リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

大学・研究所にある論文を検索できる 「アルドステロン産生腺腫におけるコレステロール代謝と形態学的特徴/genotypesとの相関」の論文概要。リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

コピーが完了しました

URLをコピーしました

論文の公開元へ論文の公開元へ
書き出し

アルドステロン産生腺腫におけるコレステロール代謝と形態学的特徴/genotypesとの相関

原嶋 祥吾 東北大学

2022.03.25

概要

【研究背景・目的】
原発性アルドステロン症の主な病因であるアルドステロン産生腺腫 (Aldosterone-producing adenoma; APA)は、病理組織学的には clear cell と compact cell から構成される。一方東アジア人の APA 患者の約 70%が内向き整流性 K チャネルをエンコードする KCNJ5 遺伝子の体細胞変異を有し、KCNJ5 変異型(mt)APA は、野生型(WT)に比べ血漿アルドステロン濃度が高く、豊富な脂肪滴を含む膨化した clear cell が優位であることが報告されている。しかし、細胞内コレステロール代謝と病理組織学的形態像、genotype による差異は一切検討されていない。そこで、今回私はAPA 症例でコレステロールの受容体および代謝因子の発現動態と細胞形態像、 genotype、臨床因子を比較した初めての研究を行った。

【研究対象と方法】
2015 年から 2019 年の間、東北大学病院で原発性アルドステロン症と診断され片 側副腎摘出術を施行された APA52 例(KCNJ5 mt:33 例、WT:19 例)と腎癌他で摘 出された正常副腎 10 例を対象とした。これらに対して、コレステロール受容体(SR-B1、 LDL-R)、コレステロール代謝酵素(ACAT1、ACAT2、HSL、DHCR24、StAR)、ス テロイド合成酵素(CYP11A1、CYP17A、3βHSD、CYP11B1、CYP11B2)の免疫組 織化学的解析を行った。また、上記 52 例中 21 例では OCT 包埋凍結組織を用いてガ スクロマトグラフィー質量分析を用い、組織中コレステロール代謝産物の定量および代謝産物比を検討し、あわせて酵素活性についての検討も行った。得られた結果を、正常副腎皮質各層、APA と付随副腎、腫瘍の形態像(clear cell, compact cell), APA genotype(KCNJ5 mt, WT)において比較した。

【結果】
正常副腎では、SR-B1(P <0.01)と DHCR24(P <0.01)双方が球状層で束状層、網状層に比べ有意に低値を示したのに対し、LDL-R は副腎皮質3層間で有意差が得られなかった。APA と付随副腎間の比較では、SR-B1(P <0.01)と DHCR24(P <0.01)双方が、APA において付随副腎と比し有意に高値を示した。コレステロール代謝産物および代謝産物比も、APA で有意に高値を示した。次に腫瘍細胞の形態像(clear cell, compact cell)による比較では、LDL-R(mt:P <0.01、WT:P = 0.04)、ACAT1(mt: P = 0.04、WT:P = 0.02)、ACAT2(mt:P <0.01、WT:P = 0.01)、HSL(mt:P <0.01、WT:P = 0.08)、DHCR24(mt:P <0.01、WT:P = 0.02)が、clear cell において compact cell と比べ有意な低値を示した。更に genotype(KCNJ5 mt, WT)による比較では、 LDL-R(P = 0.03)が、KCNJ5 mt 群で WT 群に比べ有意に低く、コレステロール/ラノステロール比(P = 0.01)は有意に高値であった。

【結論】
APA では、SR-B1 を介したコレステリルエステルの selective uptake と de novo経路によるコレステロール合成が、正常の副腎皮質球状層に比して有意に亢進していた。コレステロールの取り込みおよび代謝の phenotype は clear cell と compact cell 間で異なり、これらの heterogeneity が APA に特徴的な腫瘍細胞の形態像となって現れている事が初めて示された。更に KCNJ5 mt APA は LDL-R を介した取り込みが低い一方で、de novo 合成が亢進した状態にあり、コレステリルエステルを豊富に蓄えた clear cell によって構成されている事も判明した。私は今回 APA の病理組織形態像がコレステロール代謝に密接に関与している事を初めて示す事で APA の病理学的理解を飛躍的に深める事が出来た。

この論文で使われている画像

参考文献

[1] Liu J, Heikkila¨ P, Meng Q, Kahri A.I, Tikkanen M.J, Voutilainen R. Expression of low and high density lipoprotein receptor genes in human adrenals. Eur J Endocrinol 2000; 142: 677-682.

[2] Capponi A.M. Regulation of cholesterol supply for mineralocorticoid biosynthesis. Endocrinol & Metab 2002; 13: 118-121. doi: 10.1016/S1043-2760(01)00538-0.

[3] Miler W.L. Steroid hormone synthesis in mitochondria. Mol. Cell. Endocrinol 2013; 379 :62-73. doi: 10.1016/j.mce.2013.04.014.

