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CRISPR-Cas9システムを利用したゲノムワイドスクリーニングによる新規オートファジー関連遺伝子の同定

守田, 啓悟 東京大学 DOI:10.15083/0002002321

2021.10.13

概要

マクロオートファジー(以下、単にオートファジーと記す)は、主に大規模な分解を担う細胞内分解系である。膜構造体であるオートファゴソームが細胞質の一部を隔離し、その後リソソームへと輸送し分解する。飢餓などによってオートファジーが誘導されると、細胞質に一重膜構造体である隔離膜が生じる。隔離膜は細胞質に局在する基質を取り囲みながら伸長・弯曲し、やがてその口を閉じて二重膜構造体であるオートファゴソームとなる。オートファゴソームはリソソームと融合し、オートリソソームとなる。オートリソソーム内にリソソームの加水分解酵素が流入することで、取り込まれた基質が分解される。

 上記のように、オートファジーは非常に複雑な膜動態を経る過程であり、数多くのオートファジー関連遺伝子を必要とする。これまでに知られているオートファジー関連遺伝子の多くは、出芽酵母を中心とするモデル生物を用いたスクリーニングによって同定されてきた。ペキソファジー(ペルオキシソームを基質とするオートファジー)の実行に必要な遺伝子は、Komagataella phaffi(旧称Pichia pastoris)を用いた研究によって同定されてきた。近年では、線虫や分裂酵母を用いたスクリーニングによっても複数のオートファジー関連遺伝子が同定されている。

 モデル生物を用いたスクリーニングは豊富に行われてきた一方、哺乳類細胞を用いたゲノムワイドスクリーニングはその遺伝子操作の困難さゆえ、遺伝子ノックダウン法を用いるなど限定的な手法でしか行われてこなかった。しかし、ATG101やFIP200、VMP1などのオートファジー関連遺伝子は、哺乳類を用いた非遺伝学的な手法によって初めて同定されており、哺乳類細胞を対象としたゲノムワイドスクリーニングを実施した場合に新規のオートファジー関連遺伝子が同定される可能性は十分にあった。近年では遺伝子操作技術の発達に伴い、抗がん剤への耐性獲得に関わる遺伝子や、細胞の生存に必須な遺伝子、ウイルス感染関連遺伝子などが、CRISPR-Cas9法を利用したゲノムワイドスクリーニングよって同定されている。オートファジー関連分野においても、オートファジー分解の選択的な基質であるp62がufmylation経路によってその量の制御を受けることや、フェリチノファジー(フェリチンを基質とするオートファジー)のアダプタータンパク質であるNCOA4が、オートファジー非依存的なリソソームへの輸送機構によって分解されることがCRISPR-Cas9法を用いたスクリーニングによって見いだされている。いずれの研究においても、新規遺伝子の同定過程において既知のオートファジー関連遺伝子を多く検出しているが、オートファジーの実行自体に関わる新規オートファジー関連遺伝子の同定には至っていなかった。これらのスクリーニングで指標として用いられてきたオートファジー分解の選択的な基質はオートファジー分解以外によってもその量が制御されるため、それらの変化に隠されてオートファジー関連遺伝子の同定率が低下していたためであると推測された。

 本研究では、近年開発された新規オートファジー活性評価プローブ(GFP-LC3-RFP)とCRISPR-Cas9法を用いて、オートファジー関連遺伝子のゲノムワイドスクリーニングを行った。その結果、数多くの既知オートファジー関連遺伝子を再現よく検出した上で、TMEM41Bを新規オートファジー関連遺伝子として同定した。本研究で用いたプローブは、RFPの蛍光強度を内部標準としたGFPの蛍光強度の減少を以てオートファジー活性を評価することができるプローブである。本研究は上記2つの先行研究とは、(1)オートファジー活性を直接評価することができ、(2)シグナルを2次元に展開することができ、S/N比が非常に良いプローブを用いたため、(3)オートファジーの実行それ自体に必要である新規遺伝子の同定に成功した、という点において異なっている。

 Pfamドメインサーチを行うと、TMEM41Bは既知オートファジー関連タンパク質のVMP1と同一のドメインを有していた。本研究では、ドメインを再定義し、VTTドメインと命名した。VTTドメインを有するタンパク質には、他にTMEM41Aや、酵母Tvp38、大腸菌YdjX、YdjZなどがある。いずれも複数回の膜貫通領域を有しており、特に大腸菌タンパク質であるYdjXやYdjZが属する細菌のDedAファミリーにはトランスポーターであることが予測されているタンパク質があり、また、脂質組成に関わることが知られているタンパク質もある。これらの知見から鑑みると、TMEM41BやVMP1も膜上でトランスポーターなどの機能を有している可能性が考えられる。

 TMEM41BのC末端にGFPを付加してHEK293T細胞に発現させると、網目状の局在様式を示し、小胞体マーカーのmRuby3-cytochrome b5とよく共局在した。TMEM41Bが小胞体膜上に局在することを示唆している。VMP1が小胞体膜上に局在することは既に知られていた。また、TMEM41B、VMP1ともに、飢餓によってオートファジーを誘導してもドット状の構造を示さず、オートファジー誘導条件下においてもオートファゴソーム膜上ではなく小胞体膜上で機能していることが示唆された。

