リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

リケラボ 全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索するならリケラボ論文検索大学・研究所にある論文を検索できる

大学・研究所にある論文を検索できる 「ウマにおける新しい創傷治療法である多血小板血漿(PRP)療法の有用性に関する研究」の論文概要。リケラボ論文検索は、全国の大学リポジトリにある学位論文・教授論文を一括検索できる論文検索サービスです。

コピーが完了しました

URLをコピーしました

論文の公開元へ論文の公開元へ
書き出し

ウマにおける新しい創傷治療法である多血小板血漿(PRP)療法の有用性に関する研究

福田, 健太郎 東京大学 DOI:10.15083/0002008262

2023.12.27

概要



査 の 結 果 の 要 旨





福田 健太郎

ウマは外傷を負うことが多い動物であり、特に競走馬では創傷が日常的に生じる疾患とし
ても高い比率を占めている。そして、ウマにおける創傷は、炎症の慢性化や過剰な肉芽増生
のために治療が長期間に及ぶことも少なくない。このことの原因として患部の低酸素、低温
や成長因子の不均衡が挙げられ、創傷の正常な治癒機転が機能し難くなることで症状が遷
延化しやすいと考えられているが、創傷の治療法に関しては長年にわたって多くの議論や
提案がなされてきてはいるものの、未だ効率的な治療法が確立しているとは言えない。近年
では創傷治療の分野でも再生医療が導入されるようになり、特に成長因子を利用した治療
法が注目されている。その代表的な治療法が、自己血由来の血小板を濃縮させて作製された
多血小板血漿(platelet-rich plasma; PRP)を用いた PRP 療法であり、その安全性と簡便
性からヒトの臨床においては、口腔外科や整形外科領域において普及が進んでいる。ウマの
臨床における PRP 療法では、血小板に含有されている多種多量な成長因子が損傷組織に曝
露されることにより組織修復が促進されることを期待して整形外科領域において試みられ
た経緯はあるものの、治療に用いられる PRP の作製方法や使用方法が未だに標準化されて
いないのが現状である。そこで申請者は、ウマにおける優れた創傷治療法として PRP 療法の
確立を目的として、PRP の最適な作製方法と活性化方法を見出しその筋損傷に対する新たな
治療法としての有効性について検討を行っている。
提出された博士論文は 6 章から構成されている。第 1 章では、研究の背景および目的を述
べている。
第2章では、治療に使用するための最適な PRP を得るために、含有されている成長因子の
濃度が最大となるような PRP の作製方法と活性化方法について検討している。ウマより採
血した静脈血を用いて、まず様々な遠心条件による 2 段階遠心法によって PRP を作製した
結果、赤血球と白血球の混入が最小限となるような PRP を作製する場合には 400x2000g が
最適な条件であることを見出した。そして、PRP の活性化方法については、最低 2 回の凍結
融解処理することにより PRP 上清中の組織修復に関与する代表的な成長因子として血小板
由来成長因子(PDGF-BB)とトランスフォーミング増殖因子‐β1(TGF-β1)の含有濃度が
高くなることを見出した。したがって、最適かつ簡便に活性化された PRP を作製するには、
400x2000gの遠心条件で2回遠心して作製した PRP を2回以上凍結融解すればよいことを
明らかにした。
第3章では、前章で得られた結果を基に作製した PRP を、実際にウマの健常な骨格筋に単