[4] Waterham H.R, Koster J, Romeijn G.J, Hennekam R.C, Vreken P, Andersson H.C, FitzPatrick D.R, Kelley R.I, Wanders R.J. Mutations in the 3-hydroxysterol 24-reductase gene cause desmosterolosis, an autosomal recessive disorder of cholesterol biosynthesis. Am J Hum Genet 2001; 69: 685–694. doi: 10.1086/323473.

[5] Clark B.J, Stocco D.M. StAR-A tissue specific acute mediator of steroidogenesis. Trends Endocrinol Metab. 1996; 7(7): 227–233. doi: 10.1016/S1043-2760(96)00114-2.

[6] Funder J.W. The genetics of primary aldosteronism. Science 2011; 331: 685–686. doi: 10.1126/science.1202887.

[7] Rossi G.P, Bernini G, Caliumi C, Desideri G, Fabris B, Ferri C, Ganzaroli C, Giacchetti G, Letizia C, Maccario M, et al. A prospective study of the prevalence of primary aldosteronism in 1125 hypertensive patients. J. Am. Coll. Cardiol 2006; 48: 2293–2300.

[8] Williams J.S, Williams G.H, Raji A, Jeunemaitre X, Brown N.J, Hopkins P.N, Conlin P.R, Prevalence of primary hyperaldosteronism in mild to moderate hypertension without hypokalaemia. J. Hum. Hypertens 2006; 20: 129–136. doi: 10.1038/sj.jhh.1001948.

[9] Nakamura Y, Felizola SJ, Satoh F, Konosu-Fukaya S, Sasano H. Dissecting the molecular pathways of primary aldosteronism. Pathol Int. 2014; 64: 482–489. doi: 10.1111/pin.12200.

[10] Neville AM, O’Hare MJ. The Human Adrenal Cortex: Pathology and Biology-An Integrated Approach. Berlin, Germany: Springer-Verlag; 1982.

[11] Choi M, Scholl UI, Yue P, Bjorklund P, Zhao B, Nelson-Williams C, Ji W. Cho Y. Patel A, Men C.J, et al. Kt channel mutations in adrenal aldosteroneproducing adenomas and hereditary hypertension. Science, 2011; 331: 768–772. doi: 10.1126/science.1198785.

[12] Beuschlein F, Boulkroun S, Osswald A, Wieland T, Nielsen H.N, Lichtenauer, UD, Penton D, Schack V.R, Amar L, Fischer E, et al. Somatic mutations in ATP1A1 and ATP2B3 lead to aldosterone-producing adenomas and secondary hypertension. Nat Genet. 2013; 45: 440–444, 444e1. doi: 10.1038/ng.2550.

[13] Azizan E.A, Poulsen H, Tuluc P, Zhou J, Clausen M.V, Lieb A, Maniero C, Garg S, Bochukova E.G, Zhao W, et al. Somatic mutations in ATP1A1 and CACNA1D underlie a common subtype of adrenal hypertension. Nat Genet. 2013; 45: 1055–1060. doi: 10.1038/ng.2716.

[14] Berthon A, Drelon C, Ragazzon B, Boulkroun S, Tissier F, Amar L, Couterie B.S, Zennaro M.C, Zennaro M.C, et al. WNT/β-catenin signalling is activated in aldosterone-producing adenomas and controls aldosterone production. Hum Mol Genet. 2014; 23: 889–905. doi: 10.1093/hmg/ddt484.

[15] Kitamoto T, Suematsu S, Yamazaki Y, Nakamura Y, Sasano H, Matsuzawa Y, Saito J, Omura M, Nishikawa T. Clinical and steroidogenic characteristics of aldosterone-producing adenomas with ATPase or CACNA1D gene mutations. J Clin Endocinol Metab. 2016; 101: 494 –503. doi: 10.1210/jc.2015-3284.

[16] Lenzini L, Rossitto G, Maiolino G, Leitizia C, Funder J.W, Rossi, G.P. A meta-analysis of somatic KCNJ5 K+ channel mutations in 1636 patients with an aldosterone-producing adenoma. J Clin Endocinol Metab. 2015; 100: E1089-E1095. doi: 10.1210/jc.2015-2149.

[17] Yamazaki Y, Omata K, Tezuka Y, Ono Y, Morimoto R, Adachi Y, Ise K, Nakamura Y, Gomez-sanchez C.E, Shibahara Y, et al. Tumor cell subtypes based on the intracellular hormonal activity in KCNJ5-mutated aldosterone-producing adenoma. Hypertension. 2018; 72: 632-640. doi: 10.1161/hypertensionaha.118.10907.

[18] Nishikawa T, Omura M, Satoh F, Shibata H, Takahashi K, Tamura N, Tanabe A. Task Force Committee on Primary Aldosteronism, The Japan Endocrine Society. Guidelines for the diagnosis and treatment of primary aldosteronism--the Japan Endocrine Society 2009. Endocr J. 2011;58(9):711-21. doi: 10.1507/endocrj.EJ11-0133.