 TMEM41B、VMP1を欠損するHEK293T細胞(TMEM41B-KO細胞、VMP1-KO細胞)をCRISPR-Cas9法を用いてそれぞれ樹立した。生化学的な手法や免疫染色法を用いて評価すると、TMEM41B-KO細胞、VMP1-KO細胞ともにオートファジー不全を呈した。GFP-LC3-RFPプローブを用いて定量的に評価すると、TMEM41B-KO細胞、VMP1-KO細胞ともにオートファジー不全を呈することが示されたが、TMEM41B-KO細胞におけるオートファジー不全の方が、VMP1-KO細胞におけるオートファジー不全よりも軽度であった。また、TMEM41B-KO細胞におけるオートファジー不全は、外在性のTMEM41Bを発現させることで回復した。なお、VTTドメインを欠損させたTMEM41BやTMEM41Aを発現させても、オートファジー活性は回復しなかった。

 TMEM41B-KO細胞とVMP1-KO細胞において、オートファジーが停止している段階を特定するために、オートファジーの前駆体である隔離膜のマーカー(FIP200、WIPI2)で免疫染色を行った。その結果、TMEM41B-KO細胞とVMP1-KO細胞のいずれにおいても隔離膜のマーカーが蓄積していた。加えて、完成したオートファゴソームのマーカーであるSTX17を用いて観察すると、野生型細胞では完成したオートファゴソームが多く観察されるのに対し、TMEM41B-KO細胞とVMP1-KO細胞においては、飢餓によってオートファジーを誘導してもオートファゴソーム様構造体の形成はほとんど観察されなかった。これらの結果は、TMEM41B-KO細胞とVMP1-KO細胞において、オートファゴソーム形成が初期から中期の段階で停止していることを示唆している。電子顕微鏡を用いた解析を行うと、野生型細胞では飢餓時にオートファゴソーム様の二重膜構造体が観察されたのに対し、TMEM41B-KO細胞とVMP1-KO細胞においては、そのような構造体は観察されず、小胞様の構造が蓄積していることが観察された。時折、それらの蓄積の近傍に、オートファジー分解の基質であるフェリチンが集積したフェリチン小体が観察された。蓄積している構造がオートファジー関連構造体であることを示唆している。膜が伸長している構造も確認されなかったため、TMEM41BとVMP1がオートファゴソーム形成の初期段階で機能していることが示唆された。加えて、TMEM41B-KO細胞とVMP1-KO細胞において脂肪滴が蓄積することが確認された。TMEM41BやVMP1がオートファジー以外にも、脂質の恒常性維持に関わっていることを示唆している。

 以上から、TMEM41BとVMP1は(1)共通するドメインを有すること、(2)ともに小胞体膜上に局在すること、(3)遺伝子欠損時の表現型が類似していること、が明らかになった。このように、TMEM41BとVMP1は非常に類似しているので、物理的な、あるいは機能的な相互作用をしている可能性を疑った。まず、TMEM41BとVMP1が細胞内で結合しているかを免疫沈降法によって調べところ、両者が細胞内で結合していることが明らかとなった。また、機能的関連についても調べた。TMEM41B-KO細胞にVMP1、VMP1-KO細胞にTMEM41Bを過剰発現させた細胞でオートファジー活性を調べた。その結果、VMP1-KO細胞にTMEM41Bを過剰発現させてもオートファジー活性は回復しなかったのに対して、TMEM41B-KO細胞にVMP1を発現させるとオートファジー活性が回復した。両者が機能的にも深く関連していることを示唆しており、たとえばTMEM41BがVMP1の機能を補佐するような役割を有していると考えられた。

 本研究では、CRISPR-Cas9法と最新のオートファジー活性評価プローブを用いて、オートファジー関連遺伝子の哺乳類細胞におけるゲノムワイドスクリーニングを行った。その結果、新規オートファジー関連遺伝子TMEM41Bを同定した。一方、哺乳類において冗長性を有する遺伝子や、逆に生存に必須である遺伝子は、スクリーニングシステムの構造上同定されていない可能性が十分にある。今後は、そのような遺伝子をも同定することができるようなスクリーニング系を樹立することが期待される。また、TMEM41BとVMP1の機能について、未だ詳らかにはなっていないものの、(1)ドメインを共有する大腸菌タンパク質と近縁な大腸菌タンパク質に、トランスポーターであることが予測されているものがあること、(2)そのようなタンパク質が脂質組成に関わっていること、(3)TMEM41BやVMP1が脂質の恒常性に広く関わっている可能性を有すること、から、脂質のトランスポーターである可能性が考えられる。オートファゴソーム形成に必要な脂質の供給源については未だに分かっていないので、もしTMEM41BやVMP1が脂質のトランスポーターでオートファゴソーム上に脂質を供給しているとしたら、オートファジーの分子機構の解明にとって非常に意義が大きい。一方、VMP1がカルシウムチャネルのSERCAに結合してその機能を抑制しているということが最近報告されている。TMEM41BがVMP1同様にそのような機能を有しており、イオンの平衡に関わっている可能性も十分に考えられる。いずれにせよ、構造生物学的研究により、その機能が推測されることが俟たれる。

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