回投与した際の影響について組織学的および分子生物学的に検討している。その結果、筋線
維の分化に関連する遺伝子である MHC-e や MHC-1 の発現量に増加が認められたことから、
サテライトセルの増殖を必要とするような損傷に対しては筋分化過程を活性化させる可能
性のあることを見出した。一方、筋修復に関与する成長因子やサイトカインの遺伝子に顕著
な差異を認めなかった。そして、PRP の投与は健常な筋線維自体や周囲の組織には形態学的
に顕著な変化を誘発しなかった。これらの結果から、PRP の投与が筋力増強を目的としたド
ーピングや臨床応用する際の安全性面から副反応を及ぼす可能性の少ないことを示唆して
いる。
第4章では、実験的に作製された骨格筋損傷モデルに対して PRP を投与し、その筋修復に
及ぼす影響について組織学的および分子生物学的に検討を行っている。実験的な骨格筋損
傷モデルには、実際の病態や筋損傷の修復過程を反映しているのみならず、投与された薬液
が出血により患部から排出され投与効果が不明瞭になることを防ぐため、作製時における
出血を最小にすることが求められる。局所麻酔薬であるブピバカインの筋肉内投与が、マウ
スやラットで筋細胞膜のみを破壊し出血を最小限にすることが証明されていることから、
ウマの中殿筋にこの方法を応用し筋損傷モデルの作製を試みた。その結果、ブピバカイン
10ml の筋肉内投与により、一般的な筋損傷修復過程を反映した病変を再現性良く広範囲に
作製可能なことを明らかにした。本モデルを用いて PRP の有効性について調べたところ、
PRP 由来の成長因子は投与 2 日後には消失するものの、筋修復に関与する成長因子やサイト
カインに加えてサテライトセル増殖に関わる遺伝子の発現はその後も高いレベルに維持さ
れた。一方、筋分化に関わる遺伝子は投与 7 日では PRP 投与群で低値を示した。これらのこ
とから、PRP 投与は損傷部位における筋再生を促進しより早く筋修復過程の初期段階を終息
させることを示唆している。
第 5 章では、筋損傷を伴う創傷症例に対して実際に PRP 療法を適用して本法の有用性につ
いて検討している。外科手術によっても完治しなかった重症な創傷を受傷したウマ2頭を
用いて、創傷部位に PRP を投与することにより、創の湿潤状態や良性肉芽の増生が誘導さ
れ、その後、創が収縮を経て閉鎖し治癒に至ったことを確認している。また、有害事象も認
められなかったことから、創傷に対する PRP 治療が簡便で有用な治療法であることを臨床
的にも明らかにしている。
第 6 章では、得られた知見に関して総括をしている。
以上のように、本論文ではウマにおける PRP の作製方法からその有効性について実験的
モデルおよび臨床応用も含めて検討し PRP 療法の有用性を明らかにしている。これらの研
究成果は、ウマにおける新たな創傷治療法として非常に有用な知見を提供しており、学術上
応用上寄与するところが少なくない。よって、審査委員一同は本論文が博士(獣医学)の学
位論文として価値あるものと認めた。

この論文で使われている画像

参考文献

1) Stashak TS, Theoret CL. Equine wound management. 2nd ed. Iowa: WileyBlackwell; 2008.

2) Caron JP. Management of superficial wounds. In: Auer JA, editor. Equine Surgery.

Philadelphia: W. B. Saunders Company; 1992. p. 232.

3) Iacopetti I, Perazzi A, Ferrari V, Busetto R. Application of platelet-rich gel to

enhance wound healing in the horse: A case report. J Equine Vet Sci. 2012;32:123–

8.

4) DeRossi R, Coelho AC, Mello GS, Frazílio FO, Leal CR, Facco GG, et al. Effects of

platelet-rich plasma gel on skin healing in surgical wound in horses. Acta Cir Bras.

2009 Jul–Aug;24(4):276–81.

5) Rajabzadeh N, Fathi E, Farahzadi R. Stem cell-based regenerative medicine. Stem

Cell Investig. 2019 Jul 18;6:19.

6) Torres-Torrillas M, Rubio M, Damia E, Cuervo B, Del Romero A, Peláez P, et al.

Adipose-Derived Mesenchymal Stem Cells: A Promising Tool in the Treatment of

Musculoskeletal Diseases. Int J Mol Sci. 2019 Jun 25;20(12):3105.

7) 澤芳樹. 「再生医療の最前線」

『医療と社会』

、2018;28(1): 93–101.

96

8) Borena BM, Martens A, Broeckx SY, Meyer E, Chiers K, Duchateau L, et al.

Regenerative Skin Wound Healing in Mammals: State-of-the-Art on Growth Factor

and Stem Cell Based Treatments. Cell Physiol Biochem. 2015;36(1):1–23.

9) Marx RE. Platelet-rich plasma: evidence to support its use. J Oral Maxillofac Surg.

2004 Apr;62(4):489–96.

10) Everts PA, Knape JT, Weibrich G, Schönberger JP, Hoffmann J, Overdevest EP, et

al. Platelet-rich plasma and platelet gel: a review. J Extra Corpor Technol. 2006

Jun;38(2):174–87.