[19] Budwit-Novotny, D.A, McCarty, K.S, Cox, E.B, Soper, J.T, Mutch, D.G, Creasman,W.T, Flowers J.L, McCarty Jr K.S. Immunohistochemical analyses of estrogen receptor in endometrial adenocarcinoma using a monoclonal antibody. Cancer Res, 1986; 46 (10): 5419–5425.

[20] Konosu-Fukaya S, Nakamura Y, Satoh F, Felizola S.J, Maekawa T, Ono Y, Morimoto R, Ise K, Takeda K, Katsu K, et al. 3β-hydroxysteroid dehydrogenase isoforms in human aldosterone-producing adenoma. Molecular and Cellular Endocrinology, 2015; 408: 205–212. doi: 10.1016/j.mce.2014.10.008.

[21] Son H.H, Moon J.Y, Seo H.S, Kim H.H, Chung B.C, Choi M.H. High-temperature GC-MS-based serum cholesterol signatures may reveal sex differences in vasospastic angina. J Lipid Res. 2014; 55: 155-162.

[22] Kempen H.J, Glatz J.F, Gevers Leuven J.A, van der Voort H.A, Katan M.B. Serum lathosterol concentration is an indicator of whole-body cholesterol synthesis in humans. J Lipid Res. 1988; 29(9): 1149– 1155. doi: 10.1016/S0022-2275(20)38456-X.

[23] Bertrand Cariou, Wieneke Dijk. EGF-A peptides: A promising strategy for PCSK9 inhibition. Atheroscler 2020; 292: 204-206.

[24] Borkowski A.J, Levin S, Delcroix C, Mahler A, Verhas V. Blood cholesterol and hydrocortisone production in man: quantitative aspects of the utilization of circulating cholesterol by the adrenals at rest and under adrenocorticotropin stimulation. J Clin Invest. 1967; 46(5): 797–811. doi: 10.1172/JCI105580.

[25] Brown M.S, Kovanen P.T, Goldstein J.L. Receptor-mediated uptake of lipoprotein-cholesterol and its utilization for steroid synthesis in the adrenal cortex. Recent Prog Horm Res. 1979; 35: 215–257. doi: 10.1016/B978-0-12-571135-7.50009-6.

[26] Connelly M.A, Williams D.L. SR-BI and cholesterol uptake into steroidogenic cells. Trends Endocrinol Metab. 2003; 14(10): 467–472. doi: 10.1016/j.tem.2003.10.002.

[27] Higashijima M, Nawata H, Kato K, Ibayashi H. Studies on lipoprotein and adrenal steroidogenesis: I. Roles of low density lipoprotein- and high density lipoprotein-cholesterol in steroid production in cultured human adrenocortical cells. Endocrinologia Japonica 1987(34) 635–645. doi: 10.1507/endocrj1954.34.635.

[28] Azhar S, Reaven E: Scavenger receptor class BI and selective cholesteryl ester uptake: partners in the regulation of steroidogenesis. Mol Cell Endocrinol 2002; 195: 1-26. doi: 10.1016/S0303-7207(02)00222-8.

[29] Azhar S, Leers-Sucheta S, Reaven E: Cholesterol uptake in adrenal and gonadal tissues: the SR-BI and 'selective' pathway connection. Front Biosc 2003; s998-1029.

[30] Krieger, M. Charting the fate of the ‘good cholesterol’: identification and characterization of the high-density lipoprotein receptor SR-BI. Annu Rev Biochem 1999; 68: 523–558. doi: 10.1146/annurev.biochem.68.1.523.

[31] Connelly M.A, Williams, D.L. Scavenger receptor BI (SR-BI) and cholesterol trafficking. Curr Opin Lipidol 1999; 10: 329–339. doi: 10.1016/j.tem.2003.10.002.

[32] London E, Wassif C.A, Horvath A, Tatsi C, Angelousi A, Karageorgiadis A.S, Porter F.D, Stratakis C.A. Cholesterol biosynthesis and trafficking in cortisol-producing lesions of the adrenal cortex. J Clin Endocrinol Metab 2015; 100(10): 3660–3667. doi: 10.1210/jc.2015-2212.

[33] Yamada M, Nakajima Y, Taguchi R, Okamura T, Ishii S, Tomaru T, Ozawa A, Shibusawa N, Yoshino S, Toki A, et al. KCNJ5 mutaions in aldosterone-and cortisol-co-secreting adrenal adenomas. Endocr J 2012; 59(8): 735-741. doi: 10.1507/endocrj.EJ12-0247.

[34] Liu J, Heikkila P, Meng Q, Kahri A, Tikkanen M and Voutilainen R. Expression of low and high density lipoprotein receptor genes in human adrenals. Eur J endocrinol 2000; 142: 677–682.

[35] Inoue K, Yamazaki Y, Kitamoto T, Hirose R, Saito J, Omura M, Sasano H, and Nishikawa T. Aldosterone suppression by dexamethasone in patients with KCNJ5-mutated aldosterone-producing adenoma. J Clin Endocrinol Metab 2018; 103(9): 3477–3485.

参考文献をもっと見る

全国の大学の
卒論・修論・学位論文

一発検索!

この論文の関連論文を見る