurev.immunol.19.1.683

62. Ping S, Toralf R, Vicky L, Richard AO, Ulrik S, Ellen H, et al. IL-35- producing C cells are critical regulators of immunity during autoimmune and infectious diseases. Nature. 2014;507: 366-370. doi:10.1038/nature 12979

63. Takagi A, Tsukamoto S, Kawano Y, Moschetta M, Mishima Y, Kokubun K, et al. Platelets/Megakaryocytes are critical regulators of tumor progression in multiple myeloma. Blood. 2015;126: 1793

参考文献をもっと見る

全国の大学の
卒論・修論・学位論文
を
一発検索！

この論文の関連論文を見る