11) Barrientos S, Stojadinovic O, Golinko MS, Brem H, Tomic-Canic M. Growth factors

and cytokines in wound healing. Wound Repair Regen. 2008 Sep–Oct;16(5):585–

601.

12) Satue K, Gardon JC, Munoz A. Interpretation of platelets in the horse. J Hematol.

Res. 2017;4:19–25.

13) Reed SM, Bayly WM, Sellon DC. Equine Internal Medicine. 3rd ed. St. Louis:

Saunders Elsevier; 2010. p. 757.

14) Textor JA, Tablin F. Activation of equine platelet-rich plasma: comparison of

methods and characterization of equine autologous thrombin. Vet Surg. 2012

Oct;41(7):784–94.

97

15) Textor JA, Norris JW, Tablin F. Effects of preparation method, shear force, and

exposure to collagen on release of growth factors from equine platelet-rich plasma.

Am J Vet Res. 2011 Feb;72(2):271–8.

16) Dhillon RS, Schwarz EM, Maloney MD. Platelet-rich plasma therapy - future or

trend? Arthritis Res Ther. 2012 Aug 8;14(4):219.

17) Schnabel LV, Mohammed HO, Miller BJ, McDermott WG, Jacobson MS, Santangelo

KS, et al. Platelet rich plasma (PRP) enhances anabolic gene expression patterns in

flexor digitorum superficialis tendons. J Orthop Res. 2007 Feb;25(2):230–40.

18) Smith JJ, Ross MW, Smith RK. Anabolic effects of acellular bone marrow, platelet

rich plasma, and serum on equine suspensory ligament fibroblasts in vitro. Vet

Comp Orthop Traumatol. 2006;19(1):43–7.

19) Hwang YJ, Choi JY. Addition of mesenchymal stem cells to the scaffold of plateletrich plasma is beneficial for the reduction of the consolidation period in mandibular

distraction osteogenesis. J Oral Maxillofac Surg. 2010 May;68(5):1112–24.

20) Inchingolo F, Tatullo M, Marrelli M, Inchingolo AM, Inchingolo AD, Dipalma G, et

al. Regenerative surgery performed with platelet-rich plasma used in sinus lift

elevation before dental implant surgery: an useful aid in healing and regeneration

of bone tissue. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2012 Sep;16(9):1222–6.

98

21) Marukawa E, Oshina H, Iino G, Morita K, Omura K. Reduction of bone resorption

by the application of platelet-rich plasma (PRP) in bone grafting of the alveolar

cleft. J Craniomaxillofac Surg. 2011 Jun;39(4):278–83.

22) Mei-Dan O, Lippi G, Sanchez M, Andia I, Maffulli N. Autologous platelet-rich

plasma: a revolution in soft tissue sports injury management? Phys Sportsmed.

2010 Dec;38(4):127–35.

23) Gosens T, Peerbooms JC, van Laar W, den Oudsten BL. Ongoing positive effect of

platelet-rich plasma versus corticosteroid injection in lateral epicondylitis: a

double-blind randomized controlled trial with 2-year follow-up. Am J Sports Med.

2011 Jun;39(6):1200–8.

24) Bosch G, van Schie HT, de Groot MW, Cadby JA, van de Lest CH, Barneveld A, et

al. Effect of platelet-rich plasma on the quality of repair of mechanically induced

core lesions in equine superficial digital flexor tendons: A placebo-controlled

experimental study. J Orthop Res. 2010 Feb;28(2):211–7.

25) Waselau M, Sutter WW, Genovese RL, Bertone AL. Intralesional injection of

platelet-rich plasma followed by controlled exercise for treatment of midbody

suspensory ligament desmitis in Standardbred racehorses. J Am Vet Med Assoc.

2008 May 15;232(10):1515–20.

99

26) Brossi PM, Moreira JJ, Machado TS, Baccarin RY. Platelet-rich plasma in

orthopedic therapy: a comparative systematic review of clinical and experimental

data in equine and human musculoskeletal lesions. BMC Vet Res. 2015 Apr

22;11:98.

27) Dahlgren LA. Regenerative medicine therapies for equine wound management. Vet

Clin North Am Equine Pract. 2018 Dec;34(3):605–620.

28) Tambella AM, Martin S, Cantalamessa A, Serri E, Attili AR. Platelet-rich plasma

and other hemocomponents in veterinary regenerative medicine. Wounds. 2018

Nov;30(11):329–336.

29) Sutter WW, Kaneps AJ, Bertone AL. Comparison of hematologic values and

transforming growth factor-β and insulin-like growth factor concentrations in

platelet concentrates obtained by use of buffy coat and apheresis methods from

equine blood. Am J Vet Res. 2004 Jul;65(7):924–30.

30) Yin W, Xu H, Sheng J, Zhu Z, Jin D, Hsu P, et al. Optimization of pure platelet-rich

plasma preparation: A comparative study of pure platelet-rich plasma obtained

using different centrifugal conditions in a single-donor model. Exp Ther Med. 2017

Sep;14(3):2060–2070.

100

31) Vasconcelos E, Figueiredo AC, Seghatchian J. Quality of platelet concentrates

derived by platelet rich plasma, buffy coat and apheresis. Transfus Apher Sci. 2003

Aug;29(1):13–6.

32) Hammond JW, Hinton RY, Curl LA, Muriel JM, Lovering RM. Use of autologous

platelet-rich plasma to treat muscle strain injuries. Am J Sports Med. 2009

Jun;37(6):1135–42.

33) Dhurat R, Sukesh M. Principles and methods of preparation of platelet-rich

plasma: A review and author’s perspective. J Cutan Aesthet Surg. 2014 Oct–

Dec;7(4):189–97.

34) Dohan Ehrenfest DM, Rasmusson L, Albrektsson T. Classification of platelet

concentrates: from pure platelet-rich plasma (P-PRP) to leukocyte- and platelet-rich

fibrin (L-PRF). Trends Biotechnol. 2009 Mar;27(3):158–67.

35) Magalon J, Chateau AL, Bertrand B, Louis ML, Silvestre A, Giraudo L, et al. DEPA

classification: a proposal for standardizing PRP use and retrospective application of

available devices. BMJ Open Sport Exerc Med. 2016 Feb 4;2(1):e000060.

36) Sundman EA, Cole BJ, Fortier LA. Growth factor and catabolic cytokine

concentrations are influenced by the cellular composition of platelet-rich plasma.

Am J Sports Med. 2011 Oct;39(10):2135–40.

101

37) Yoshida R, Murray MM. Peripheral blood mononuclear cells enhance the anabolic

effects of platelet-rich plasma on anterior cruciate ligament fibroblasts. J Orthop

Res. 2013 Jan;31(1):29–34.

38) King W, van der Weegen W, Van Drumpt R, Soons H, Toler K, Woodell-May J.

White blood cell concentration correlates with increased concentrartions of IL-1ra

and improvement in WOMAC pain scores in an open-label safety study of

autologous protein solution. J Exp Orthop. 2016 Dec;3(1):9.

39) Boswell SG, Schnabel LV, Mohammed HO, Sundman EA, Minas T, Fortier, LA.

Increasing platelet concentrations in leukocyte-reduced platelet-rich plasma

decrease collagen gene synthesis in tendons. Am J Sports Med. 2014 Jan;42(1):42–

9.

40) Kisiday JD, McIlwraith CW, Rodkey WG, Frisbie DD, Steadman JR. Effects of

platelet-rich plasma composition on anabolic and catabolic activities in equine

cartilage and meniscal explants. Cartilage. 2012 Jul;3(3):245–54.

41) Sano K, Takai Y, Yamanishi J, Nishizuka Y. A role of calcium-activated

phospholipid-dependent protein kinase in human platelet activation. Comparison of

thrombin and collagen actions. J Biol Chem. 1983 Feb 10;258(3):2010–3.

102

42) Sonker A, Dubey A. Determining the effect of preparation and storage: An effort to

streamline platelet components as a source of growth factors for clinical

application. Transfus Med Hemother. 2015 May;42(3):174–80.

43) Zimmermann R, Arnord D, Strasser E, Ringwald J, Schlegel A, Wiltfang J, et al.

Sample preparation technique and white cell content influence the detectable levels

of growth factors in platelet concentrates. Vox Sang. 2003 Nov;85(4):283–9.

44) Hauschild G, Geburek F, Gosheger G, Eveslage M, Serrano D, Streitbürger A, et al,

Mischke R. Short term storage stability at room temperature of two different

platelet-rich plasma preparations from equine donors and potential impact on

growth factor concentrations. BMC Vet Res. 2017 Jan 5;13(1):7.

45) Shin HS, Woo HM, Kang BJ. Optimisation of a double-centrifugation method for

preparation of canine platelet-rich plasma. BMC Vet Res. 2017 Jun 26;13(1):198.

46) Borrione P, Fagnani F, Di Gianfrancesco A, Mancini A, Pigozzi F, Pitsiladis Y. The

role of platelet-rich plasma in muscle healing. Curr Sports Med Rep. 2017

Nov/Dec;16(6):459–463.

47) Giles BM, Underwood TT, Benhadji KA, Nelson DK, Grobeck LM, Lin B, et al.

Analytical characterization of an enzyme-linked immunosorbent assay for the

103

measurement of transforming growth factor β1 in human plasma. J Appl Lab Med.

2018;3:200–212.

48) Karalaki M, Fili S, Philippou A, Koutsilieris M. Muscle regeneration: cellular and

molecular events. In Vivo. 2009 Sep–Oct;23(5):779–96.

49) A Hamid MS, Mohamed Ali MR, Yusof A, George J, Lee LP. Platelet-rich plasma

injections for the treatment of hamstring injuries. Am J Sports Med. 2014

Oct;42(10):2410–8.

50) Kawai M, Aida H, Hiraga A, Miyata H. Muscle satellite cells are activated after

exercise to exhaustion in Thoroughbred horses. Equine Vet J. 2013 Jul;45(4):512–7.

51) Yamano S, Eto D, Kasashima Y, Hiraga A, Sugiura T, Miyata H. Evaluation of

developmental changes in the coexpression of myosin heavy chains and metabolic

properties of equine skeletal muscle fibers. Am J Vet Res. 2005 Mar;66(3):401–5.

52) Shi X, Garry DJ. Muscle stem cells in development, regeneration, and disease.

Genes Dev. 2006 Jul 1;20(13):1692–708.

53) Delos D, Leineweber MJ, Chaudhury S, Alzoobaee S, Gao Y, Rodeo SA. The effect of

platelet-rich plasma on muscle contusion healing in a rat model. Am J Sports Med.

2014 Sep;42(9):2067–74.

104

54) Daley JM, Brancato SK, Thomay AA, Reichner JS, Albina JE. The phenotype of

murine wound macrophages. J Leukoc Biol. 2010 Jan;87(1):59–67.

55) Zhang C, Li Y, Wu Y, Wang L, Wang X, Du J. Interleukin-6/signal transducer and

activator of transcription 3 (STAT3) pathway is essential for macrophage

infiltration and myoblast proliferation during muscle regeneration. J Biol Chem.

2013 Jan 18;288(3):1489–99.

56) Dimauro I, Grasso L, Fittipaldi S, Fantini C, Mercatelli N, Racca S, et al. Plateletrich plasma and skeletal muscle healing: a molecular analysis of the early phases of

the regeneration process in an experimental animal model. PloS One. 2014 Jul

23;9(7):e102993.

57) Matsuo R, Ohkohchi N, Murata S, Ikeda O, Nakano Y, Watanabe M, et al. Platelets

strongly induce hepatocyte proliferation with IGF-1 and HGF in vitro. J Surg Res.

2008 Apr;145(2):279–86.

58) Lepper C, Partridge TA, Fan CM. An absolute requirement for Pax7-positive

satellite cells in acute injury-induced skeletal muscle regeneration. Development.

2011 Sep;138(17):3639–46.

105

59) Hamilton B, Tol JL, Almusa E, Boukarroum S, Eirale C, Farooq A, et al. Plateletrich plasma does not enhance return to play in hamstring injuries: a randomised

controlled trial. Br J Sports Med. 2015 Jul;49(14):943–50.

60) Kunze KN, Hannon CP, Fialkoff JD, Frank RM, Cole BJ. Platelet-rich plasma for

muscle injuries: A systematic review of the basic science literature. World J Orthop.

2019 Jul 18;10(7):278–291.

61) Politi PK, Havaki S, Manta P, Lyritis G. Bupivacaine-induced regeneration of rat

soleus muscle: ultrastructural and immunohistochemical aspects. Ultrastruct

Pathol. 2006 Nov-Dec;30(6):461–9.

62) Lagrota-Candido J, Canella I, Pinheiro DF, Santos-Silva LP, Ferreira RS,

Guimarães-Joca FJ, et al. Characteristic pattern of skeletal muscle remodelling in

different mouse strains. Int J Exp Pathol. 2010 Dec;91(6):522–9.

63) Akiyama C, Kobayashi S, Nonaka I. Comparison of behavior in muscle fiber

regeneration after bupivacaine hydrochloride- and acid anhydride-induced

myonecrosis. Acta Neuropathol. 1992;83(6):584–9.

64) Otrocka-Domagała I, Paździor-Czapula K, Gesek M. Dexamethasone-induced

impairment of post-injury skeletal muscle regeneration. BMC Vet Res. 2019 Feb

11;15(1):56.

106

65) Nishino I. ABC in muscle pathology. Rinsho Shinkeigaku. 2011 Sep;51(9):669–76.

[Japanese].

66) Fukuda K, Kuroda T, Tamura N, Mita H, Kasashima Y. Optimal activation methods

for maximizing the concentrations of platelet-derived growth factor-BB and

transforming growth factor-β1 in equine platelet-rich plasma. J Vet Med Sci. 2020

Oct 20;82(10):1472-1479.

67) Tsai WC, Yu TY, Chang GJ, Lin LP, Lin MS, Pang JS. Platelet-rich plasma

releasate promotes regeneration and decreases inflammation and apoptosis of

injured skeletal muscle. Am J Sports Med. 2018 Jul;46(8):1980–1986.

68) Li H, Hicks JJ, Wang L, Oyster N, Philippon MJ, Hurwitz S, et al. Customized

platelet-rich plasma with transforming growth factor β1 neutralization antibody to

reduce fibrosis in skeletal muscle. Biomaterials. 2016 May;87:147–156.

69) Guardiola O, Andolfi G, Tirone M, Iavarone F, Brunelli S, Minchiotti G. Induction

of acute skeletal muscle regeneration by cardiotoxin injection. J Vis Exp. 2017 Jan

1;(119):54515.

70) Bowen-Pope DF, Malpass TW, Foster DM, Ross R. Platelet-derived growth factor in

vivo: levels, activity, and rate of clearance. Blood. 1984 Aug;64(2):458–69.

107

71) Wakefield LM, Winokur TS, Hollands RS, Christopherson K, Levinson AD, Sporn

MB. Recombinant latent transforming growth factor beta 1 has a longer plasma

half-life in rats than active transforming growth factor beta 1, and a different

tissue distribution. J Clin Invest. 1990 Dec;86(6):1976–84.

72) Textor JA, Willits NH, Tablin F. Synovial fluid growth factor and cytokine

concentrations after intra-articular injection of a platelet-rich product in horses.

Vet J. 2013 Oct;198(1):217–23.

73) Yamanouchi K, Hosoyama T, Murakami Y, Nakano S, Nishihara M. Satellite cell

differentiation in goat skeletal muscle single fiber culture. J Reprod Dev. 2009

Jun;55(3):252–5.

74) Soeta C, Yamanouchi K, Hasegawa T, Ishida N, Mukoyama H, Tojo H, et al.

Isolation of satellite cells from equine skeletal muscle. J Equine Sci. 1998; 9(3):97–

100.

75) Carter CA, Jolly DG, Worden CE Sr, Hendren DG, Kane CJ. Platelet-rich plasma

gel promotes differentiation and regeneration during equine wound healing. Exp

Mol Pathol. 2003 Jun;74(3):244–55.

108

76) Pereira RCDF, De La Côrte FD, Brass KE, da Silva Azevedo M, Gallio M, Cantarelli

C, et al. Evaluation of three methods of platelet-rich plasma for treatment of equine

distal limb skin wounds. J Equine Vet Sci. 2019 Jan;72:1–7.

77) Kurita J, Miyamoto M, Ishii Y, Aoyama J, Takagi G, Naito Z, et al. Enhanced

vascularization by controlled release of platelet-rich plasma impregnated in

biodegradable gelatin hydrogel. Ann Thorac Surg. 2011 Sep;92(3):837–44;

discussion 844.

78) Carter MJ, Fylling CP, Parnell LK. Use of platelet rich plasma gel on wound

healing: a systematic review and meta-analysis. Eplasty. 2011;11:e38. Epub 2011

Sep 15.

109

...

参考文献をもっと見る

全国の大学の
卒論・修論・学位論文

一発検索!

この論文の関連論文を見る